PROPOSAL PERBANDINGAN HASIL PEMERIKSAAN GLUKOSA PUASA DARAH KAPILER DENGAN DARAH VENA MENGGUNAKAN ALAT GLUKOMETER DI LABORATORIUM RUMAH SAKIT UMUM DAERAH PORSEA OLEH : WICHA TANTRI SIAHAAN NPM : 2482077 PROGRAM STUDI DIPLOMA IV TEKNOLOGI LABORATORIUM MEDIK FAKULTAS KEDOKTERAN INSTITUT KESEHATAN MEDISTRA LUBUK PAKAM 2025 KATA PENGANTAR Puji Syukur kepada Tuhan Yang Maha Esa, atas segala berkat dan karunia-Nya sehingga penulis dapat menyelesaikan Proposal penelitian ini yang berjudul “Penbandingan Hasil Pemeriksaan Glukosa Puasa Darah Kapiler Dengan darah Vena Menggunakan Alat Glukometer di Laboratorium Rumah Sakit Umum Daerah Porsea”. Proposal penelitian ini disusun untuk memenuhi salah satu syarat penyelesaian pendidikan di Institute Kesehatan Medistra Lubuk Pakam. Dalam penulisan proposal penelitian ini, penulis banyak dibantu oleh banyak pihak yang mendukung hingga bisa menyelesaikan proposal ini. Pada kesempatan ini penulis mengucapkan terimakasih kepada : 1. Drs. Johannes Sembiring, M.Pd., M.Kes., selaku Ketua Yayasan Institut Kesehatan Medistra Lubuk Pakam. 2. Ns. Rahmad Gurusinga, S.Kep., M.Kep., selaku Rektor Institut Kesehatan Medistra Lubuk Pakam. 3. dr. Rahmadani Sitepu, S.Pd, M.Kes, Sp.KKLP, selaku Dekan Fakultas Kedokteran Institut Kesehatan Medistra Lubuk Pakam, selaku Dosen Pembimbing dan Dosen Penguji yang telah banyak meluangkan waktu untuk membimbing dan memberi arahan kepada penulis. 4. Sa’adah Siregar, S.Si., M.Kes., selaku Ketua Program Studi Teknologi Laboratorium Medik Institut Kesehatan Medistra Lubuk Pakam. 5. Seluruh Dosen dan Staf pegawai Institut Kesehatan Medistra Lubuk Pakam yang telah banyak memberikan pengetahuan, bimbingan, dan arahan selama mengikuti pendidikan. 6. Kepala Ruangan Laboratorium Patologi Klinik dan rekan-rekan di RSUD Porsea. 7. Teristimewa kepada kedua orang tua dan saudara-saudara penulis yang senantiasa memberikan dukungan moral maupun material serta doa dan i motivasi kepada penulis selama ini hingga penulis dapat menyelesaikan proposal penelitian ini. 8. Seluruh teman-teman Jurusan Teknologi Laboratorium Medik NR Angkatan 3, terimakasih telah mensupport dan mendoakan yang terbaik kepada penulis. Penulis menyadari banyak kelemahan dan kekurangan dalam penulisan proposal ini, oleh karena itu penulis sangat mengharapkan kritik dan saran yang bersifat membangun demi perbaikan proposal ini. Harapan penulis semoga proposal ini dapat bermanfaat bagi penulis maupun pembaca. Lubuk Pakam, April 2025 Wicha Tantri Siahaan NPM : 2482077 ii DAFTAR ISI KATA PENGANTAR .................................................................................................. i DAFTAR ISI ............................................................................................................... iii BAB I PENDAHULUAN ............................................................................................ 1 1.1 Latar Belakang .................................................................................................... 1 1.2 Rumusan Masalah ............................................................................................... 4 1.3 Tujuan Penelitian ................................................................................................. 4 1.3.1 Tujuan Umum ............................................................................................... 4 1.3.2 Tujuan Khusus .............................................................................................. 4 1.4 Manfaat Penelitian ............................................................................................... 4 1.4.1 Bagi Institusi ................................................................................................. 4 1.4.2 Bagi Tenaga Kesehatan ................................................................................ 5 1.4.3 Bagi Peneliti.................................................................................................. 5 BAB II TINJAUAN PUSTAKA................................................................................. 6 2.1 Glukosa Darah ..................................................................................................... 6 2.2 Jenis Pemeriksaan Glukosa Darah ...................................................................... 7 2.2.1 Glukosa Darah Puasa (GDP) ........................................................................ 7 2.2.2 Glukosa Darah 2 Jam Post Prandial.............................................................. 7 2.2.3 Glukosa Darah Sewaktu (GDS) .................................................................... 8 2.2.4 Glukosa Darah Toleransi (TTGO) ................................................................ 8 2.3 Metode Pemeriksaan Glukosa Darah .................................................................. 9 2.3.1 Glukometer (POCT) ..................................................................................... 9 2.3.2 GOD-PAP ................................................................................................... 10 2.3.3 Glukosa Heksokinase .................................................................................. 11 2.3.4 Glukosa Dehidrogenase (GDH) .................................................................. 13 2.4 Lokasi Pengambilan Sampel Untuk Glukosa Darah ......................................... 14 2.4.1 Pembuluh Darah Kapiler ............................................................................ 14 2.4.2 Pembuluh Darah Vena ................................................................................ 16 2.5 Penyakit Gangguan Pada Glukosa Darah .......................................................... 17 2.5.1 Hipoglikemia .............................................................................................. 17 iii 2.5.2 Hiperglikemia ............................................................................................. 