makalah mikrobiologi kel 5 dan 6

BAB I
PENDAHULUAN
A. LATAR BELAKANG
Pada muka bumi kita, terdapat banyak sekali macam dan golongan mikroorganisme yang
hidup. Bahkan jumlah mikroorganisme sekarang melebihi jumlah manusia yang pernah hidup di
bumi. Mikroba satu dengan yang lainnya memiliki perbedaan yang spesifik, bahkan sesama
golongannya pun tidak sepenuhnya identik. Sama seperti manusia, mikroba pun tidak pernah ada
yang identik satu sama lainnya. Karakterisasi mikroorganisme dapat di lakukan dengan beberapa
metode seperti pengamatan makroskopik koloni, pewarnaan mikroba untuk mengetahui
penampakan mikroskopik sel maupun membedakan golongan-golongan mikroorganisme, serta
karakterisasi dengan serangkaian uji-uji biokimia yang mencerminkan aktivitas metabolisme
enzimatik. Media pertumbuhan bakteri dapat dimana saja termasuk tidak terlepas dari makanan
dan minuman yang kita konsumsi.
Bakteri ada yang bersifat komensal maupun patogen, banyak peranan bakteri dalam
kehidupan manusia diantaranya pembusukan sisa-sisa mikroorganisme dan sisa pencernaan
makanan, penghasil zat warna, antibiotik, dan peranannya dalam teknologi pangan. Bakteri
mempunyai sifat patogen, yaitu bakteri dapat menginfeksi dan menyebabkan penyakit khususnya
pada manusia, hal tersebut yang menyebabkan perlunya uji identifikasi terhadap makanan dan
minuman khususnya air yang menjadi tempat pertumbuhan bakeri sekaligus sering dipakai untuk
keperluan sehari-hari manusia.
Air untuk kepentingan industri farmasi sangat berbeda dengan air yang digunakan untuk
keperluan rumah tangga sehari-hari atau untuk kepentingan industri-industri lainya. Fungsi air
dalam industri farmasi merupakan salah satu aspek yang penting karena air merupakan bahan
baku untuk pembuatan sediaan sirup, infus, injeksi atau untuk produksi, formulasi, pembersih dan
kontrol kualitas. Tentunya amat sangat membahayakan hidup kita semua jika air digunakan tidak
memenuhi standar atau tercemar.
B. TUJUAN PRAKTIKUM
1. Untuk mengetahui metode yang digunakan dalam pemeriksaan kualitas air.
2. Untuk mengetahui kualitas air dalam sampel air yang sudah disediakan dari
laboratorium mikrobiologi Fakultas farmasi Universitas Pancasila.
C. MANFAAT PRAKTIKUM
1. Kita dapat melakukan uji penduga terhadap sampel air yang diberikan.
2. Kita dapat mengetahui kualitas suatu air pada sampel walau masih dalam lingkup kecil.
3. Kita dapat mengetahui bahwa air sebagai kebutuhan bagi makhluk hidup penting diuji
kualitasnya.
4. Dapat menambah wawasan agar kita selalu memperhatikan dan menjaga kebersihan
lingkungan sekitar kita untuk meminimalisir tercemarnya air.
D. RUMUSAN MASALAH
1. Bagaimana kualitas air dalam sampel air yang sudah disediakan dari laboratorium
mikrobiologi Fakultas farmasi Universitas Pancasila?
1
2. Apakah terdapat cemaran bakteri coliform dalam sampel air yang sudah disediakan dari
laboratorium mikrobiologi Fakultas farmasi Universitas Pancasila dengan dilakukan uji
penduga?
BAB II
TINJAUAN PUSTAKA
Mikroorganisme dalam air sangatlah berbeda. Jumlah dan tipe bakteri yang ada bergantung
kepada jumlah bahan organik yang ada di dalam air, adanya zat racun, kadar garam air, dan faktor
lingkungan seperti pH, suhu, dan udara. Mikroorganisme heterotrofik ada di dasar sungai dan danau
dimana zat organik mendominasi sedangkan air yang terbuka atau berada di permukaan akan memiliki
bakteri autrotrof dengan banyak tipe. Dengan adanya bakteri di dalam air, penyakit seperti kolera dapat
menjadi penyakit yang sering menyerang saat kualitas air tidak diperhatikan atau ditangani.
Sebenarnya, air dengan bakteri aman untuk diminum tergantung dari jenis mikroba apa yang
terdapat di dalamnya. Air dari mata air dan danau yang mengandung banyak bakteri autotrof dan
heterotrof dapat diminum selama tidak patogen terhadap manusia. Meski begitu perhatian masih
mengarah kepada mikroba yang patogen. Contohnya yang menyerang usus seperti penyebab disentri dan
kolera. Penularan yang diakibatkan oleh sisa-sisa metabolisme manusia menjadi faktor lain penyebaran
mikroba patogen sehingga pemeriksaan kualitas air yang konstan diperlukan untuk menjaga kemurnian
air agar aman dikonsumsi.
