225 – 232 - WordPress.com

Jurnal Biologi Indonesia diterbitkan oleh Perhimpunan Biologi Indonesia. Jurnal ini memuat hasil
penelitian ataupun kajian yang berkaitan dengan masalah biologi yang diterbitkan secara berkala dua
kali setahun (Juni dan Desember).
Editor
Ketua
Prof. Dr. Ibnu Maryanto
Anggota
Prof. Dr. I Made Sudiana
Dr. Deby Arifiani
Dr. Izu Andry Fijridiyanto
Dewan Editor Ilmiah
Dr. Abinawanto, F MIPA UI
Dr. Achmad Farajalah, FMIPA IPB
Prof. Dr. Ambariyanto, F. Perikanan dan Kelautan UNDIP
Dr. Didik Widiyatmoko, Pusat Konservasi Tumbuhan Kebun Raya-LIPI
Dr. Dwi Nugroho Wibowo, F. Biologi UNSOED
Dr. Gatot Ciptadi F. Peternakan Universitas Brawijaya
Dr. Parikesit, F. MIPA UNPAD
Dr. Faisal Anwari Khan, Universiti Malaysia Sarawak Malaysia
Assoc. Prof. Monica Suleiman, Universiti Malaysia Sabah, Malaysia
Dr. Srihadi Agungpriyono, PAVet(K), F. Kedokteran Hewan IPB
Y. Surjadi MSc, Pusat Penelitian ICABIOGRAD
Drs. Suharjono, Pusat Penelitian Biologi-LIPI
Dr. Tri Widianto, Pusat Penelitian Limnologi-LIPI
Dr. Witjaksono Pusat Penelitian Biologi-LIPI
Sekretariat
Eko Sulistyadi M.Si, Dewi Citra Murniati M.Si, Hetty Irawati PU, S.Kom
Alamat
d/a Pusat Penelitian Biologi - LIPI
Jl. Ir. H. Juanda No. 18, Bogor 16002 , Telp. (021) 8765056
Fax. (021) 8765068
Email : [email protected]; [email protected]; [email protected]; [email protected]
Website : http://biologi.or.id
Jurnal Biologi Indonesia :
Akreditasi: No. 657/AU3/P2MI-LIPI/07/2015.
JURNAL BIOLOGI
INDONESIA
Diterbitkan Oleh:
Perhimpunan Biologi Indonesia
Bekerja sama dengan
PUSLIT BIOLOGI-LIPI
OBITUARI
Redaksi Jurnal Biologi Indonesia telah kehilangan seorang editor penelaah Dr. Ir Sri Sulandari, M.Sc.
yang telah berpulang kerahmat Allah SWT pada tanggal 18 Agustus 2015 Jam 16.10 di RSCM,
Jakarta. Jabatan terakhir almarhumah sebagai Peneliti Madya/IVc di Pusat Penelitian Biologi-LIPI
sebagai ahli DNA Molekuler yang menekuni kajian DNA pada ayam lokal Indonesia dan berbagai
hidupan liar khususnya pada burung. Tiga tahun terakhir sangat aktif berusaha menyelamatkan
populasi kambing Gembrong di Kabupaten Karanganyar, Bali. Almarhumah meninggalkan seorang
suami Prof. Dr. Muladno, MSA yang bekerja sebagai guru besar di Fakultas Peternakan, Institut
Pertanian bogor dan saat ini juga sebagai Direktur Jendral Peternakan dan Kesehatan Hewan,
Kementerian Pertanian, serta dua anak laki-laki Aussie Andry Vermarchnanto M. dan Endyea
Mendelian.
Jurnal Biologi Indonesia yang diterbitkan oleh PERHIMPUNAN BIOLOGI INDONESIA bekerjasama
dengan PUSLIT BIOLOGI-LIPI. Edisi volume 11 No. 2 tahun 2015 memuat 15 artikel lengkap dan
satu artikel tulisan pendek. Penulis pada edisi ini sangat beragam yaitu dari Balai Besar Penelitian
Veteriner-Deptan, Balai Besar Penelitian dan Pengembangan Bioteknologi dan Sumberdaya Genetik
Pertanian, Bogor, Balai Penelitian Tanaman Sayuran Lembang, Bandung, Departemen Konservasi
Sumberdaya Hutan dan Ekowisata, Fakultas Kehutanan-IPB, Dept. Biokimia FMIPA-IPB, Institut
Sains dan Teknologi Nasional Jakarta, Pusat Penelitian dan Pengembangan Sumberdaya Pesisir &
Laut, Balitbang Kelautan & Perikanan, Kementerian Kelautan & Perikanan, Departemen Manajemen
Sumberdaya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, IPB. Program Studi Manajemen
Sumberdaya Perairan, Fakultas Ilmu Kelautan dan Perikanan-Universitas Maritim Raja Ali HajiTual, Pusat Konservasi Tumbuhan Kebun Raya–LIPI, Puslit Biologi-LIPI, Puslit Bioteknologi-LIPI.
Jurnal Biologi Indonesia mengucapkan terima kasih dan penghargaan kepada para pakar yang telah
turut sebagai penelaah dalam Volume 11 No 2, Desember 2015:
Dr. Niken Tunjung Murti Pratiwi, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan IPB
Dr. Agus Prijono Kartono, Fakultas Kehutanan IPB
Ir. Drs. Eko Harsono MSi, Puslit Limnologi-LIPI
Dra. Donowati Tjokrokusumo M.Phil, Pusat Teknologi Bioindustri, BPPT
Ir. M. Syamsul Arifin Zein MSi, Puslit Biologi LIPI
Drh. Anang S. Achmadi MSc, Puslit Biologi LIPI
Dr. Yuyu S. Poerba, Puslit Biologi LIPI
Ir. Dwi Agustiyani MSc, Puslit Biologi LIPI
Dr. Apon Zaenal Mustopa, Puslit Bioteknologi LIPI
Dr. Yopi Puslit Bioteknologi LIPI
Dr. Joeni S. Rahajoe, Puslit Biologi LIPI
Dr. Wartka Rosa Farida, Puslit Biologi LIPI
BIOLOGI
Halaman
Efikasi Vaksin Inaktif Bivalen Avian Influenza Virus Subtipe H5N1 (Clade 2.1.3. dan Clade
2.3.2) di Indonesia
NLP. Indi Dharmayanti & Risa Indriani
169
Klon-klon Kentang Transgenik Hasil Persilangan Terseleksi Tahan terhadap Penyakit
Hawar Daun Phytophthora infestans Tanpa Penyemprotan Fungisida di Empat Lapangan
Uji Terbatas
Alberta Dinar Ambarwati, Kusmana, & Edy Listanto
177
Penambahan Inokulan Mikroba Selulolitik pada Pengomposan Jerami Padi untuk Media
Tanam Jamur Tiram Putih (Pleurotus ostreatus)
Iwan Saskiawan
187
Identifikasi Molekular dan Karakterisasi Morfo-Fisiologi Actinomycetes Penghasil Senyawa
Antimikroba
Arif Nurkanto & Andria Agusta
195
Populasi dan Kesesuaian Habitat Langkap (Arenga obtusifolia Mart.)