18 2.6 Kerangka Teori .................................................................................................. 19 2.7 Kerangka Konsep Penelitian ............................................................................. 20 2.8 Hipotesis ............................................................................................................ 20 BAB III METODE PENELITIAN .......................................................................... 21 3.1 Jenis dan Rancangan Penelitian ........................................................................ 21 3.2 Lokasi dan Waktu Penelitian ............................................................................. 21 3.2.1 Lokasi Penelitian......................................................................................... 21 3.2.2 Waktu Penelitian ......................................................................................... 21 3.3 Populasi dan Sampel Penelitian ........................................................................ 21 3.3.1 Populasi Penelitian...................................................................................... 21 3.3.2 Sampel Penelitian ....................................................................................... 21 3.3.3 Teknik Pengambilan Sampel ...................................................................... 22 3.4 Metode Pengumpulan Data ............................................................................... 23 3.4.1 Data Primer ................................................................................................. 23 3.4.2 Data Sekunder ............................................................................................. 23 3.5 Variabel Penelitain ............................................................................................ 23 3.5.1 Variabel Bebas (Independent Variable) ...................................................... 24 3.5.2 Variabel Terikat (Dependent Variable) ...................................................... 24 3.6 Definisi Operasional .......................................................................................... 24 3.7 Alat dan Bahan Penelitian ................................................................................. 25 3.7.1 Alat.............................................................................................................. 25 3.7.2 Bahan .......................................................................................................... 25 3.8 Prosedur Penelitian ............................................................................................ 25 3.8.1 Pengambilan Darah Kapiler ........................................................................ 25 3.8.2 Pengambilan Darah Vena ........................................................................... 26 3.8.3 Pemeriksaan Glukosa Darah ....................................................................... 26 3.9 Analisa Data ...................................................................................................... 27 DAFTAR PUSTAKA ................................................................................................ 28 iv BAB I PENDAHULUAN 1.1 Latar Belakang Glukosa darah atau yang lebih dikenal sebagai gula darah merupakan gula yang terdapat didalam darah yang terbentuk dari pembentukan karbohidrat dalam makanan dan kemudian disimpan sebagai glikogen di otot rangka dan hati (Yulistari, 2022). Kadar glukosa darah sangat diatur ketat oleh insulin dalam tubuh. Insulin dikenal sebagai hormon yang berperan penting untuk mengatur keseimbangan glukosa darah dalam sirkulasi darah. Dengan demikian ketidakseimbangan antara transportasi glukosa ke dalam sel dengan produksi insulin oleh pankreas menyebabkan terjadinya hiperglikemia dan berujung diabetes melitus (Yuniastuti et al., 2018). Diabetes Melitus (DM) saat ini, menjadi salah satu ancaman serius kesehatan global. Menurut data badan kesehatan dunia (WHO) jumlah penderita DM di seluruh dunia telah meningkat signifikan dalam beberapa dekade terakhir. Badan kesehatan dunia (WHO) juga menyatakan bahwa tidak kurang 150 juta orang di seluruh dunia menderita DM yang dapat berakibat fatal. Jumlah penderitanya terus meningkat setiap tahunnya dan sebagian besar berasal dari negara berkembang (A. Fernando et al., 2024). Badan kesehatan dunia (WHO) juga memprediksi peningkatan jumlah penderita DM di Indonesia akan meningkat dari 8,4 juta pada tahun 2000 menjadi sekitar 21,3 juta pada tahun 2030. Sementara itu, menurut International Diabetes Federation (IDF) juga menunjukkan adanya kenaikan, di mana jumlah penderita DM diperkirakan bertambah dari 10,7 juta pada tahun 2019 menjadi 13,7 juta pada tahun 2030 (Soelistijo, 2021). Oleh sebab itu, penderita DM memerlukan pengontrolan ketat terhadap kadar glukosa darahnya. Menurut Perkumpulan Endrikologi Indonesia (2011) yang dikutip dari (Kardi et al., 2018), pemeriksaan kadar glukosa darah dapat dilakukan dengan berbagai metode yaitu hexokinase, glucose oxidase dan glucose dehydrogenase. Metode hexokinase, yang merupakan gold standard pemeriksaan kadar glukosa darah, menggunakan bahan pemeriksaan berupa darah vena dan sering dilakukan di laboratorium. Pemeriksaan 1 kadar glukosa darah menggunakan metode glucose oxidase dan glucose dehydrogenase menggunakan bahan pemeriksaan berupa darah kapiler dan sering diterapkan pada alat glukometer (metode POCT). Point Off Care Test (POCT) merupakan serangkaian pemeriksaan laboratorium sederhana menggunakan alat glukometer. Metode ini umumnya masih banyak digunakan sebagai Bedside testing (tes disamping tempat tidur), Near Pateinet testing (tes didekat pasien) dan Alternative site testing (tes alternatif) (Fajarna et al., 2022). Pemeriksaan kadar glukosa darah jenis spesimen yang