Mikroorganisme dalam air dapat diketahui keberadaannya melalui bakteri-bakteri yang menjadi
indicator keberadaannya. Indikator yang umum diketahui adalah Escherichia coli yang diklasifikasikan
sebagai bakteri Coliform.
Coliform merupakan suatu grup bakteri yang digunakan sebagai indikator adanya polusi kotoran
dan kondisi sanitasi yang tidak baik terhadap air, minuman, atau produksi yang dapat dikonsumsi oleh
manusia. Adanya bakteri coliform di dalam makanan atau minuman menunjukkan kemungkinan adanya
mikroorganisme yang bersifat enteropatogenik dan toksigenik yang berbahaya bagi kesehatan.
Berdasarkan penelitian, bakteri coliform ini menghasilkan zat etionin yang dapat menyebabkan kanker.
Selain itu, bakteri pembusuk ini juga memproduksi bermacam-macam racun seperti indol dan skatol yang
dapat menimbulkan penyakit bila jumlahnya berlebih di dalam tubuh. Bakteri coliform dapat digunakan
sebagai indikator karena destitasnya berbanding lurus dengan tingkat pencemaran air. Bakteri ini dapat
mendeteksi pathogen pada air, seperti virus, protozoa, dan parasit. Selain itu, bakteri ini juga memiliki
daya tahan yang lebih tinggi daripada patogen serta lebih mudah diisolasi dan ditumbuhkan.
Coliform termasuk kelompok bakteri aerob dan anaerob fakultatif, Gram negative, tidak
membentuk endospora, berbentuk batang atau basil yang mempunyai kemampuan memfermentasi laktosa
dengan menghasilkan asam dan gas pada suhu 35 - 370C selama 24-48 jam. Coliform juga membentuk
koloni berwarna merah dan mengkilap logam dalam suhu 350C selama 24 jam pada media Endo agar
yang mengandung laktosa. Coliform dapat ditemukan di saluran pencernaan hewan, tanah, atau secara
alami pada lingkungan. Pada kondisi normal Coliform terdapat dalam jumlah normal dan dapat diukur.
Namun, apabila terjadi pencemaran air, jumlah Coliform akan menjadi lebih banyak dan dapat melebihi
jumlah bakteri patogen lainnya.
Bakteri Coliform dapat dibedakan menjadi dua grup, yaitu koliform fekal (misalnya Escherichia
coli dan koliform nonfekal (misalnya Enterobacter aerogenes). Escherichia coli merupakan bakteri yang
berasal dari kotoran hewan atau manusia, sedangkan Enterobacter aerogenes biasanya ditemukan di
hewan atau tanaman-tanaman yang sudah mati. Jadi, adanya dalam air minum menunjukkan bahwa air
minum itu pernah terkontaminasi feses manusia dan mungkin dapat mengandung patogen usus. Oleh
karena itu, standar air minum mensyaratkan Escherichia coli harus menunjukkan angka nol dalam 100
mL. Air yang digunakan dalam keperluan farmasi tidak boleh mengandung mikroba dan air yang
2
digunakan untuk sediaan parenteral harus bebas dari pirogen. Air untuk keperluan farmasi dapat
dikelompokkan menjadi 4 yaitu :
1. Potable water/drinking water (air minum)
Air ini adalah air yang dapat dikonsumsi secara aman oleh manusia. Umumnya berasal dari
sungai, sumur, mata air, danau, atau laut.
2. Purified water
Air murni diperoleh dari air minum yang telah melalui proses ultrafiltrasi, deionisasi, ataupun
reverse osmosis. Air ini harus memenuhi ketentuan dalam Farmakope terhadap kandungan kimia
air dan terlindung dari segala aktivitas mikroba.
3. High purified water (HPW)
Hampir sama dengan purified water. Hanya saja air jenis ini harus memenuhi kriteria air untuk
injeksi termasuk dalam jumlah endotoksin. Air ini diproduksi dari air minum biasa yang melalui
proses kombinasi dari ultrafiltrasi, deionisasi, dan reverse osmosis.
4. Water for injection (WFI)
Air ini digunakan untuk sediaan parenteral dan bukan merupakan produk steril atau produk jadi
melainkan produk antara yang diperoleh dari air minum yang diolah dengan sistem destilasi.