di Cagar Alam Leuweung Sancang, Jawa Barat
Didi Usmadi, Agus Hikmat, Joko Ridho Witono, & Lilik Budi Prasetyo
205
Optimasi Produksi Enzim Amilase dari Bakteri Laut Jakarta (Arthrobacter arilaitensis )
Awan Purnawan, Y. Capriyanti, PA. Kurniatin, N. Rahmani, & Yopi
215
Pengaruh Antioksidan Eksopolisakarida dari Tiga Galur Bakteri Asam Laktat pada Sel
Darah Domba Terinduksi tert-Butil Hidroperoksida (t-BHP)
Fifi Afiati, Nina Ainul Widad, & Kusmiati
225
Ekosistem Lamun sebagai Bioindikator Lingkungan di P. Lembeh, Bitung, Sulawesi Utara
Agustin Rustam, Terry L. Kepel, Mariska A. Kusumaningtyas, Restu Nur Afi
Ati, August Daulat, Devi D. Suryono, Nasir Sudirman, Yusmiana P. Rahayu,
Peter Mangindaan, Aida Heriati, & Andreas A. Hutahaean
233
Identification of Bioactive Compound from Microalga BTM 11 as Hepatitis C Virus RNA
Helicase Inhibitor
Apon Zaenal Mustopa, Rifqiyah Nur Umami, Prabawati Hyunita Putri, Dwi
susilaningsih, & Hilda Farida
243
Kemampuan Cerna Protein dan Energi Metabolisme Perkici Pelangi (Trichoglossus
haematodus )
Rini Rachmatika & Andri Permata Sari
253
Optimasi Enzim α-Amilase dari Bacillus amyloliquefaciens O1 yang Diinduksi Substrat
Dedak Padi dan Karboksimetilselulosa
Yati Sudaryati Soeka, Maman Rahmansyah, & Sulistiani
259
Kajian Aspek Ekologis dan Daya Dukung Perairan Situ Cilala
Niken T.M. Pratiwi, Sigid Hariyadi, Inna Puspa Ayu, Aliati Iswantari,
Novita MZ, & Tri Apriadi
267
Halaman
Penanda Genetik Tarsius (Tarsius spp.) dengan Menggunakan Gen Cytochrome Oxidase I
275
(COI) DNA Mitokondria (mtDNA) Melalui Metode Sekuensing
Wirdateti, Sri Wijayanti Wulandari, & Paramita Cahyaningrum Kuswandi
Carboxymethyl Cellulose Hydrolyzing Yeast Isolated from South East Sulawesi, Indonesia
Atit Kanti
285
Uji Bakteri Simbiotik dan Nonsimbiotik Pelarutan Ca vs. P dan Efek Inokulasi Bakteri pada
Anakan Turi (Sesbania grandiflora L. Pers.)
Sri Widawati
295
TULISAN PENDEK
Mating behavior of Slow Loris (Nycticebus coucang ) at Captivity
Wartika Rosa Farida & Andri Permata Sari
309
Jurnal Biologi Indonesia 11 (2): 225-232(2015)
Pengaruh Antioksidan Eksopolisakarida dari Tiga Galur Bakteri Asam Laktat pada
Sel Darah Domba Terinduksi tert-Butil Hidroperoksida (t-BHP)
(Antioxidant Effect of Exopolysaccharide From Three Strains of Lactic Acid Bacteria
on Blood Cell of Sheep Induced tert-Butyl Hydroperoxide (t-BHP)
1)
Fifi Afiati1, Nina Ainul Widad2, & Kusmiati1
Pusat Penelitian Bioteknologi-LIPI, Jl Raya Bogor Km 46, Cibinong Bogor 16911
2)
Institut Sains dan Teknologi Nasional - Jl. Moh. Kahfi II, Jagakarsa, Jak-Sel 12640
Email:[email protected]
Memasukkan: Januari 2015, Diterima: April 2015
ABSTRACT
Exopolysaccharides (EPS) are water soluble polymers synthesized by three strains of lactic acid bacteria (LAB)
namely EPS-S1, EPS-S2 and EPS-S7. Some exopolysaccharides (EPSs) produced by lactic acid bacteria (LAB)
present potential health-beneficial properties, such as immune stimulation and antioxidative activities.
Antioxidants function in several ways including preventing the formation of radicals, scavenging free radicals,
formation of hydrogen peroxide and lipid peroxides. The Objectives of this research were to evaluate the
antioxidant activities of exopolysaccharides (EPS) extracts from lactic acid bacteria (LAB). The extracts were
investigated by using in vitro assays induced tersier-Butilhidroperoksida (t-BHP) 6 µg.ml-1 red blood cell
(RBC) for their effects on lipid peroxidation malondealdehyde (MDA) level and activities of some antioxidant
enzymes which includes catalase (CAT) and superoxide dismutase (SOD). Six groups consisted of 3 replicated
per group; (I) normal control, RBC (II) negative control, RBC+ t-BHP (III) positive control, RBC+tBHP+vitamin-C, and (IV-VI) samples, RBC+t-BHP+EPS (S1, S2 and S7) extracts. The results showed that
exopolysaccharides (EPS) of three strains of lactic acid bacteria (LAB) increased catalase (CAT) and superoxide
dismutase (SOD) enzyme activity and decreased malondealdehyde (MDA) content, exopolysaccharides (EPS)-S2 most
potential to increase the activity of catalase (CAT; 77.46%) and superoxide dismutase (SOD; 33.87%) enzyme and inhibit
the increase malondealdehyde (MDA; 32.19%) levels.