paling umum digunakan untuk pemeriksaan kadar glukosa darah adalah kapiler. Penggunaan darah kapiler sebagai bahan pemeriksaan untuk mendignosis intoleransi glukosa juga masih diperdebatkan hingga saat ini. Karna adanya berbedaan nilai yang bervariasi dengan hasil kadar glukosa darah vena. Meskipun demikian darah kapiler masih banyak digunakan para klinisi sebagai bahan pemeriksaan penunjang kadar glukosa darah dengan tujuan untuk hipoglikemi, normoglikemi, hiperglikemi dan memantau terapi (Rosares & Boy, 2022). Pemeriksaan menggunakan glukometer digunakan hanya untuk pemeriksaan awal. Penggunaan glukometer bisa dilakukan dengan mudah dan dilakukan dimana saja karena relatif sederhana untuk digunakan sendiri, tetapi sebagian instansi lebih menggunakan darah vena untuk melakukan pemeriksaan kadar glukosa darah. Dikarenakan penambahan pemeriksaan yang diajukan untuk pasien, yang tidak hanya dilakukan pemeriksaan menggunakan strip, jadi agar tidak dilakukan penusukan berulang kali. Rumah Sakit Umum Daerah (RSUD) Porsea merupakan salah satu rumah sakit yang terletak di daerah toba, wilayah Sumatera Utara. RSUD porsea menyediakan berbagai pelayanan kesehatan, salah satunya adalah pelayanan laboratorium. Pemeriksaan glukosa darah adalah pemeriksaan wajib bagi semua pasien yang akan di rawat inap di RSUD Porsea dan tercatat hampir seluruh pasien yangberobat ke RSUD Porsea melakukan pemeriksaan glukosa. Pemeriksan glukosa darah di instalasi laboratorium RSUD Porsea kerap dilakukan bersamaan dengan pemeriksaan laboratorium lainnya. Untuk menghindari tindakan penusukan berulang serta meminimalkan tingkat ketidaknyamanan atau kesakitan pada pasien, pemeriksaan 2 glukosa darah dilakukan menggunakan darah vena yang telah diambil untuk keperluan pemeriksaan lainnya. Pengukuran kadar glukosa darah tersebut dilakukan dengan menggunakan alat glukometer (Accu-Chek Performa). Pemeriksaan dengan alat glukometer (Accu-Chek Performa) dianjurkan untuk menggunakan sampel darah kapiler, karena siklus darah kapiler mengalir dari jantung langsung masuk ke pembuluh kapiler, jika siklus darah vena darah dari jantung mengalir melewati satu pembuluh kapiler lalu masuk ke pembuluh darah vena yang menyebabkan perbedaan konsentasi glukosa darah antara vena dan kapiler, dimana darah kapiler mencerkinkan campuran dari keduanya (Soraya et al., 2017). Berdasarkan teori tersebut peneliti tertarik untuk mengetahui apakah ada perbedaan jika melakukan pemeriksaan glukosa darah puasa pada sampel darah kapiler dan vena dengan alat glukometer (Accu-Chek Performa). Berdasarkan penelitian yang dilakukan oleh Herawati (2017) menunjukkan hasil penelitian didapatkan rata-rata glukosa darah kapiler tertinggi 154 mg/dl terendah 76 mg/dl dan rata-rata glukosa darah vena tertinggi 170 mg/dl terendah 86 mg/dl. Hasil analisis uji wilcoxon P = 0,000≤0,05 sehingga Ho ditolak. Disimpulkan bahwa ada perbedaan signifikan pada hasil perbedaan kadar glukosa darah sewaktu pada darah kapiler dan vena. Berdasarkan penelitian dilakukan oleh Tel, Ibrahim dan Susilawati, (2021) menunjukkan hasil penelitian yang diperoleh bahwa dari 81 responden diperoleh ratarat kadar glukosa darah kapiler adalah 203,507 mg/dl, rata-rata kadar glukosa dalam darah vena adalah 199,753 mg/dl dan dilakukan analisis dengan uji paired t-test didapatkan nilai p = 0,005 (α = 0,05). Disimpulkan bahwa ada perbedaan yang signifikan pada hasil glukosa darah dalam darah vena dengan darah kapiler. Berdasarkan penelitian yang sama juga dilakukan oleh Simamora (2023) menunjukkan hasil penelitian diperoleh bahwa dari 25 responden diperoleh nilai ratarata darah kapiler sebesar 192,76, dengan standar deviasi sebesar 56,302, dengan nilai min 111 dan nilai max 288, dengan p nilai 0,007. Rerata selisih darah vena adalah 186,44, dengan standar deviasi 55,586, dengan nilai min 114 dan max 280, hasil analisis uji paired t-test dengan nilai p = 0,007 dengan tingkat signifikansi p<𝛼 (0,05) yaitu 0,007≤0,05. Disimpulkan bahwa terdapat perbedaan hasil kadar glukosa darah 3 menggunakan metode POCT (Point Of Care Test) menggunakan sampel darah vena dan darah kapiler. Berdasarkan pada pemaparan teori dan juga analisa dari beberapa penelitian terdahulu menjadi dasar untuk penulis melanjutkan penelitian mengenai perbedaan hasil kadar glukosa darah pada darah vena dan darah kapiler. Maka dari itu penulis telah melakukan penelitian lebih lanjut tentang “Perbandingan Hasil Pemeriksaan Glukosa Puasa Darah Kapiler Dengan Darah Vena Menggunakan Alat Glukometer di Laboratorium Rumah Sakit Umum Daerah Porsea”. 1.2 Rumusan Masalah Berdasarkan uraian latar belakang, maka rumusan masalah yang akan dibahas dalam penelitian ini adalah : “Bagaimana perbandingan hasil pemeriksaan glukosa darah puasa pada sampel darah kapiler dan vena dengan alat glukometer di Rumah Sakit Umum Daerah Porsea?”. 1.3 Tujuan Penelitian 1.3.1 Tujuan Umum Mengetahui perbedaan hasil pemeriksaan glukosa darah puasa menggunakan sampel darah kapiler dan vena dengan alat glukometer di Rumah Sakit Umum Daerah Porsea. 1.3.2 Tujuan Khusus 1. Mengukur glukosa darah puasa dengan alat glukometer menggunakan sampel darah kapiler. 2. Mengukur glukosa darah puasa dengan alat glukometer menggunakan sampel darah vena. 3. Menganalisis perbedaan kadar glukosa darah puasa pada sampel darah kapiler dan darah vena. 1.4 Manfaat Penelitian 1.4.1 Bagi Institusi Penelitian ini diharapkan sebagai bahan acuan pembelajaran dan bahan tambahan referensi bacaan untuk menambah ilmu pengetahuan tentang perbandingan 4 pemeriksaan glukosa darah puasa menggunakan sampel darah kapiler dan vena dengan alat glukometer. 1.4.2 Bagi Tenaga Kesehatan Menyediakan informasi tambahan bagi tenaga laboratorium guna memastikan bahwa pemeriksaan kadar gula darah puasa sudah dilakukan sesuai dengan prosedur dan memenuhi syarat dalam melakukan pemeriksaan dan penggunaan alat. 1.4.3 Bagi Peneliti 1. Menambah informasi, wawasan, pengetahuan dan pengalaman tentang pemeriksaan kadar glukosa darah puasa. 