Ketentuan kemurnian air dari berbagai standar adalah sebagai berikut,



Tahun 2002, Departemen Kesehatan RI menetapkan kriteria kualitas air secara mikrobiologis
melalui Keputusan Menteri Kesehatan No. 907 tahun 2002 dan diperbaiki melalui Peraturan
Menteri Kesehatan 492/Menkes/Per/IV/2010. Dalam peraturan tersebut dituliskan bahwa air
minum tidak diperkenankan mengandung bakteri coliform dan Escherischia coli.
Standar Nasional Indonesia (SNI) No. 01-3553-2006 menyatakan bahwa air minum kemasan
tidak boleh mengandung bakteri pathogen yaitu Pesudomonas aeruginosa, dan Salmonella.
Selain itu cemaran mikrobanya tidak boleh lebih besar dari 100 koloni/ml.
USP 28 untuk Purified Water (PW) memiliki persyaratan mikrobiologi air adalah 100 CFU/ml
dan untuk Water for Injection (WFI) sebesar 10 CFU/ml serta batas cemaran endotoxin 0,25
EU/ml.
Untuk mengetahui jumlah coliform di dalam sebuah sampel digunakan metode Most Probable
Number (MPN). Pemeriksaan kehadiran bakteri Escherichia coli dari air dilakukan berdasarkan
penggunaan medium kaldu laktosa yang ditempatkan di dalam tabung reaksi berisi tabung Durham
(tabung kecil yang letaknya terbalik, digunakan untuk menangkap gas yang terjadi akibat fermentasi
laktosa menjadi asam dan gas).
3
Uji Kualitatif Coliform
Uji kualitatif koliform secara lengkap terdiri dari tiga tahap, yaitu uji penduga (presumprtive test),
uji penguat (confirmed test), dan uji pelengkap (completed test). Uji penduga juga merupakan uji
kuantitatif koliform menggunakan metode MPN.
1. Uji penduga (presumprtive test)
Merupakan tes pendahuluan tentang ada tidaknya kehadiran bakteri coliform berdasarkan
terbentuknya asam dan gas disebabkan karena fermentasi laktosa oleh bakteri golongan coli.
Terbentuknya asam dilihat dari kekeruhan pada media laktosa dan gas yang dihasilkan dapat
dilihat dalam tabung Durham berupa gelembung udara. Mikroba-mikroba ini mempunyai
kemampuan menggunakan laktosa sebagai sumber karbon (mikroba enterik lainnya tidak mampu
menggunakan sumber laktosa sebagai sumber karbon). Tabung dinyatakan positif jika terbentuk
gas sebanyak 10% atau lebih dari volume di dalam tabung Durham. Banyaknya kandungan
bakteri dapat dilihat dengan menghitung tabung yang menunjukkan reaksi positif terbentuk asam
dan gas dan dibandingkan dengan tabel MPN. Metode MPN dilakukan untuk menghitung jumlah
mikroba di dalam sampel yang berbentuk cair. Bila inkubasi 1 x 24 jam hasilnya negative, maka
dilanjutkan dengan inkubasi 2 x 24 jam pada suhu 350C. Jika dalam waktu 2 x 24 jam tidak
terbentuk gas dalam tabung Durham, dihitung sebagai hasil negatif. Jumlah tabung yang positif
dihitung pada masing-masing seri. MPN penduga dapat dihitung dengan melihat tabel MPN.
4
2. Uji penguat (confirmed test)
Hasil uji dugaan dilanjutkan dengan uji ketetapan. Uji ini meliputi confirmed test untuk
Coliform dan confirmed test untuk Fecal Coliform dan Escherichia coli. Confirmed test untuk
Coliform dilakukan dengan mengkulturkan hasil yang positif dari uji penduga ke dalam media
Brilliant Green Lactose Bile (BGLB) broth sebagai media selektif dan diferensial. BGLB
merupakan media selektif yang mengandung asam empedu sehingga dapat menghambat bakteri
Gram positif selain Coliform.terbentuknya gas dalam media Lactose Broth (LB) atau dalam
media BGLB tidak selalu menunjukkan bakteri Coli karena mikroba lainnya mungkin juga ada
yang dapat memfermentasikan laktosa dengan membentuk gas, misalnya bakteri asam laktat dan
beberapa khamir tertentu. Oleh karena itu, perlu dilakukan uji penguat pada media Eosin
Methylene Blue Agar (EMBA) dengan cara gores kuadran. Semua tabung dan cawan Petri di
inkubasikan pada suhu 35 – 370C selama 24 jam.