Keywords: exopolysaccharide, lactic acid bacteria, malondealdehyde (MDA), superoxide dismutase (SOD),
catalase (CAT)
ABSTRAK
Eksopolisakarida (EPS) adalah polimer yang larut dalam air, disintesis oleh tiga strain bakteri asam laktat
(BAL) yaitu EPS-S1, EPS-S2 dan EPS-S7. Beberapa EPS diproduksi oleh BAL dan berpotensi meningkatkan
kesehatan, seperti menstimulasi kekebalan tubuh dan meningkatkan aktivitas antioksidan. Antioksidan juga
dapat berfungsi mencegah pembentukan radikal bebas, pembentukan kontrol peroksida dan lipid peroksida.
Penelitian bertujuan untuk mengevaluasi aktivitas antioksidan eksopolisakarida (EPS) yang dihasilkan dari
ekstrak BAL. Ekstrak diuji secara in vitro dengan menginduksi tersier-Butilhidroperoksida (t-BHP) 6 μg.ml-1
menggunakan sel darah merah (SDM) untuk melihat pengaruh peroksidasi lipid tingkat malondialdehid (MDA)
dan kegiatan dari beberapa enzim antioksidan yang meliputi katalase (CAT) dan superoksida dismutase (SOD).
Terdapat enam kelompok, yaitu: (I) kontrol normal, sel darah merah (SDM) (II) kontrol negatif, sel darah
merah (SDM)+t-BHP (III) kontrol positif, sel darah merah (SDM) + t-BHP + vitamin-C, dan (IV-VI) sel darah
merah (SDM) +t-BHP+ekstrak EPS (S1, S2 dan S7). Hasil penelitian menunjukkan bahwa eksopolisakarida
(EPS) dari tiga galur bakteri asam laktat (BAL) dapat meningkatkan aktivitas enzim katalase (CAT) dan enzim
superoksida dismutase (SOD) serta dapat menurunkan kadar malondaldehid (MDA) khususnya eksopolisakarida (EPS)-S2
yang paling berpotensi untuk meningkatkan aktifitas enzim katalase (CAT; 77.46%) dan superoksida dismutase (SOD;
33.87%) dan menghambat peningkatan kadar malondealdehid (MDA; 32,19%).
Kata Kunci: eksopolisakarida, bakteri asam laktat, malondealdehid (MDA), superoksida dismutase dismutase
(SOD), katalase (CAT)
PENDAHULUAN
Antioksidan merupakan senyawa pemberi
elektron (electron donor) yang memiliki berat
molekul kecil tetapi mampu menginaktivasi
berkembangnya reaksi oksidasi dengan cara
mencegah terbentuknya radikal. Antioksidan
menjadi parameter penting dalam tubuh, jika spesies
oksigen reaktif melebihi jumlah antioksidan di dalam
tubuh, maka akan mengakibatkan kerusakankerusakan pada komponen lipid, protein, maupun
DNA,
kondisi ini disebut sebagai stress
oksidatif. Senyawa oksigen reaktif (ROS,
Reactive Oxygen Species) merupakan senyawa
Afiati dkk.
yang sangat reaktif dalam menghasilkan radikal
bebas, pada kondisi tertentu sangat dibutuhkan
oleh tubuh misalnya untuk membunuh bakteri
yang masuk ke dalam tubuh. Oleh sebab itu,
keberadaanya harus dikendalikan oleh sistem
antioksidan dalam tubuh (Winarsi 2007).
Banyak faktor yang dapat menurunkan aktivitas
antioksidan enzimatis dalam tubuh sehingga
diperlukan asupan tambahan zat antioksidan
dari luar tubuh salah satunya yaitu senyawa
eksopolisakarida (EPS) dari bakteri asam laktat
(BAL) yang diisolasi dari keju dan yogurt. Keju
dan yogurt merupakan produk hasil fermentasi
susu oleh bakteri asam laktat. Keju merupakan
produk olahan susu yang diperoleh dengan cara
menggumpalkan susu penuh (whole milk), susu
skim atau campurannya menggunakan enzim
yang terdapat dalam perut hewan ruminansia
muda (rennet). Yogurt merupakan fermentasi
susu oleh bakteri asam laktat yang mempunyai
rasa yang khas, tekstur semi padat dan halus,
kompak serta rasa asam yang segar (Legowo
2005; Usmiati & Abubakar 2009).
Bakteri asam laktat (BAL) merupakan
kelompok bakteri Gram positif, tidak
membentuk spora, berbentuk kokus atau batang
serta menghasilkan asam laktat sebagai produk
akhir utamanya dalam fermentasi karbohidrat
(Axelsson 2004). Beberapa bakteri asam laktat
(BAL) menghasilkan eksopolisakarida (EPS)
yang berperan membentuk tekstur alami pada
industri yogurt, keju dan makanan penutup
berbasis susu (Tsuda 2013). Eksopolisakarida
(EPS) adalah polisakarida yang disekresikan
dari sel, atau diproduksi pada sel terluar oleh
enzim ekstraseluler. Eksopolisakarida (EPS)
dari bakteri asam laktat (BAL) dapat memberi
efek fungsional pada makanan, meningkatkan
reologi produk susu fermentasi, dan memiliki
efek kesehatan yang menguntungkan. Secara
khusus, eksopolisakarida (EPS) bakteri asam
laktat (BAL) memiliki aktivitas imunostimulan
dan mampu meningkatkan kolonisasi saluran
pencernaan oleh bakteri probiotik dan bertindak
sebagai antioksidan (Polak et al. 2013).
Bisson (2001) menyatakan bahwa bakteri
asam laktat (BAL) dapat memproduksi asam
organik dan senyawa fenol. Kadar asam laktat
yang terus meningkat pada proses fermentasi
mampu meningkatkan aktivitas antioksidan.
226
Asam laktat pada yogurt mengandung αhidroxyacids (AHA) yang berfungsi sebagai
antioksidan dan sering dimanfaatkan untuk
pembuatan kosmetik. Peningkatan aktivitas
antioksidan selain oleh asam laktat dapat disebabkan
oleh metabolit sekunder hasil metabolisme bakteri.
Bakteri probiotik menghasilkan senyawa antioksidan
dalam bentuk vitamin C dan vitamin E
Penelitian ini dilakukan untuk menguji
potensi antioksidan eksopolisakarida (EPS)
bakteri asam laktat (BAL) secara in vitro pada
darah domba yang diinduksi oleh tersierButilhidroperoksida (t-BHP), senyawa ini
merupakan oksidator kuat atau peroksida
organik yang mudah terurai membentuk radikal
bebas tertier butoksi (t-BuO•). Parameter yang diukur
adalah kemampuan eksopolisakarida (EPS) dalam
meningkatkan aktivitas enzim katalase (CAT) dan
enzim superoksida dismutase (SOD) serta menurunkan
kadar malondialdehid (MDA).