2. Hasil dari penelitian dapat dijadikan sebagai sumber referensi bagi peneliti selanjutnya. 5 BAB II TINJAUAN PUSTAKA 2.1 Glukosa Darah Glukosa darah adalah kadar glukosa yang terdapat dalam sirkulasi darah, yang merupakan sumber utama energi bagi sel-sel tubuh. Glukosa dihasilkan dari makanan yang kita konsumsi, terutama karbohidrat, dan diatur oleh hormon insulin yang diproduksi oleh pankreas. Glukosa dalam tubuh berasal dari hasil pemecahan karbohidrat (monosakarida, disakarida, oligosakarida, dan polisakarida), Glukosa dalam tubuh dihasilkan hati melalui proses hidrolisis makanan, kemudian didistribusikan ke seluruh tubuh melalui aliran darah. Sekitar 50-70% dari total kebutuhan energi dipenuhi oleh glukosa yang beredar dalam darah. Glukosa ini kemudian masuk ke dalam sel untuk digunakan sebagai sumber energi, terutama bagi otak dan eritrosit. Jika terdapat kelebihan glukosa, tubuh akan menyimpannya dalam bentuk glikogen di hati dan otot, dalam proses ini, Insulin berfungsi untuk membantu glukosa masuk ke dalam sel-sel tubuh, sehingga dapat digunakan sebagai energi atau disimpan sebagai cadangan energi (Oktaviana et al., 2023). Glukosa merupakan salah satu nutrisi yang dalam keadaan normal sangat dibutuhkan untuk energi, otak, retina, dan epitel germinal gonad (Handayani et al., 2025). Kadar glukosa harus dijaga dalam konsentrasi yang cukup untuk menyediakan nutrisi bagi organ-organ tubuh tersebut. Namun sebaliknya, konsentrasi glukosa darah yang terlalu tinggi dapat memberikan dampak negatif seperti dieresis osmotic dan dehidrasi pada sel (Bagshaw & Bellomo, 2020). Oleh sebab itu pemantauan dan pengelolaan kadar glukosa darah yang tepat sangat diperlukan. Kadar glukosa darah sangat diatur secara ketat oleh tubuh. Kadar gula didalam darah yang dialirkan di dalam tubuh akan menjadi menjadi sumber energi utama untuk sel-sel tubuh. Pada umumnya, kadar normal pada glukosa darah berada pada rentang (70-110 mg/dl). Kadar glukosa ini meningkat setelah makan dan biasanya berada kadar terendah di pagi hari sebelum makan. Bila kadar glukosa terlalu rendah (<70 mg/dl) 6 disebut hipoglikemia. Bila kadar gula darah berada pada kadar tinggi (>110 mg/dl) disebut hiperglikemia (Simamora, 2023). Kadar glukosa darah dipengaruhi oleh faktor endogen dan eksogen. Faktor endogen disebut juga humoral faktor diantaranya hormon insulin, glukogen, koristol, sistem reseptor pada otot dan sel hati. Faktor eksogen antara lain jenis dan jumlah makanan yang dikonsumsi serta aktivitas fisik yang dilakukan dan penundaan pemeriksaan dapat menurunkan kadar glukosa darah karena adanya aktifitas sel (Alydrus & Fauzan, 2022). 2.2 Jenis Pemeriksaan Glukosa Darah 2.2.1 Glukosa Darah Puasa (GDP) Pengukuran glukosa darah puasa merupakan salah satu indikator utama dalam menilai kesehatan metabolik, khususnya dalam mendeteksi dan memantau diabetes melitus, karena pada kenyataannya 70% pasien yang berpuasa mempunyai kadar glukosa darah normal. Sehingga jika, kadar glukosa darah puasa pasien tetap tinggi, tes ini cukup menunjang diagnosa. Nilai normal dari glukosa darah puasa adalah 60-110 mg/dl. Pemeriksaan ini dilakukan setelah seseorang menjalani puasa selama 8-12 jam tanpa mengonsumsi makanan atau minuman selain air putih. Pemeriksaan glukosa darah puasa umumnya dilakukan karena dapat memberikan gambaran tentang bagaimana tubuh mengatur kadar glukosa tanpa adanya pengaruh dari makanan yang baru dikonsumsi (Abdimas, 2023). 2.2.2 Glukosa Darah 2 Jam Post Prandial Glukosa darah post prandial adalah kadar glukosa darah setelah makan, yang biasanya mencapai puncak dalam satu jam setelah makan. setelah puncak tersebut, kadar glukosa darah secara bertahap akan menurun dan mendekati kadar glukosa darah puasa dalam waktu dua jam. Pemeriksaan ini bertujuan untuk mengetahui kemampuan seseorang terhadap beban glukosa yang terdapat dalam tubuhnya. Pemeriksaan glukosa darah 2 Jam Post Prandial (2 Jam PP) dilakukan setelah dua jam makan yang sebelumnya puasa selama 8-10 jam. Nilai normal glukosa darah 2 jam post prandial adalah 100-140 mg/dl. Saat seseorang makan, kadar glukosa dalam darah akan 7 meningkat, kemudian tubuh akan merespons dengan melepaskan insulin untuk membantu sel-sel menyerap glukosa sebagai sumber energi. Pada individu dengan fungsi insulin yang normal, kadar gula darah akan kembali turun ke tingkat normal dalam waktu dua jam. Namun, pada penderita diabetes atau individu dengan gangguan toleransi glukosa, kadar gula darah tetap tinggi setelah dua jam. Pemeriksaan ini biasanya dilakukan dengan pengambilan sampel darah sebelum makan sebagai nilai awal, kemudian diikuti dengan pengambilan darah dua jam setelah makan (Almaliah & Sudrajat, 2024). 2.2.3 Glukosa Darah Sewaktu (GDS) Salah satu metode pemeriksaan kadar glukosa dalam darah adalah glukosa darah sewaktu (GDS). Glukosa darah sewaktu merupakan pengukuran kadar glukosa dalam darah yang dilakukan kapan saja tanpa memperhitungkan waktu terakhir pasien mengonsumsi makanan, sehingga hasilnya dapat bervariasi tergantung pada asupan makanan sebelumnya (Sari et al., 2024). Nilai normal dari glukosa darah sewaktu adalah 70-125 mg/dl. Tujuan dari pada pemeriksaan glukosa darah sewaktu adalah untuk menilai kemampuan tubuh dalam memanfaatkan glukosa sebagai sumber energi. Pemeriksaan ini sering digunakan di laboratorium sebagai metode skrining untuk mendeteksi diabetes melitus. Pemeriksaan glukosa darah sewaktu, biasanya mendapati hasil yang lebih tinggi, karena pemeriksaan dilakukan pada saat itu juga (Abdimas, 2023). 