Dalam uji penguat ini juga menggunakan media selektif diferensial seperti Eosin Methylene
Blue Agar (EMBA) atau Endo Agar. EMBA berisi indikator methylen blue yang menghambat
pertumbuhan bakteri Gram positif. Keberadaan lingkungan yang asam, indikator ini membentuk
senyawa kompleks yang dipresipitasikan ke luar sel kelompok Coliform memproduksi warna
hitam dan hijau metalik. Reaksi ini karakteristik untuk Escherichia coli. Apabila terdapat koloni
berwarna merah muda dengan lendir, ini merupakan kelompok Coliform lainnya. Endo agar
berisi nutrisi dengan indikator Fuchsin yang akan membentuk senyawa kompleks yang dapat
mengubah warna media menjadi berwarna merah muda sedikit gelap. Jumlah cawan EMBA atau
Endo Agar pada masing-masing pengenceran yang menunjukan adanya pertumbuhan Coliform,
baik fekal maupun nonfekal, dihitung, dan MPN penguat dapat dihitung dari tabel MPN.
3. Uji pelengkap (completed test)
Pengujian selanjutnya dilanjutkan dengan uji kelengkapan untuk menentukan bakteri
Escherichia coli. Dari koloni yang berwarna pada uji ketetapan diinokulasikan ke dalam medium
kaldu laktosa dan medium agar miring Nutrient Agar (NA), dengan jarum Ose inokulasi secara
aseptik. Diinkubasi pada suhu 370C selama 1 x 24 jam. Bila hasilnya positif terbentuk asam dan
gas pada kaldu laktosa, maka sampel positif mengandung Escherichia coli. Dari media agar
miring Nutrient Agar (NA) dibuat pewarnaan Gram dimana bakteri Escherichia coli menunjukan
Gram negatif berbentuk batang pendek. Untuk membedakan bakteri golongan coli fekal (berasal
dari tinja hewan berdarah panas), pekerjaan dibuat duplo, dimana satu seri diinkubasi pada suhu
370C (untuk golongan koli), dan satu seri diinkubasikan pada suhu 420C (untuk golongan koli
fekal). Bakteri golongan koli tidak dapat tumbuh dengan baik pada suhu 42 0C , sedangkan
golongan koli fekal dapat tumbuh dengan baik pada suhu 420C.
Standar Nasional Indonesia (SNI) mensyaratkan tidak adanya coliform dalam 100 mL air minum.
Akan tetapi, United States Enviromental Protection Agency (USEPA) lebih longgar persyaratan uji
coliform nya, mengingat coliform belum tentu menunjukkan adanya kontaminasi feses manusia, apalagi
adanya patogen. USEPA mensyaratkan presence/absence test untuk coliform pada air minum, dimana dari
40 sampel air minum yang diambil paling banyak 5% boleh mengandung coliform. Apabila sampel yang
diambil lebih kecil dari 40, maka hanya satu sampel yang boleh positif mengandung coliform. Meskipun
demikian, USEPA mensyaratkan pengujian indikator sanitasi lain seperti protozoa Giardia lamblia dan
bakteri Legionella.
Uji Identifikasi dengan melakukan reaksi IMVIC (Indole, Methyl red, Voges-Proskauer test, penggunaan
Citrat)
5
1. Indol
Asam amino triptofan merupakan komponen asam amino yang lazim terdapat pada protein.
Sehingga asam amino ini dengan mudah dapat digunakan oleh mikroorganisme akibat penguraian
protein. Bakteri tertentu seperti misalnya Escherichia coli mampu menggunakan triptofan sebagai
sumber karbon. Escherichia coli menghasilkan enzim triptofanase yang mengkatalisasikan
penguraian gugus indol dari triptofan. Dalam media biakan, indol menumpuk sebagai produk
buangan, sedangkan bagian lainnya dari molekul triptofan (asam piruvat dan NH4+) dapat
digunakan untuk memenuhi kebutuhan zat hara mikroorganisme. Reagens bereaksi dengan indol
dan menghasilkan senyawa yang tidak larut dalam air dan berwarna merah pada permukaan
medium.
Untuk uji ini digunakan media semi padat yang kaya akan tritofan. Untuk melihat adanya
indol dapat digunakan beberapa reagens yaitu Kovacs, Gore, Ehrlich dan Ehrlich-Bohme. Semua
reagens tersebut mengandung para-dimetil-aminobenzaldehida. Dalam praktikum digunakan
reagens Ehrlich-Bohme yang terdiri reagens A dan reagens B. Media untuk melihat pembentukan
indol yang digunakan di laboratorium bersifat semi padat. Oleh karena itu, dapat digunakan juga
untuk melihat pergerakan bakteri. Jika bakteri bergerak akan terlihat pertumbuhan di sekitar
tusukan dan juga pada permukaan media. Media indol diinokulasikan dengan menusukkan jarum
ke dalam media semi padat.
2. Methyl red
Pada kaldu gula yang berisi tabung Durham, dapat diketahui kemampuan mikroorganisme
untuk memfermentasikan karbohidrat, tetapi hasil produksi fermentasi tidak diketahui. Dalam
praktikum digunakan media MR-VP untuk mengetahui fermentasi asam campuran atau
fermentasi butanadiol.