BAHAN DAN CARA KERJA
Sampel yang digunakan sebagai sumber
isolat adalah produk fermentasi susu komersial
skala industri, yaitu yogurt (EPS-1, EPS-2) dan
keju (EPS-7). Sampel diencerkan secara seri
pada tabung reaksi berisi larutan garam
fisiologis, media selektif MRS (de Mann
Rogossa Sharpe, Merck) padat dan diinkubasi
selama 48 jam pada suhu 37°C. Isolat bakteri
asam laktat (BAL)
dikarakterisasi dengan
pewarnaan Gram dan divisualisasi di bawah
mikroskop (Leica) perbesaran 1000x.
Produksi dan ekstraksi eksopolisakarida
(EPS) dilakukan menggunakan metode Savadogo
et al. (2004) dan biomassa yang dihasilkan
dikeringkan menggunakan oven vakum pada
suhu 50oC selama ± 2 jam. Karakterisasi
senyawa eksopolisakarida (EPS) dilakukan
dengan kromatografi lapis tipis (KLT) pada
lempeng silica gel GF254 dengan fase gerak
campuran larutan kloroform:metanol:air (7:3:1),
kemudian divisualisasi menggunakan sinar UV.
Analisis jenis karbohidrat eksopolisakarida
(EPS) dilakukan dengan kromatografi cair
kinerja tinggi (KCKT) menggunakan kolom
Aminex® HPX-87H, (300 mm x 7.8 mm),
sedangkan pengujian potensi antioksidan
Pengaruh Antioksidan Eksopolisakarida dari Tiga Strain Bakteri Asam Laktat
dilakukan menggunakan plasma darah domba
dengan mengukur kadar malondialdehid (MDA)
melalui proses sentrifugasi pada kecepatan 3000
rpm, suhu 5oC selama 10 menit, selanjutnya sel
darah (SDM) domba digunakan untuk analisis
aktivitas enzim katalase (CAT) dan enzim
superoksida dismutase (SOD).
Percobaan uji potensi antioksidan ketiga ekstrak
eksopolisakarida (EPS)-S1, eksopolisakarida (EPS)S2 dan eksopolisakarida (EPS)-S7 dibagi dalam enam
kelompok sebagai berikut: Kelompok I: kontrol
normal, tanpa penambahan larutan t-BHP dan bahan
uji, Kelompok II: kontrol negatif, tanpa penambahan
bahan uji, Kelompok III : kontrol positif dengan
penambahan bahan uji (sel darah merah (SDM) + tBHP 6µg/ml + vitamin C 4 bpj), Kelompok IV:
kelompok uji dengan penambahan bahan uji (sel
darah merah (SDM) + t-BHP 6µg/ml
+
eksopolisakarida S1 50 bpj, Kelompok V: kelompok
uji dengan penambahan bahan uji (sel darah
merah (SDM) + t-BHP 6µg/ml + eksopolisakarida
S2 50 bpj, Kelompok VI: kelompok uji dengan
penambahan bahan uji (sel darah merah (SDM) +
t-BHP 6µg/ml + eksopolisakarida S7 50 bpj
Pengukuran Aktivitas enzim katalase (Aebi
1974). sel darah merah (SDM) domba yang
telah ditambah larutan uji dan tersierButilhidroperoksida (t-BHP) diinkubasi pada
suhu ruang selama 15 menit, kemudian
disentrifus selama 10 menit dengan kecepatan
3000 rpm. Penurunan serapan dicatat pada l
240nm. Aktivitas katalase pada suhu 25oC
didefinisikan sebagai makromol peroksida H2O2
yang dikonsumsi per menit per mL sampel
dengan perhitungan sebagai berikut:
Supernatan diekstraksi dengan campuran
kloroform-etanol 96 % (3:5), kemudian disentrifus
dengan kecepatan 2500 rpm selama 10 menit. Fase
air dicampur dengan dapar (buffer) karbonat pH 10.2
Aktivitas katalase (unit/mL) =
[Abs/menit x 1000] x fp
43,6 x
mL Sampel
mL Total
dan epineprin 0.02 M . Serapan larutan diukur pada l
480nm suhu 30oC.
Aktivitas SOD dihitung sebagai berikut:
Plasma darah yang telah ditambah larutan
uji dan tersier-Butilhidroperoksida (t-BHP),
diinkubasi pada suhu 25-30oC selama 15 menit
kemudian disentrifus pada kecepatan 3000 rpm
% Hambatan =
ΔAbs / menit (blanko) - ΔAbs / menit (sampel) x 100%
ΔAbs / menit (blanko)
Aktivitas SOD (unit / mL) = % Hambatan x fp
50%
selama 5 menit. Selanjutnya supernatan ditambah
trichloroacetic acid (TCA) 20% dan tiobarbiturat
(TBA) 0,67%, dipanaskan selama 30 menit pada
suhu 95-100oC dan segera didinginkan. Larutan
diukur pada l 532nm (Satoh 1978; Yagi 1984).
Data hasil pengujian dianalisis menggunakan
ANOVA, dilanjutkan dengan uji Duncan’s
Multiple Range Test (DMRT).
HASIL
Morfologi sel bakteri asam laktat (BAL)
yogurt (S1, S2) dan keju (S7) dapat dilihat pada
Gambar 1 yang menunjukkan bahwa bakteri
asam laktat (BAL) S1 berbentuk batang rantai,
sedangkan bakteri asam laktat (BAL) S2 dan S7
berbentuk kokus.
Bobot kering eksopolisakarida (EPS)
bakteri asam laktat (BAL) tercantum pada
Tabel 1. Karakterisasi eksopolisakarida (EPS)
diuji menggunakan kromatografi lapis tipis
(KLT) untuk memisahkan senyawa secara cepat
menggunakan zat penyerap berupa serbuk halus
yang dilapiskan pada lempeng kaca atau
aluminium. Lempeng kromatografi lapis tipis
(KLT) GF254 mengandung pengikat gipsum dan
indikator fluoresensi timah kadmium sulfida/
mangan timah silikat aktif yang berfluoresensi
pada 254 nm.