2.2.4 Glukosa Darah Toleransi (TTGO) Tes Toleransi Glukosa Oral (TTGO) adalah pemeriksaan yang digunakan untuk menilai bagaimana tubuh mengolah glukosa. Tes ini sering digunakan untuk mendeteksi diabetes melitus dan diabetes gestasional pada ibu hamil. Glukosa darah toleransi yaitu tes pemeriksaan yang bertujuan dalam penentuan diagnosa apabila masih terdapat keraguan. Nilai normal glukosa darah toleransi adalah >140 mg/dl. Pemeriksaan glukosa darah toleransi dilakukan dengan cara mengukur kadar glukosa darah sebelum dan setelah mengonsumsi larutan glukosa. Pasien diminta untuk berpuasa selama 8–12 jam sebelum pemeriksaan. Setelah pengambilan sampel darah 8 awal untuk mengukur kadar glukosa puasa, pasien akan diberikan larutan glukosa yang umumnya mengandung 75 gr glukosa. Kemudian, sampel darah diambil kembali dalam rentang waktu tertentu, biasanya setelah 1 dan 2 jam, untuk melihat bagaimana tubuh merespons glukosa yang dikonsumsi. Selain metode tersebut, beberapa metode yang dapat digunakan untuk penetapan kadar glukosa adalah metode Asatoor dan King, metode Follin-wu, metode Nelson Smogyi, Ferisianida spektrofotometrik, metode glukkosa oksidase, metode titriometri, metode Hagedon dan Jansen, dan metode otoluidine (Mahdalina et al., 2024). 2.3 Metode Pemeriksaan Glukosa Darah 2.3.1 Glukometer (POCT) Glukometer yang menggunakan prinsip Point of Care Testing (POCT) atau biasa dikenal juga Beside Test adalah sebagai pemeriksaan laboratorium yang dilakukan pada pasien rawat inap maupun rawat jalan, sehingga memungkinkan hasil diperoleh dengan cepat dan efisien. Salah satu penerapan POCT yang umum adalah pemeriksaan kadar glukosa darah menggunakan alat glukometer. Pemeriksaan kadar glukosa darah yang menggunakan POCT terdiri atas alat meter glukosa darah, strip dan lanset. Glukometer digunakan untuk mengukur kadar glukosa darah berdasarkan deteksi elektrokimia dengan dilapisi enzim glukosa oxidase pada strip membran (Fajarna et al., 2022). Dalam pemeriksaan glukosa darah berbasis POCT, dikenal dua metode enzimatik utama yang digunakan oleh perangkat glukometer, yaitu metode glukosa oksidase (GOD) dan glukosa dehidrogenase (GDH). Glukometer terdiri atas sensor glukosa yang menggunakan elektroda platinum dan perak untuk membentuk bagian dari sirkuit listrik dengan elektrolisis dari hidrogen peroksida. Hidrogen peroksida diproduksi sebagai hasil dari oksidasi glukosa pada membran oksida glukosa. Arus yang melalui rangkaian menyediakan hasil pengukuran konsentrasi hidrogen peeroksida, sehingga konsentrasi glukosa dapat diketahui. Ketika sampel darah diteteskan ke strip, glukosa dalam darah akan bereaksi dengan enzim tersebut, menghasilkan elektron yang diteruskan ke elektroda dalam alat, menciptakan arus 9 listrik yang kemudian diukur dan dikonversi menjadi kadar glukosa darah dalam satuan mg/dL atau mmol/L (Dewia et al., 2023). Penggunaan Glukometer memberikan sejumlah keuntungan dalam perawatan pasien. Pertama, alat ini mempercepat proses pengambilan keputusan dalam perawatan karena memungkinkan pemeriksaan dilakukan secara langsung oleh pasien atau tenaga medis tanpa harus menunggu hasil laboratorium. Keuntungan lainnya adalah hasil tes yang cepat, yang sangat berguna bagi dokter untuk menganalisis kondisi pasien dan menentukan langkah perawatan selanjutnya secara tepat waktu. Selain itu, Glukometer hanya memerlukan sedikit sampel darah, hanya 0,8 μl sampel yang dibutuhkan untuk mendapatkan hasil yang akurat dalam 5 detik, yang membuat pemeriksaannya lebih praktis dan minim ketidaknyamanan bagi pasien. Sistem pembacaan alat ini memiliki keakuratan dengan membaca kadar glukosa dalam darah berkisar 10-600 mg/dl 33,3 mmol/L (Laisouw et al., 2017). Meskipun glukometer memiliki berbagai keunggulan, penggunaannya juga memiliki keterbatasan. Keterbatasan dari pengguanaan alat glukometer penggunaan sampel darah dalam jumlah yang sangat kecil, yang dapat menyulitkan dalam menilai kualitas sampel tersebut. Misalnya, dalam proses pengambilan darah, tekanan atau pemijatan yang terlalu kuat dapat menyebabkan sampel darah bercampur dengan cairan serosa, yang pada akhirnya dapat mempengaruhi keakuratan hasil pemeriksaan (Erbach et al., 2016). 2.3.2 GOD-PAP Metode GOD-PAP (Glucose Oxidase-Peroxidase Aminoantypirin) adalah salah satu teknik enzimatik yang digunakan untuk mengukur kadar glukosa dalam darah dengan tingkat ketelitian yang tinggi. Metode ini banyak digunakan di laboratorium klinis karena mampu memberikan hasil yang akurat dan dapat diandalkan dalam diagnosis serta pemantauan diabetes. Prinsip utama metode ini adalah reaksi oksidasi glukosa oleh enzim glukosa oksidase (GOD), yang mengubah glukosa dalam sampel darah menjadi asam glukonat dan hidrogen peroksida. Hidrogen peroksida yang terbentuk kemudian bereaksi dengan 4-Aminoantipyrine dan fenol dalam suatu reaksi yang dikatalis oleh enzim peroksidase (POD), menghasilkan senyawa berwarna 10 quinonemine dan air. Intensitas warna yang terbentuk sebanding dengan kadar glukosa dalam sampel dan dapat diukur menggunakan fotometer pada panjang gelombang 500 nm. Senyawa berwarna ini kemudian diukur menggunakan alat spektrofotometer pada panjang gelombang sekitar 505 nm. Intensitas warna yang terbentuk sebanding langsung dengan konsentrasi glukosa dalam sampel, sehingga dari absorbansi yang terbaca, kadar glukosa dapat dihitung (Fernando et al., 2024). Metode GOD-PAP memiliki keunggulan berupa spesifisitas tinggi terhadap glukosa, stabilitas reagen yang baik, serta dapat diaplikasikan pada berbagai jenis spesimen seperti serum, plasma, maupun darah utuh. Selain itu, metode ini sangat sesuai digunakan dalam sistem analisis otomatis di laboratorium, sehingga mendukung efisiensi kerja dan konsistensi hasil. Namun demikian, metode ini juga memiliki beberapa keterbatasan, seperti potensi interferensi dari zat-zat dalam darah seperti asam urat, asam askorbat, dan bilirubin, yang dapat memengaruhi akurasi pengukuran. Selain itu, karena reaksi awal metode ini memerlukan oksigen sebagai akseptor elektron, maka penggunaannya dapat kurang optimal dalam kondisi hipoksia. Metode GOD-PAP juga tidak didesain untuk keperluan point-of-care testing (POCT) karena memerlukan peralatan laboratorium seperti fotometer serta waktu inkubasi tertentu (Moghadam et al., 2021). Meskipun terdapat berbagai alternatif metode pemeriksaan glukosa yang terus berkembang, metode GOD-PAP masih dianggap sebagai metode standar dan andal untuk pemeriksaan glukosa darah secara laboratorium, terutama dalam pengukuran kadar glukosa puasa maupun postprandial (Tawiah et al., 2022). 