Uji methyl red digunakan untuk menentukan adanya fermentasi asam campuran. Beberapa
bakteri memfermentasikan glukosa dan menghasilkan berbagai produk yang bersifat asam
sehingga akan menurunkan pH media pertumbuhannya menjadi 5.0 atau lebih rendah.
Penambahan indikator pH ”methyl red” dapat menunjukkan adanya perubahan pH menjadi asam.
Methyl Red berwarna merah pada lingkungan dengan pH 4.4 dan berwarna kuning dalam
lingkungan dengan pH 6.2.
Fermentasi asam campuran ditentukan dengan cara menumbuhkan mikroorganisme dalam
kaldu yang mengandung glukosa, dan setelah masa inkubasi menambahkan reagens methyl red ke
dalam kaldu. Bila terjadi fermentasi asam campuran kaldu biakan akan tetap berwarna merah.
Bila tidak terjadi fermentasi asam campuran maka kaldu biakan berubah menjadi kuning setelah
penambahan reagens methyl red. Uji ini sangat berguna dalam identifikasi kelompok bakteri yang
menempati saluran pencernaan.
3. Voges-Proskauer
Uji ini digunakan untuk mengidentifikasi mikroorganisme yang melaksanakan fermentasi 2,3butanadiol. Bila bakteri memfermentasi karbohidrat menjadi 2,3-butanadiol sebagai produk
utama, akan terjadi penumpukan bahan tersebut dalam media pertumbuhan. Penambahan 40%
KOH dan 5% larutan alphanaphtol dalam ethanol dapat menentukan adanya asetoin
(asetilmetilkarbonil), suatu senyawa pemuka dalam sintesis 2,3-butanadiol. Pada penambahan
KOH, adanya asetoin ditunjukan adanya perubahan warna kaldu menjadi merah muda. Perubahan
warna ini diperjelas dengan penambahan larutan alpha-naphtol. Perubahan warna kaldu biakan
lebih jelas pada bagian yang berhubungan dengan udara. Karena sebagian 2,3-butanadiol
dioksidasikan kembali menjadi asetoin. Sehingga memperjelas hasil reaksi. Berdasarkan hal ini
tabung yang berisi kaldu dikocok sehingga berbuih, kemudian dibuka tutup tabungnya dan
dimiringkan di atas meja.
6
Uji Voges-Proskauer sebenarnya merupakan uji tidak langsung untuk mengetahui adanya 2,3butanadiol dan selalu didapatkan secara serentak, sehingga uji VP absah untuk menentukan
adanya 2,3-butanadiol.
4. Penggunaan Citrat
Uji Sitrat digunakan untuk melihat kemampuan mikroorganisme menggunakan sitrat sebagai
satu-satunya sumber karbon dan energi. Untuk uji ini dapat digunakan medium sitrat – Koser
berupa medium cair atau medium sitrat – Simmon berupa medium padat. Simmon’s citrate agar
merupakan medium sintetik dengan Na sitrat sebagai satu-satunya sumber karbon, NH4+ sebagai
sumber N dan brom thymol blue sebagai indikator pH, sedangkan medium sitrat-Koser tidak
mengandung indikator. Bila mikroorganisme mampu menggunakan sitrat, maka asam akan
dihilangkan dari medium biakan, sehingga menyebabkan peningkatan pH dan mengubah warna
medium dari hijau menjadi biru. Perubahan warna dari hijau menjadi biru menunjukan bahwa
mikroorganisme mampu menggunakan sitrat sebagai satu-satunya sumber karbon. Sedangkan
para medium sitrat-Koser kemampuan menggunakan sitrat ditunjukkan oleh kekeruhan yang
menandakan adanya pertumbuhan.
7
BAB III
METODOLOGI PENELITIAN
A. ALAT DAN BAHAN

Alat :
1. Spiritus
2. Tabungreaksi
3. Jarumose
4. Autoklaf
5. Laminar Air Flow
6. Incubator
7. Oven
8. Vortex

Bahan:
1. Lactose Broth
2. Briliant Green Lactose Bile Broth (BGLB)
3. Eosin Methylene Blue Agar (EMBA)
4. Nutrient Agar
5. Nutrient Broth
6. Simmon’s Citrate Agar
7. Salmonella Shigella Agar (SSA)
8. Plate Count Agar
9. Mannitol Salt Agar (MSA)
10. Staphylococcus aureus
11. Eschericia coli
B. CARA KERJA

Uji penduga (presumptive test)
1. Siapkan media Lactosa Broth dengan indikator merah fenol atau ungu bromkresil, atur
pH 7-7,2. Masukkan media ini ke dalam 10 tabung reaksi masing-masing 5 mL bersama
tabung Durham yang terbalik. Catatan : tabung Durham harus berisi media dan tidak
boleh ada gelembung udara dalam tabung Durham. Tutup rapat semua tabung dengan
kapas dan sterilkan dengan autoklaf pada suhu 1210C, tekanan 1 atm selama 15 menit.