Bercak pada kromatografi lapis tipis (KLT)
yang dihasilkan dari senyawa eksopolisakarida
(EPS) ketiga sampel dikerok dan dilakukan
analisis dengan kromatografi cair kinerja tinggi
(KCKT) untuk melihat komponen gula dalam
eksopolisakarida (EPS) bakteri asam laktat
(BAL). Pada analisis kromatografi cair kinerja
tinggi (KCKT), waktu retensi suatu kromatogram
zat uji dibandingkan terhadap waktu retensi
kromatogram larutan baku. Puncak kromatogram
yang mempunyai luas dan waktu retensi yang
sama terhadap baku pembanding pada kondisi
percobaan yang sama menjadi indikator tingginya
hasil identifikasi (Triyati 1985). Hasil analisis
227
Afiati dkk.
menggunakan kromatografi cair kinerja tinggi
(KCKT) dari masing-masing eksopolisakarida
(EPS) S1, S2 dan S7 dapat dilihat pada Tabel 1.
Pengujian potensi antioksidan eksopolisakarida
(EPS) dari bakteri asam laktat (BAL) dapat diamati
melalui peningkatan aktivitas enzim katalase
dan enzim superoksida dismutase (SOD) serta
penurunan kadar malondialdehid (MDA). Hal
ini dilakukan pada sel darah yang mengalami
stres oksidatif oleh tersier-Butilhidroperoksida
(t-BHP).
Aktivitas Enzim Katalase
Enzim katalase (CAT) adalah antioksidan
endogen yang dapat menangkap dan menguraikan
radikal bebas di dalam sel menjadi zat yang kurang
reaktif. Enzim katalase (CAT) memiliki peranan
penting dalam mengkatalisis hidrogen peroksida
(H2O2) menjadi H2O dan O2 serta mencegah
pembentukan gelembung CO2 dalam darah
(Zainuri & Wanandi 2012). Hasil pengukuran
aktivitas enzim katalase (CAT) dari masingmasing kelompok percobaan dapat dilihat pada
Gambar 2.
Aktivitas Enzim Superoksida Dismutase
(SOD)
Superoksida dismutase (SOD) merupakan
enzim yang bekerja dengan cara mengkatalisis
reaksi dismutase radikal anion superoksida
menjadi hidrogen peroksida dan oksigen. Enzim
Tabel 1. Bobot Kering dan Jenis Karbohidrat Eksopolisakarida (EPS) Bakteri Asam Laktat
(BAL)
ini memiliki kemampuan dalam menghambat
autooksidasi epineprin membentuk adenokrom
dalam suasana basa. Aktivitas superoksida
dismutase (SOD) dihambat oleh H2O2 maka
dalam kerjanya superoksida dismutase (SOD)
sangat membutuhkan katalase (Winarsi 2007).
Hasil pengukuran aktivitas enzim superoksida
dismutase (SOD) dari masing-masing kelompok
percobaan dapat dilihat pada Gambar 3.
Kadar Malondialdehid (MDA)
Malondialdehid (MDA) merupakan metabolit
hasil peroksidasi lipid oleh radikal bebas dan
merupakan senyawa yang dapat menggambarkan
aktivitas radikal bebas di dalam sel sehingga
dijadikan sebagai salah satu petunjuk terjadinya
stress oksidatif akibat radikal bebas. Stres
oksidatif menyebabkan kerusakan oksidatif lipid
yang dapat dideteksi dengan peningkatan kadar
malondialdehid (MDA) dalam sel (Nielsen et al.
1997; Zainuri & Wanandi 2012). Pengukuran kadar
malondialdehid (MDA) menggunakan baku
pembanding raetoksipropane (TEP) dapat
menggambarkan aktivitas radikal bebas di dalam sel.
Kurva kalibrasi larutan baku pembanding
tetraetoksipropane (TEP) memberikan persamaan
garis regresi y = 0,095 + 0,470x dan koefisien
korelasi (r) 0,986 yang berarti ada hubungan
linier yang baik antara serapan dengan
konsentrasi tetraetoksipropane (TEP). Data hubungan
serapan dan konsentrasi baku pembanding
tetraetoksipropane (TEP) dapat dilihat pada
Gambar 4. Sedangkan hasil analisis kadar
malondialdehid (MDA) dari masing-masing
kelompok percobaan dapat dilihat pada Gambar
5.
PEMBAHASAN
a
b
c
Gambar 1. Morfologi bakteri asam laktat di bawah
mikroskop perbesaran 10 x100 (a) BAL-S1
(b) BAL-S2 (c) BAL-S7
228
Karakter morfologi sel bakteri asam laktat
(BAL) di bawah mikroskop menunjukkan
perbedaan yaitu S1 (batang), S2 dan S7 (bulat).
Karakterisasi senyawa eksopolisakarida (EPS)
dengan kromatografi lapis tipis dari ketiga
sampel menghasilkan satu bercak dengan
masing-masing nilai Rf sebesar 0,925(S1); 0,875
(S2); dan 0,8875(S7). Hasil kromatografi cair
kinerja tinggi (KCKT) pada Tabel 1 memperlihatkan
bahwa kromatogram yang muncul dari ketiga sampel
eksopolisakarida (EPS) jika dibandingkan dengan
Pengaruh Antioksidan Eksopolisakarida dari Tiga Strain Bakteri Asam Laktat
kromatogram baku pembanding, hasilnya
menunjukkan bahwa ketiga sampel S1, S2 dan
S7 memiliki kecocokan mengandung senyawa
maltoheptaosa. Pada sampel S2 selain maltoheptaosa
teridentifikasi juga senyawa glukosa. Hal ini
menunjukkan bahwa perbedaan jenis bakteri
asam laktat (BAL), menghasilkan eksopolisakarida
(EPS) yang berbeda. Bakteri asam laktat S2
berbeda dari bakteri asam laktat S1 dan S7. Jenis
mikroba yang digunakan dalam proses
fermentasi dapat mempengaruhi produk akhir
yang dihasilkan. Hal ini berkaitan dengan
metabolisme mikroba selama proses fermentasi
bersifat spesifik, maka setiap produk yang
dihasilkan akan lebih spesifik. Demikian pula
dalam pembuatan suatu jenis produk fermentasi,
perbedaan metode dan kondisi proses akan
menghasilkan produk dengan karakteristik yang
berbeda (Legowo 2005).
Pengujian antioksidan dilakukan secara in
vitro menggunakan sel darah merah (SDM)
domba, model ini dipilih karena menghilangkan
pengaruh metabolisme xenobiotik oleh hati,
karena dilakukan di luar tubuh. Pada sel darah
merah (SDM) domba hanya memiliki perangkat
metabolisme yang terbatas, sehingga dimungkinakan
tidak mampu melakukan metabolisme xenobiotik.