2.3.3 Glukosa Heksokinase Metode Hexokinase adalah salah satu metode enzimatik yang digunakan untuk mengukur kadar glukosa dalam darah, yang sering dianggap sebagai standar acuan dalam pengujian glukosa karena tingkat spesifisitas dan akurasi yang sangat tinggi. Prinsip dasar dari metode ini melibatkan reaksi fosforilasi glukosa oleh enzim hexokinase, yang memerlukan ATP sebagai donor fosfat. Dalam tahap pertama, glukosa diubah menjadi glukosa-6-fosfat (G6P), yang kemudian akan diubah lebih lanjut oleh enzim glukosa-6-fosfat dehidrogenase (G6PD) dalam keberadaan NADP⁺, 11 menghasilkan NADPH. NADPH yang terbentuk sebanding dengan jumlah glukosa dalam sampel dan dapat diukur secara fotometrik pada panjang gelombang 340 nm. Reaksi ini memberikan hasil yang sangat akurat karena melibatkan tahap pengukuran NADPH, yang hanya diproduksi dalam reaksi pengolahan glukosa (Baharudin et al., 2018). Untuk melakukan pemeriksaan dengan metode ini, diperlukan beberapa alat dan bahan, seperti spektrofotometer, micropipet (10 μl dan 1000 μl), tabung reaksi, rak tabung, tip kuning dan biru, inkubator atau waterbath, sentrifuge, timer, kapas alkohol, tisu, serta spuit 3 ml. Selain itu, reagen yang digunakan meliputi enzim heksokinase, ATP, NADP+ atau NAD+, serta buffer yang sesuai untuk menjaga kestabilan reaksi. Proses analisis dimulai dengan mencampurkan sampel darah atau serum dengan reagen, kemudian diinkubasi pada suhu 37°C agar reaksi berjalan optimal. Setelah inkubasi, absorbansi diukur menggunakan spektrofotometer pada panjang gelombang 340 nm, di mana peningkatan absorbansi sebanding dengan kadar glukosa dalam sampel. Metode ini sering digunakan dalam laboratorium klinis karena memberikan hasil yang sangat spesifik dan akurat dalam mengukur konsentrasi glukosa darah (Puspita et al., 2023). Keunggulan utama dari metode hexokinase adalah spesifisitas tinggi terhadap glukosa, yang menjadikannya sangat sedikit terpengaruh oleh interferensi dari zat-zat lain yang mungkin ada dalam sampel, seperti bilirubin, hemoglobin, atau asam askorbat. Hal ini membuat metode ini sangat akurasi dan presisi, menjadikannya pilihan utama dalam pengujian kadar glukosa darah di laboratorium rujukan. Metode ini sering digunakan sebagai metode rujukan oleh lembaga-lembaga kesehatan internasional seperti IFCC (International Federation of Clinical Chemistry) dan CDC (Centers for Disease Control and Prevention) (Petersmann et al., 2020). Namun demikian, meskipun sangat akurat, metode hexokinase memiliki beberapa keterbatasan. Salah satu kendala utama adalah kebutuhan terhadap reagen enzimatik yang sensitif dan relatif mahal, serta peralatan khusus seperti spektrofotometer UV yang dapat mengukur pada panjang gelombang 340 nm. Oleh karena itu, metode ini lebih cocok digunakan di laboratorium pusat dengan fasilitas 12 lengkap, bukan untuk pengujian di point-of-care testing (POCT), yang memerlukan alat yang lebih portabel dan cepat. Meskipun ada berbagai alternatif metode pengukuran glukosa, metode hexokinase tetap menjadi pilihan utama dalam banyak laboratorium karena memberikan hasil yang sangat konsisten dan akurat dalam menentukan kadar glukosa darah, baik untuk pemeriksaan rutin maupun untuk keperluan uji validasi metode pengukuran lainnya (Badugu et al., 2021). 2.3.4 Glukosa Dehidrogenase (GDH) Metode Glukosa Dehidrogenase adalah salah satu teknik enzimatik yang digunakan untuk mengukur kadar glukosa dalam darah dengan prinsip reaksi oksidoreduksi. Metode ini memanfaatkan enzim glukosa dehidrogenase (GDH), yang mengkatalisis oksidasi glukosa menjadi asam glukonat dengan menggunakan kofaktor seperti NAD⁺ (Nicotinamide Adenine Dinucleotide) atau PQQ (Pyrroloquinoline Quinone), tergantung pada jenis enzim yang digunakan. Dalam reaksi ini, glukosa mengalami dehidrogenasi, menghasilkan asam glukonat dan bentuk tereduksi dari kofaktor, yaitu NADH atau PQQH₂. Produk reaksi ini kemudian diukur menggunakan fotometer atau spektrofotometer, karena perubahan konsentrasi NADH atau PQQH₂ menghasilkan peningkatan absorbansi cahaya pada panjang gelombang tertentu, biasanya sekitar 340 nm untuk NADH.Untuk melakukan pemeriksaan dengan metode Glukosa Dehidrogenase, diperlukan berbagai alat dan bahan, antara lain fotometer atau spektrofotometer, micropipet (10 μl dan 1000 μl), tabung reaksi, rak tabung, tip kuning dan biru, sentrifuge, waterbath atau inkubator, timer, kapas alkohol, tisu, dan spuit 3 ml. Reagenyang digunakan meliputi enzim glukosa dehidrogenase, kofaktor NAD⁺ atau PQQ, serta buffer reaksi untuk menjaga stabilitas pH selama proses analisis. Prosedur pemeriksaan dimulai dengan mencampurkan sampel darah dengan reagen yang mengandung enzim dan kofaktor, kemudian campuran tersebut diinkubasi pada suhu optimal selama beberapa menit. Setelah itu, absorbansi diukur dengan fotometer atau spektrofotometer untuk menentukan kadar glukosa berdasarkan peningkatan konsentrasi produk reaksi. Metode ini dikenal karena keakuratannya dan ketahanannya 13 terhadap gangguan dari zat lain dalam darah, sehingga sering digunakan dalam pemeriksaan laboratorium maupun alat glukometer portabel (Baharudin et al., 2018). Keunggulan utama dari metode GDH adalah kemampuannya untuk digunakan dalam perangkat portabel, memberikan hasil dalam hitungan detik, serta hanya memerlukan volume sampel yang sangat kecil. Selain itu, metode GDH memiliki sensitivitas yang tinggi dan dapat bekerja baik dalam kondisi rendah oksigen, sehingga cocok digunakan di berbagai lingkungan, termasuk di tempat tidur pasien atau fasilitas kesehatan dengan sumber daya terbatas. Namun, metode GDH juga memiliki keterbatasan, terutama dalam hal spesifisitas substrat. Beberapa varian enzim GDH, seperti GDH-PQQ, tidak hanya bereaksi terhadap glukosa tetapi juga terhadap gula lain seperti maltosa, galaktosa, dan xilosa, yang dapat menyebabkan hasil positif palsu. Hal ini menjadi perhatian terutama pada pasien yang menerima terapi parenteral mengandung gula-gula tersebut (Hassan et al., 2021). 