2. Masukkan volume sampel masing-masing 10 mL ke dalam 3 tabung kelompok I.
3. Masukkan volume sampel masing-masing 1 mL ke dalam 3 tabung kelompok II.
4. Masukkan volume sampel masing-masing 0,1 mL ke dalam 3 tabung kelompok III.
5. Masukkan 1 mL air steril ke dalam satu tabung sebagai kontrol sterilitas.
6. Dapat juga menggunakan 1 mL kultur E. coli atau 1 mL kultur S. aureus ke dalam 2
buah tabung sisa diatas sebagai kontrol positif dan kontrol negatif.
7. Inkubasi semua tabung pada suhu 35-37 ± 0,50C selama 24± 2jam. Amati terbentuknya
asam dan gas pada tabung Durham. Adanya asam dan gas disebabkan karena fermentasi
laktosa oleh bakteri coliform, asam dilihat dari perubahan warna ungu menjadi kuning
8
dan gas dapat dilihat dalam tabung Durham berupa gelembung udara. Inkubasi lagi (24
jam sisanya) pada tabung yang tidak terbentuk gas. Banyaknya kandungan bakteri
coliform dpat dilihat dengan menghitung tabung yang menunjukkan reaksi positif dan
lihat Tabel MPN.
8. Setelah inkubasi hasilnya positif dilanjutkan dengan uji penegasan (confirmed test).

Uji penegasan (confirmed test)
1. Siapkan 12 tabung yang telah berisi masing-masing 10 mL Brilliant Green Lactose Bile
(BGLB) Broth dengan tabung Durham didalamnya (dibagi menjadi 3 kelompok masingmasing 3 buah tabung dan 3 buah tabung sebagai kontrol sterilitas, kontrol positif dan
kontrol negatif).
2. Masukkan satu ose inokulum dari tiap-tiap tabung hasil uji presumptive test yang
menghasilkan uji positif ke dalam tiap-tip tabung media BGLB.
3. Masukkan masing-masing 1 mL air steril atau 1 mL kultur E. coli atau 1 mL kultur S.
aureuske dalam 3 buah tabung sisa yang telah berisi BGLB sebagai kontrolsterilitas,
kontrol positif dan kontrol negatif.
4. Inkubasi semua tabung pada suhu 35-37 ± 0,50C selama 48±3jam. Amati terbentuknya
gas pada tabung Durham dalam waktu 24-48 jam lalu catat hasilnya. Inkubasi lagi (24
jam sisanya) pada tabung yang tidak terbentuk gas (negatif).
5. Interpretasi hasil positif jika media keruh dan terbentuk gas (harus kedua-duanya).
Interpretasi hasil negatif jika tidak terdapat pertumbuhan dan tidak terbentuk gas.
6. Hitung kisaran konsentrasi Coliform (MPN/mL) dengan menghitung tabung positif
kemudian cocokkan dengan tabel MPN berasarkan dari perhitungan uji dugaan. Perkiraan
konsentrasi yang didapat adalah penegasan adanya Coliform.
7. Untuk meyakinkan adanya Escherichia coli, goreskan 1 ose dari kultur tabung positif
(mengandung gas) dari media BGLB ke dalam cawan yang berisi media Endo Agar atau
Eosin Methylene Blue Agar (EMBA). Inkubasi kultur dalam cawan tersebut pada
(inverted Petri dishes)suhu 35-37 ± 0,50C selama 24± 2jam.
8. Interpretasikan sebagai E. coli dalam media EMBA jika memiliki ciri-ciri koloni datar,
baerwarna hitam atau bintik biru kehijauan di tengah koloni dengan atau tanpa warna
kilat logam (metallic sheen).

Uji lengkap (completed test)
1. Inokulasikan satu atau lebih koloni yang tumbuh dalam setiap cawan ke dalam media
Lactose Broth (dengan tabung Durham didalamnya) dan koloni tersebut juga goreskan ke
dalam Nutrient Agar atau Tryptone Soy Agar miring.
2. Inkubasi kultur dari cawan dan agar miring tersebut di atas pada suhu 35-37 ± 0,50C
selama 24±2jam atau 48±3jam.