Gambar 2. Aktivitas enzim katalase menggunakan
spektrofotometer λ 240 nm
Gambar 3. Aktivitas enzim SOD menggunakan
Spektrofotometer λ 480 nm
Percobaan menggunakan oksidan tersierButilhidroperoksida (t-BHP) yaitu merupakan
oksidator kuat, pada sel darah merah (SDM)
dapat menyebabkan penurunan hemoglobin dan
membentuk radikal bebas tertier butoksi (tBuO•) yang cepat bereaksi dengan asam lemak
tak jenuh dalam sel darah sehingga terjadi
peroksidasi lipid yang menyebabkan perubahan
struktur membran sel darah merah (SDM)
sehingga fluiditas membran yang ditentukaan
oleh asam lemak tak jenuh menurun.
Aktivitas Enzim Katalase
Hasil analisis menunjukkan perbedaan
yang nyata (P<0,05) antara masing-masing
kelompok perlakuan, aktivitas enzim katalase
(CAT) dari eksopolisakarida (EPS) BAL
kelompok perlakuan II
berbeda terhadap
kelompok perlakuan I, III, IV, V, VI. Histogram
pada Gambar 2 menunjukkan bahwa aktivitas
enzim katalase (CAT) pada kelompok II lebih
rendah jika dibandingkan terhadap kelompok I,
hal ini terjadi karena sel darah merah (SDM)
domba pada kelompok II telah diinduksi terlebih
dahulu oleh oksidan tersier-Butilhidroperoksida (tBHP) sehingga katalase yang terkandung dalam
sel darah merah (SDM) domba sebagian telah
Gambar 4. Kurva Kalibrasi Baku TEP menggunakan
spektrofotometer λ 532 nm
Gambar 5. Kadar MDA menggunakan Spektrofotometer pada λ 532 nm
229
Afiati dkk.
digunakan untuk menetralkan radikal dari tersierButilhidroperoksida (t-BHP) tersebut. Hal ini
menyebabkan jumlah katalase (CAT) yang
terkandung dalam sel darah merah (SDM) domba
menjadi berkurang, sehingga kemampuan untuk
menetralkan peroksida H2O2 menurun. Pada
kelompok III sebelum diinduksi oleh tersierButilhidroperoksida (t-BHP), terlebih dahulu
ditambahkan larutan Vitamin C dan pada kelompok
IV, V dan VI telah ditambahkan masing-masing
larutan uji eksopolisakarida (EPS) S1, S2 dan S7 yang
diduga
sebagai
antioksidan.
Senyawa
eksopolisakarida (EPS) dan vitamin C tersebut
bereaksi lebih dahulu dengan oksidan tersierButilhidroperoksida (t-BHP). Kedua senyawa
tersebut, yaitu vitamin C dan sampel uji (S1, S2,
dan S7) bekerja sama dengan katalase (CAT)
untuk melawan radikal peroksida H2O2 sehingga
aktivitas enzim katalase terukur lebih tinggi dari
kelompok I dan II.
Pada kelompok III (kontrol positif) peningkatan
aktivitas enzim katalase (CAT) terhadap kelompok I
(kontrol normal) yaitu sebesar 99,06%, sedangkan
pada masing-masing kelompok IV, V dan VI
peningkatan aktivitas enzim katalase (CAT)
terhadap kelompok I adalah 11,26%; 77,46%; dan
61,50%. Pada kelompok II jika dibandingkan
terhadap kelompok I aktivitas enzim katalase
(CAT) mengalami penurunan sebesar 47.41%.
Penelitian sejenis mengenai proteksi antioksidan
terhadap hati dan ginjal tikus yang mengalami
stres oksidatif oleh karbon tetra klorida (CCL4)
sudah dilakukan oleh Balahoroğlu et al. (2008).
Kedua organ ini sangat rentan terpapar oleh
oksidan yang bersifat endogen maupun eksogen.
Antioksidan yang digunakan yaitu vitamin C,
melatonin (MLT) dan N-acetylcystein (NAC).
Vitamin C dikenal sebagai antioksidan alami
yang melindungi sel. Melatonin, merupakan
antioksidan yang efektif dan mampu menangkap
radikal bebas, melatonin (MLT) berukuran kecil
bersifat lifofilik sehingga mudah masuk ke
membran biologi dan semua bagian sel.
Melatonin mampu melindungi DNA, lipid dan
protein terhadap kerusakan oksidatif. Nacetylcystein (NAC) merupakan molekul kecil
mengandung golongan thiol bersifat antioksidan
untuk menangkap radikal bebas oksigen. Hasil
penelitian tersebut menunjukkan bahwa terapi
dengan vitamin C dan terapi secara kombinasi
230
efektif mencegah stres oksidatif pada hati dan
ginjal, sedangkan melatonin (MLT) lebih efektif
meningkatkan aktivitas enzim, selanjutnya Nacetylcystein (NAC) lebih efektif mencegah
stres oksidatif dan meningkatkan aktivitas
enzim antioksidan. Induksi karbon tetra klorida
(CCL4) menyebabkan penurunan aktivitas enzim
katalase hingga 33,77%, perlakuan antioksidan
melatonin (MLT) dapat meningkatkan aktivitas
enzim pada hewan coba yang diinduksi karbon tetra
klorida (CCL4) hingga 36,21% (Balahoroğlu et al.
2008).
Aktivitas Enzim Superoksida dismutase
(SOD)
Enzim superoksida dismutase (SOD) diketahui
memiliki kemampuan untuk
menghambat
autooksidasi spontan dari epineprin menjadi
adenokrom. Larutan epineprin akan stabil dalam
keadaan suasana asam, tetapi spontan akan
teroksidasi dengan adanya kenaikan pH.
Autooksidasi terjadi paling cepat disertai dengan
terbentuknya adenokrom dengan kecepatan linier
yaitu pada pH 10,2 dan suhu 30°C. Di dalam
tubuh, dengan adanya penambahan dapar
karbonat dalam analisis enzim superoksida
dismutase (SOD) dapat menaikkan pH dan
menyebabkan suasana menjadi basa, sehingga
dapat mempercepat terbentuknya adenokrom.