2.4 Lokasi Pengambilan Sampel Untuk Glukosa Darah Pembuluh darah merupakan saluran tertutup yang membawa darah dari jantung ke jaringan dan kembali ke jantung. Fungsi utama pembuluh darah adalah mengalirkan darah dari jantung ke seluruh tubuh, menghantarkan oksigen dan nutrisi ke semua sel, serta mengangkut zat buangan seperti karbon dioksida (Guyton & Hall, 2021). 2.4.1 Pembuluh Darah Kapiler Pembuluh darah kapiler adalah pembuluh darah terkecil yang menghubungkan arteriol (pembuluh darah kecil dari arteri) dengan venula (pembuluh darah kecil dari vena). Darah di dalam kapiler adalah campuran dari darah vena dan darah arteri. Kapiler memiliki dinding yang sangat tipis, hanya terdiri dari satu lapisan sel endotel, yang memungkinkan pertukaran gas, nutrisi, dan limbah metabolik antara darah dan jaringan tubuh (Guyton & Hall, 2021). Distribusi kapiler dalam jaringan tubuh bervariasi dengan aktivitas metabolik dari setiap jaringan. Kapiler terutama melimpah di jaringan aktif, seperti jaringan otot dan saraf, di mana hampir setiap sel dekat dengan kapiler. Kapiler kurang melimpah di jaringan ikat, dan mereka tidak hadir di beberapa jaringan, seperti tulang rawan, epidermis, dan lensa dan kornea mata (Saadah, 2018). 14 Lokasi pengambilan darah kapiler pada orang dewasa biasanya diambil dari ujung jari atau daun telinga. Sedangkan itu, pengambilan darah kapiler pada bayi dan anak-anak, lokasi yang dapat digunakan meliputi tumit dan ibu jari kaki. Lokasi pengambilan harus menghindari area yang menunjukkan gangguan sirkulasi darah, seperti sianosis atau kondisi pucat (Natasya, 2022). Pengambilan darah kapiler harus dilakukan dengan baik agar tidak menyebabkan kesalahan yang dapat mempengaruhi kualitas darah kapiler. Berikut prosedur pengambilan darah kapiler : a. Alat dan bahan yang akan digunakan pasatikan alat tersebut steril. b. Membersihkan tempat itu memakai alkohot 70% dan biarkan sampai kering lagi. c. Memegang bagian yang akan ditusuk supaya tidak bergerak dan tekan sedikit supaya rasa nyeri berkurang. d. Menusuk dengan cepat memakai lanset steril. e. Menusuk jari ke tiga atau ke empat dengan arah tegak lurus,pada garis garis sidik kulit, jangan sejajar dengan garis-garis sidik tersebut. f. Menusuk bagian pinggir daun telinga, jangan sisinya. Tusukan harus cukup dalam agar darah mudah keluar. Jangan sampai menekan-nekan jari atau telinga itu untuk mendapat cukup darah. Darah yang diperas ke luar semacam itu telah bercampur dengan cairan jaringan sehingga menjadi encer dan menyebabkan kesalahan. g. Membuang tetesan darah yang pertama keluar dengan memakai kapas kering. Tetesan darah yang berikutnya boleh dipakai untuk pemeriksaan (Gandosoebrata, 2013). Adapun beberapa faktor-faktor kesalahan secara teknis pengambilan darah kapiler yang dapat mempengaruhi hasil pemeriksaan yaitu tusukan yang kurang dalam sehingga dapat mengakibatkan darah harus diperas-peras keluar, tetes darah pertama digunakan untuk pemeriksaan, terjadi bekuan pada tetes darah karena terlalu lambat bekerja, pengambilan darah dari tempat yang ada gangguan peredaran seperti vasokonstriksi (pucat), vasodilatasi (radang, trauma), kongesti atau cyanosis setempat, 15 serta penusukan kulit yang masih basah dengan alkohol sehingga mengakibatkan darah melebar di atas kulit dan sukar untuk dihisap ke dalam pipet (Irawan & Helviola, 2022). 2.4.2 Pembuluh Darah Vena Pembuluh darah vena adalah pembuluh darah yang membawa darah menuju jantung. Pembuluh vena terbentuk dari penyatuan kapiler. Sebagian besar vena membawa darah yang tidak mengandung oksigen dari jaringan tubuh kembali ke jantung, kecuali vena pulmonalis dan vena umbilikalis yang membawa darah beroksigen. Pembuluh darah vena adalah pembuluh yang bersifat lentur dan berfungsi terutama sebagai tempat penyimpanan darah serta mengembalikan darah ke jantung dengan tekanan rendah. Vena adalah pembuluh darah berdinding tipis yang memiliki lumen lebih besar dibandingkan arteri serta jaringan otot dan elastis yang lebih sedikit. Vena juga memiliki katup untuk mencegah aliran balik darah dan memastikan aliran darah satu arah menuju jantung. Karena hampir 60% dari volume darah berada dalam pembuluh darah, vena dapat dianggap sebagai area penyimpanan darah yang dapat dibawa ke bagian lain dari tubuh pada saat dibutuhkan. Sinusoid vena di hati dan limpa sangat penting. Jika darah hilang oleh perdarahan, baik volume darah maupun tekanan darah mengalami penurunan. Sebagai tanggapan hal tersebut, system saraf simpatik mengirimkan impuls untuk mengerut dinding otot pembuluh darah, yang mengurangi volume vena dan mengkompensasi kehilangan darah (Saadah, 2018). Lokasi pengambilan darah vena biasanya pada orang dewasa dipakai salah satu vena dalam fossa cubiti, pada bayi vena jugularis superficialis dapat dipakai atau juga darah dari sinus sagittalis superior (Gandosoebrata, 2013). Pengambilan darah vena harus dilakukan dengan baik agar tidak menyebabkan kesalahan yang dapat mempengaruhi kualitas darah kapiler. Berikut prosedur pengambilan darah kapiler : a. Menyediakan alat dan bahan yang akan diperlukan, dipastikan alat dan bahan yang dipakai tetap dalam keadaan steril. b. Membersihkan tempat itu dengan alkohol 70% dan biarkan sampai