3. Intepretasikan hasil dikatakan positif jika media keruh dn terbentuk gas (harus keduaduanya) baik pada inkubasi 24 jam atau 48 jam pada media Lactose Broth dan merupakan
Gram negatif, tidak membentuk spora, bentuk sel bulat memanjang (rod shape) setelah
dilakukan pengecatan Gram. Namun jika setelah inkubasi 48 jam, gas baru diproduksi
dan setelah dilakukan pengecatan Gram hasilnya Gram positif tetapi tidak berspora, maka
hasil ini merupakan hasil positif keberadaan kelompok Coliform dalam uji completed
test.
4. Untuk mempertegas hasil, lakukan uji IMVIC.
9

Uji pewarnaan Gram dan morfologi sel
1. Buat preparat ulas (smear) yng telah difiksasi dari tabung Nutrient Agar atau Tryptone
Soy Agar yang diduga E. coli.
2. Teteskan kristal violet sebagai pewarna utama, usahakan semua ulasan terwarnai dan
tunggu selama ± 1 menit, kemudian cuci dengan air mengalir.
3. Teteskan mordant(lugol’s iodine) lalu tunggu ± 1menit, kemudian cuci dengan air
mengalir.
4. Beri larutan pemucat (eanol 96%) setetes demi setetes hingga etanol yang jatuh berwarna
jernih. Jangan sampai terlalu banyak (overdecolorized), kemudian cuci dengan air
mengalir.
5. Teteskan counterstain (safranin) dan tunggu selama ± 45 detik, kemudian cuci dengan air
mengalir.
6. Keringkan preparat dengan kertas tissue yang ditempelkan di sisi belakang ulasan (jangan
sampai merusak ulasan) lalu biarkan mengering di udara.
7. Interpretasikan sebagai Gram negatif berwarna merah dan sebagai Gram positif berwarna
ungu. Jika kultur dugaan tersebut E. coli maka seharusnya menunjukkan sifat Gram
negatif dan sel berbentuk batang pendek. Gunakan kultur Bacillus subtilis sebagai kontrol
Gram positif dan kultur E. coli sebagai kontrol Gram negatif.
8. Jika kultur dugaan tersebut sifat Gram negatif dan berbentuk batang, maka diinokulasikan
kembali ke media Lactose Broth untuk mengkonfirmasi ulang terbentuknya gas.
Kemudian semua kultur dugaan kedua jenis diatas dilakukan uji IMVIC.

Uji IMVIC (produksi indol, uji Methyl Red, uji Voges-Proskauer, uji penggunaan
sitrat)
1. Uji produksi indol; uji ini akan membedakan bakteri yang mampu atau tidak mampu
memproduksi indol dari Tryptone.
a. Inokulasikan kultur dugaan dari hasil ke dalam media Tryptone Broth lalu inkubasi
pada suhu 350C selama 24±2jam.
b. Tambahkan 0,2-0,3 mL reagen Kovac’s. jika terbentuk cincin merah pada bagian atas
tabung maka bakteri dapat memproduksi indol (indol positif) dan bila terbentuk
cincin kuning maka disimpulkan sebagai indol negatif. Jika kultur dugaan tersebut E.
coli maka seharusnya menunjukkan hasil positif dan sel berbentuk batang
pendek.Gunakan kultur Bacillus subtilis sebagai kontrol negatif dan kultur E. coli
sebagai positif.
2. Uji Methyl Red. Uji ini akan membedakan bakteri yang mampu memproduksi asam dari
glukosa dan Methyl Red sebagai indikator penurunan pH (pH < 4,4 = merah; pH 5-5,8 =
oranye; pH > 6 = kuning).
a. Inokulasikan kultur dugaan tersebut di atas ke MR-VP Broth lalu inkubasi pada suhu
350C selama 48±2jam.
b. Tambahkan 5 tetes larutan Methyl Redke dalam tabung. Jika kultur dugaan tersebut
E. coli maka seharusnya menunjukkan hasil positif. Gunakan kultur Enterobacter
spp. sebagai kontrol negatif dan kultur E. coli sebagai kontrol positif.
3. Uji Voges-Proskauer. Uji ini dapat membedakan bakteri yang mampu memproduksi
acethylmethyl-carbinol atau tidak. Senyawa tersebut dideteksi dengan penambahan
potassium hydroxide yang akan membentuk diacethyl yang bereaksi dengan peptone
menghasilkan warna merah.
10
a. Inokulasikan kultur dugaan tersebut ke MR-VP Broth lalu inkubasi pada suhu 350C
selama 48±2jam.
b. Setelah watu 24 jam pindahkan 1 mL kedalam tabung kosong lalu tambahkan 0,6 mL
larutan α-naphthol dan 0,2 mL 40% KOH.
c. Tambahkan beberapa kristal creatine. Kocok kemudian biarkan selama 2 jam. Uji VP
dinyatakan positif bila warna berubah menjadi merah. Jika kultur dugaan tersebut E.
coli maka seharusnya menunjukkan hasil tidak ada perubahan warna (negatif).