Hasil analisis menunjukkan terdapat perbedaan
yang nyata (P<0,05) antara masing-masing
kelompok perlakuan, dimana aktivitas enzim
superoksida dismutase (SOD) yang dihasilkan
eksopolisakarida (EPS) bakteri asam laktat
(BAL) kelompok perlakuan II berbeda terhadap
kelompok perlakuan I, III, IV, V, VI. Gambar 3
menunjukkan bahwa pada kelompok II (kontrol
negatif) terhadap kelompok I (kontrol normal)
mengalami penurunan aktivitas enzim superoksida
dismutase (SOD) sebesar 33.16%. Hal ini
disebabkan karena adanya penambahan oksidan
tersier-Butilhidroperoksida (t-BHP) pada sel darah
merah (SDM) domba yang dapat mengkatalisasi
autooksidasi
epineprin menjadi adenokrom,
sehingga aktivitas enzim superoksida dismutase
(SOD) dalam menghambat autooksidasi epineprin
tersebut menjadi berkurang. Pada kelompok III
(kontrol positif) dengan penambahan vitamin C dan
kelompok V (kelompok uji), dan VI (kelompok
uji) dengan adanya penambahan eksopolisakarida
Pengaruh Antioksidan Eksopolisakarida dari Tiga Strain Bakteri Asam Laktat
(EPS) yang diduga sebagai antioksidan pada sel
darah merah (SDM) domba sebelum penambahan
tersier-Butilhidroperoksida
(t-BHP)
dapat
menghambat katalisasi autooksidasi epineprin
menjadi adenokrom, sehingga aktivitas enzim
superoksida dismutase (SOD) terukur lebih
tinggi dari kelompok II. Hasil penelitian
Balahoroğlu et al. (2008), stress oksidatif
karbon tetra klorida (CCL4) pada hewan coba
menyebabkan penurunan aktivitas enzim
superoksida dismutase (SOD) hingga 32,42%,
pemberian melatonin (MLT) mampu meningkatkan
aktivitas enzim superoksida dismutase (SOD)
hingga 93,19% pada hewan coba yang mengalami
stress oksidatif.
Analisis Kadar Malondialdehid (MDA)
Adanya radikal bebas dalam tubuh ditandai
dengan adanya lipid peroksidasi yang dapat
menghasilkan
produk
sekunder
berupa
malondialdehid (MDA). Malondialdehid (MDA)
dapat menggambarkan aktivitas radikal bebas di
dalam sel sehingga dijadikan sebagai salah satu
petunjuk terjadinya stres oksidatif akibat radikal
bebas. Pengukuran malondialdehid (MDA)
dilakukan dengan menggunakan modifikasi metode
uji asam tiobarbiturat (TBA) secara spektrofotometri
pada l 532 nm. Larutan tetraetoksipropane
digunakan sebagai larutan baku pembanding
diperoleh persamaan garis Y= 0,095 + 0,470x
dengan nilai r2 = 0,986 (Gambar 4).
Hasil menunjukkan terdapat perbedaan
yang nyata (P<0,05) antara masing-masing
kelompok perlakuan (Gambar 4), dimana
analisis kadar malondialdehid (MDA) yang
dihasilkan eksopolisakarida (EPS) bakteri asam
laktat (BAL) kelompok perlakuan 3 (III)
berbeda terhadap kelompok I, II, IV, V, VI.
Pada kelompok II kandungan peroksidasi lipid
dalam tubuh cukup tinggi, hal tersebut
dikarenakan meningkatnya jumlah radikal bebas
dengan penambahan tersier-Butilhidroperoksida
(t-BHP) pada sel darah merah (SDM) domba
yang dapat menambah terjadinya peroksidasi
lipid, sehingga menyebabkan produk kadar
malondialdehid (MDA) meningkat. Pada kondisi
normal kandungan peroksidasi lipid dalam tubuh
cukup rendah yang ditunjukkan pada kelompok
I, sedangkan dengan adanya penambahan
antioksidan berupa eksopolisakarida (EPS) pada
kelompok IV, V dan VI serta vitamin C pada
kelompok III dapat menghambat terjadinya
peroksidasi lipid, sehingga mengalami penurunan
dalam produksi kadar malondialdehid (MDA).
Kadar malondialdehid (MDA) pada kelompok
III, IV, V, dan VI masing-masing mengalami
penurunan terhadap kelompok II (kontrol
negatif) sebesar 66,77%; 15,37%; 32,19%;
20,90%. Pada penelitian menggunakan karbon
tetra klorida (CCL4) sebagai oksidan mampu
meningkatkan kadar malondialdehid (MDA)
hingga 95,02%. Hal ini menunjukkan karbon
tetra klorida (CCL4) sangat reaktif membentuk
radikal bebas yang dapat menyebabkan peroksidasi
lipid. Stres oksidatif dapat mengganggu sistem
metabolisme seluler, perubahan struktur protein dan
asam nukleat, kerusakan membran transport ion
dan permeabilitas, dan kerusakan sel melalui
peroksidasi lipid yang berkaitan dengan proses
fisiologi yang abnormal (Szymonic-Lesiuk et al.
2003; Cabre et al. 2000). Perlakuan Vitamin C
sebagai antioksidan terhadap hewan coba yang
mengalami stress oksidatif karbon tetra klorida
(CCL4) mampu menekan kadar malondialdehid
(MDA) hingga 44,32%, N-acetylcystein (NAC)
menekan hingga 29.39% dan melatonin (MLT)
sebesar 12.2% (Balahoroğlu et al. 2008).
KESIMPULAN
Bakteri asam laktat (BAL) yang diisolasi dari
sampel yogurt (S-1, S-2) dan keju (S-7) mampu
menghasilkan senyawa eksopolisakarida (EPS).
Hasil analisis eksopolisakarida (EPS) dari bakteri
asam laktat (BAL) menggunakan kromatografi
cair kinerja tinggi (KCKT) menunjukkan bahwa
eksopolisakarida (EPS) dari bakteri asam laktat
(BAL) S-1 dan S-7 mengandung komponen
maltoheptaosa, sedangkan eksopolisakarida (EPS)
dari bakteri asam laktat (BAL) S-2 mengandung
glukosa dan maltoheptoasa.
Eksopolisakarida (EPS) bakteri asam laktat
(BAL) mampu meningkatkan aktivitas enzim
katalase (CAT) dan superoksidismutase (SOD),
serta menekan peningkatan kadar malondealdehid
(MDA) pada sel darah merah (SDM) domba yang
diinduksi oleh oksidan tersier-Butilhidroperoksida (tBHP). Peningkatan aktivitas enzim katalase (CAT),
enzim superoksida dismutase (SOD)
dan
penurunan kadar malondealdehid (MDA) yang
231
Afiati dkk.
paling tinggi ditunjukkan oleh eksopolisakarida
(EPS) S2 berturut-turut sebesar 77,46%; 33,87%; dan
32,19%.