Gunakan kultur Enterobacter spp. sebagai kontrol negatif dan kultur E. coli sebagai
kontrol positif.
4. Uji penggunaan sitrat. Uji ini membedakan bakteri yang mampu menggunakan citrate
sebagai sumber nutrisinya.
Inokulasikan kultur dugaan tersebut media Simmon Citrate (SC) lalu inkubasi pada suhu
350C selama 96±2jam. Reaksi positif jika terdapat pertumbuhan media yang berwarna
hijau berubah menjdi biru, reaksi negatif jika tidak ada pertumbuhan dan media tetap
hijau. Jika kultur dugaan tersebut E. coli maka seharusnya menunjukkan hasil tidak ada
perubahan warna (negatif). Gunakan kultur Klebsiella pneumoniae sebagai kontrol positif
dan kultur E. coli sebagai kontrol negatif.
11
BAB IV
HASIL DAN PEMBAHASAN
A. HASIL
 Tabel Uji Penduga
Kelompok tabung
Hasil
Keterangan
Hasil
10 ml
Tidak ada
gelembung udara
dalam tabung
durham
0
1 ml
Tidak ada
gelembung udara
dalam tabung
durham
0
0,1 ml
Tidak ada
gelembung udara
dalam tabung
durham
0
3 Mpn/ml
12
Kontrol
Hasil
Keterangan
Positif (Escherichia
colli)
Terdapat gelembung udara dalam
tabung durham
Negatif
(Staphylococcus
aureus)
Tidak terdapat gelembung udara
dalam tabung durham
B. PEMBAHASAN
Metode MPN (Most Probable Number) untuk uji kualitas air saat praktikum menggunakan
koloform sebagai indikator. Kelompok koliform mencakup bakteri yang aerobik dan anaerobik
fakultatif, berbentuk batang atau basil, gram negatif dan tidak membentuk spora. Uji penduga
dilakukan dengan menginkubasi air sampel yang telah dimasukkan ke dalam tabung reaksi yang
berisi media lactose broth dan tabung Durham, hasil yang diperoleh yakni pada tabung 10 ml, 1
ml, dan 0,1 ml tidak terbentuk gelembung dalam tabung durham yang mengindikasikan tidak
adanya kolifrom pada air sampel dengan indeks MPN 3MPN/mL.
Dari hasil tersebut kemudian di bandingkan dengan hasil masing-masing kelompok ternyata
hasilnya sama yaitu semua tabung negatif karena tidak terdapat gas dalam tabung durham, karena
sampel hasil negatif maka tidak dilakukan uji penguat.
13
BAB V
KESIMPULAN
1. Kualitas air (sampel air) yang telah disediakan dari laboratorium mikrobiologi Fakultas Farmasi
Universitas Pancasila merupakan sampel yang dapat dikatakan baik dan dapat dikonsumsi
dengan aman karena dengan uji penduga tidak ditemukan adanya gelembung gas ataupun asam.
Dapat disimpulkan bahwa air yg diuji bebas dari mikroba.
2. Tidak terdapat cemaran bakteri coliform dalam sampel air yang sudah disediakan dari
laboratorium mikrobiologi Fakultas Farmasi Universitas Pancasila dengan dilakukan uji
penduga karena tidak ditemukannya gelembung gas dan tidak terjadi perubahan warna yang
menunjukan adanya asam yang merupakan hasil fermentasi laktosa yang dilakukan oleh bakteri
coliform. Angka Paling Mungkin adanya bakteri dalam sampel adalah 3 MPN/ mL yang berarti
mungkin ada bakteri dengan jumlah 3 pada setiap mL sampel.
14
BAB VI
DAFTAR PUSTAKA
http://jurnal.fk.unand.ac.id/articles/vol_1no_3/129-133.pdf. Kualitas Air Minum Yang
Diproduksi Depot Air Minum Isi Ulang Di Kecamatan Bungus Padang
Berdasarkan Persyaratan Mikrobiologi. Rido Wandrivel, Netty Suharti, Yuniar Lestari.
http://www.unhas.ac.id/hasbi/TOT-Atm-eSpr/eSpring%20TTT/background/Air%203.pdf.
Analisis Kualitatif Bakteri . Ni Luh Putu Manik Widiyanti dan Ni Putu Ristiati.
Benson. 2001. Microbiological Applications : Laboratory Manual in General Microbiology. The
McGraw−Hill Companies.
Kar, Autosh. Pharmaceutical Microbiology. New Delhi : NEW AGE INTERNATIONAL
LIMITED PUBLISHERS.
Goldman, Emanuel & Lorrence H. Green (editor). Practical Handbook of Microbiology. CRC
Press, Taylor & Francis Group.
15