DAFTAR PUSTAKA
Aebi, H. 1974. Catalase in methods in
enzymatic analysis: Bergmeyar Ed, New
York: Academic Press: 674-684.
Axelsson, L. 2004. Lactic acid bacteria:
classification and physiology. 3rd Edition,
Revisied and Expanded. Marcel Dekker,
Inc., New York.
Balahoroğlu, RHD., H. Özbek, İ. Bayram &
MR. Şekeroğlu. 2008. Protective effects
Of antioxidants on the experimental liver
and kidney. Toxicity In Mice. European
Journal of Genetic and Medical 5(3):157164.
Bisson, L. 2001. The alcoholic fermentation
section 3. University of California at
Davis. University Extention: 91- 92.
Cabre, M., J. Comps, JL. Paternain, N. Ferre &
J. Joven. 2000. Time course of changes in
hepatic lipid peroxidation and glutathione
metabolism in rats with carbon tetrachlorideinduced cirrhosis. Clinical and Expperimental
Pharmacology and Physiolology 27(9): 694699.
Legowo, AM. 2005. Diversifikasi produk
olahan dengan bahan baku susu.
Universitas Diponegoro Semarang. 6-11.
Polak, M., A. Berecka, D. Wasko, Szwajgier & A.
Choma. 2013. Bifidogenic and antioxidant
activity of exopolysaccharides produced by
232
Lactobacillus rhamnosus E/N cultivated on
different carbon sources. Journal of
Microbiology. 62(2): 181–189.
Satoh, K. 1978. Serum lipid peroxide in
cerebrovascular disorders determined by a
new colorimetric method. Clinica Chimica
Acta 90: 37-43.
Savadogo, A., A. Cheik, T. Ouattara, WS. Paul,
B. Nicolas, SO. Aboubacar & ST. Alfred.
2004. Identification of exopolysaccharides
producing lactic acid bacteria from Burkina
Faso fermented milk samples. African Journal
of Biotechnology 3(3): 189-194.
Szymonic-Lesiuk S., G. Chechowska & M.
Stryjecka. 2003. Catalase, superoxide
dismutase, and glutathione peroxidase
activities in various rat after carbon
tetrachloride intoxication. Journal of
Hepatobiliary Pancreatic Surggery 10
(4):309-15
Tsuda, H. 2013. Exopolysaccharides of lactic
acid bacteria for food and colon health
applications. Tokyo: Licensee in Tech.
Chapter II.
Usmiati, S. & Abubakar. 2009. Teknologi
pengolahan susu. Bogor: Balai Besar
Penelitian dan Pengembangan Pascapanen
Pertanian. 21-23.
Winarsi, H. 2007. Antioksidan alami dan radikal
bebas. Kanisius. Yogyakarta.12 -211
Yagi, K. 1984. Assay for blood plasma or
serum. Methods enzymology. 105: 328331.
PANDUAN PENULIS
Naskah dapat ditulis dalam bahasa Indonesia atau bahasa Inggris. Naskah disusun dengan urutan:
JUDUL (bahasa Indonesia dan Inggris), NAMA PENULIS (yang disertai dengan alamat Lembaga/
Instansi), ABSTRAK (bahasa Inggris, dan Indonesia maksimal 250 kata), KATA KUNCI (maksimal 6
kata), PENDAHULUAN, BAHAN DAN CARA KERJA, HASIL, PEMBAHASAN, UCAPAN
TERIMA KASIH (jika diperlukan) dan DAFTAR PUSTAKA. Penulisan Tabel dan Gambar ditulis di
lembar terpisah dari teks.
Naskah diketik dengan spasi ganda pada kertas HVS A4 maksimum 15 halaman termasuk gambar,
foto, dan tabel disertai CD. Batas dari tepi kiri 3 cm, kanan, atas, dan bawah masing-masing 2,5 cm
dengan program pengolah kata Microsoft Word dan tipe huruf Times New Roman berukuran 12 point.
Setiap halaman diberi nomor halaman secara berurutan. Gambar dalam bentuk grafik/diagram harus asli
(bukan fotokopi) dan foto (dicetak di kertas licin atau di scan). Gambar dan Tabel di tulis dan ditempatkan
di halaman terpisah di akhir naskah. Penulisan simbol a, b, c, dan lain-lain dimasukkan melalui fasilitas
insert, tanpa mengubah jenis huruf. Kata dalam bahasa asing dicetak miring. Naskah dikirimkan ke alamat
Redaksi sebanyak 3 eksemplar (2 eksemplar tanpa nama dan lembaga penulis).
Penggunaan nama suatu tumbuhan atau hewan dalam bahasa Indonesia/Daerah harus diikuti nama
ilmiahnya (cetak miring) beserta Authornya pada pengungkapan pertama kali.
Pustaka didalam teks ditulis secara abjad.
Contoh penulisan Daftar Pustaka sebagai berikut :
Jurnal :
Achmadi, AS., JA. Esselstyn, KC. Rowe, I. Maryanto & MT. Abdullah. 2013. Phylogeny, divesity , and
biogeography of Southeast Asian Spiny rats (Maxomys). Journal of mammalogy 94 (6):1412-123.
Buku :
Chaplin, MF. & C. Bucke. 1990. Enzyme Technology. Cambridge University Press. Cambridge.
Bab dalam Buku :
Gerhart, P. & SW. Drew. 1994. Liquid culture. Dalam : Gerhart, P., R.G.E. Murray, W.A. Wood, & N.R.
Krieg (eds.). Methods for General and Molecular Bacteriology. ASM., Washington. 248-277.
Abstrak :
Suryajaya, D. 1982. Perkembangan tanaman polong-polongan utama di Indonesia. Abstrak Pertemuan
Ilmiah Mikrobiologi. Jakarta . 15 –18 Oktober 1982. 42.
Prosiding :
Mubarik, NR., A. Suwanto, & MT. Suhartono. 2000. Isolasi dan karakterisasi protease ekstrasellular dari
bakteri isolat termofilik ekstrim. Prosiding Seminar nasional Industri Enzim dan Bioteknologi II.
Jakarta, 15-16 Februari 2000. 151-158.
Skripsi, Tesis, Disertasi :
Kemala, S. 1987. Pola Pertanian, Industri Perdagangan Kelapa dan Kelapa Sawit di Indonesia.[Disertasi].
Bogor : Institut Pertanian Bogor.
Informasi dari Internet :
Schulze, H. 1999. Detection and Identification of Lories and Pottos in The Wild; Information for surveys/
Estimated of population density. http//www.species.net/primates/loris/lorCp.1.html.