menjadi kering lagi. 16 c. Memilih vena dalam fossa cubiti, pasang ikatan pembendung pada lengan atas dan pasien diminta mengepalkan dan membuka tangannya berkali-kali agar vena terlihat jelas. Pembendungan vena tidak perlu dengan ikatan erat-erat, bahkan sebaiknya hanya cukup erat untuk memperlihatkan dan agak menonjolkan vena. d. Menusuk kulit dengan jarum spuid dalam tangan kanan sampai ujung jarum masuk ke dalam lumen vena. e. Melepaskan atau renggangkan pembendungan dan pelahan-lahan, tarik pengisap spuid sampai jumlah darah yang dikehendaki didapat. f. Melepaskan pembendungan jika masih terpasang. g. Meletakkan kapas di atas jarum dan cabut spuid. h. Menekan bekas tusukan selama beberapa menit. i. Masukkan darah ke tabung melalui dinding tabung (Gandosoebrata, 2013). Beberapa kesalahan yang mempengaruhi kualitas darah vena adalah menggunakan spuid yang basah, mengenakan ikatan pembendung terlalu lama atau terlalu keras mengakibatkan hemokonsentrasi, terjadinya bekuan dalam spuid karena lambatnya bekerja, terjadinya hemolisis, yaitu terjadinya ketidaksesuaian cara pengambilan darah, tidak tercampurnya darah dengan antikoagulan (Sandy, 2019). 2.5 Penyakit Gangguan Pada Glukosa Darah 2.5.1 Hipoglikemia Hipoglikemia adalah suatu kondisi medis yang ditandai dengan kadar glukosa darah yang sangat rendah, yang umumnya terjadi pada individu yang menderita diabetes mellitus. Kadar glukosa darah yang dianggap sangat rendah adalah di bawah 2,2 mmol/l. Kondisi ini dapat muncul akibat tidak seimbangan antara asupan makanan, aktivitas fisik, dan penggunaan obat-obatan yang dapat mempengaruhi kadar glukosa dalam darah. Penderita diabetes yang mengonsumsi obat-obatan tertentu, seperti insulin, tanpa memperhatikan pola makan dan aktivitas fisik mereka, berisiko tinggi mengalami hipoglikemi (Ubaidillah et al., 2021). Gejala klinis dari hipoglikemia sangat bervariasi, tetapi beberapa gejala yang umum terjadi meliputi pusing, kelemahan, gemetar, pandangan yang berkunang- 17 kunang, dan keringat dingin, Gejala-gejala ini muncul sebagai respons tubuh terhadap penurunan kadar glukosa yang diperlukan oleh otak dan organ vital lainnya untuk berfungsi dengan baik. Jika kadar glukosa darah turun lebih jauh, misalnya hingga 1,7 mmol/l, gejala dapat menjadi lebih parah dan berpotensi mengancam jiwa, termasuk kehilangan kesadaran. Penting untuk dicatat bahwa otak manusia sangat bergantung pada glukosa sebagai sumber energi utama (Brito et al., 2023). Ketika kadar glukosa darah rendah, otak tidak dapat berfungsi secara optimal, yang dapat menyebabkan kebingungan, kesulitan berkonsentrasi, hingga, koma., pengelolaan hipoglikemia sangat penting bagi penderita diabetes. disarankan untuk mengenali tanda-tanda awal hipoglikemia dan segera mengambil tindakan, seperti mengonsumsi makanan atau minuman yang mengandung glukosa, untuk mengembalikan kadar glukosa darah ke tingkat yang aman. Kondisi hipoglikemia ini juga dapat dipicu oleh beberapa faktor, termasuk pengambilan makanan yang tidak teratur, aktivitas fisik yang berlebihan, atau penggunaan obat-obatan yang tidak sesuai (Chatwin et al., 2021). 2.5.2 Hiperglikemia Hiperglikemia merupakan suatu kondisi medis yang ditandai oleh meningkatnya kadar glukosa dalam darah secara signifikan dan dapat terjadi secara mendadak. Keadaan ini umumnya dipicu oleh berbagai faktor, seperti stres fisiologis, infeksi, serta penggunaan obat-obatan tertentu. Pada diabetes mellitus, hiperglikemia terjadi akibat ketidakmampuan tubuh dalam memproduksi insulin dalam jumlah yang memadai atau karena resistensi insulin, yaitu ketika sel-sel tubuh tidak mampu merespons insulin secara efektif. Akibatnya, glukosa tidak dapat masuk ke dalam sel untuk digunakan sebagai sumber energi dan menumpuk di dalam aliran darahTanda klinis hiperglikemia yang paling umum meliputi poliuria (frekuensi buang air kecil yang meningkat), polidipsia (rasa haus yang berlebihan), polifagia (peningkatan nafsu makan), serta mudah lelah. Apabila tidak ditangani dengan baik dan berlangsung dalam jangka waktu lama, dapat menimbulkan komplikasi seperti infeksi jamur pada area genital, gastroparesis (gangguan pengosongan lambung), serta gangguan fungsi 18 seksual seperti disfungsi ereksi serta komplikasi lainnya retinopatidiabetic (katarak yang diakibatkan oleh diabetes) (Konda, 2021). Apabila kadar glukosa darah melebihi ambang batas ginjal, yaitu sekitar 160– 180 mg/dL, maka akan terjadi glukosuria, yaitu kondisi di mana glukosa terdeteksi dalam urine karena tidak seluruhnya dapat direabsorpsi oleh tubulus ginjal. Hiperglikemia kronis yang tidak terkontrol secara optimal berisiko menyebabkan komplikasi jangka panjang, seperti arteriosklerosis (penyempitan arteri), penebalan membran basal kapiler, serta gangguan pada sistem saraf perifer.sehingga dapat menyebabkan nefropathydiabetic, Oleh karena itu, pemantauan kadar glukosa darah secara berkala dan penerapan pengelolaan yang tepat sangat diperlukan pada individu dengan diabetes melitus (Wu et al., 2023). 2.6 Kerangka Teori Adapun kerangka teori dalam penelitian ini adalah sebagai berikut : Glukosa Darah Darah Kapiler Darah Vena Hasil pemeriksaan glukosa puasa darah kapiler Hasil pemeriksaan glukosa puasa darah Vena Perbandingan Hasil Pemeriksaan Glukosa darah puasa melalui Kapiler dan Vena Skema 2.6.1 Kerangka Teori 19 2.7 Kerangka Konsep Penelitian Adapun kerangka konsep dalam penelitian ini adalah sebagai berikut : Variebel Independen Variabel Dependen Darah Kapiler Kadar Glukosa Darah Puasa Darah Vena Skema 2.7.1 Kerangka Konsep 2.8 Hipotesis Berdasarkan kerangka teori dan kerangka konsep yang telah dibuat sebelumnya, maka dirumuskan hipotesis-hipotesis penelitian ini sebagai berikut : 1. Hipotesis nol (H0) : Tidak ada perbedaan signifikan antara hasil pemeriksaan glukosa darah kapiler dan vena menggunakan alat glukometer. 2. Hipotesis alternatif (H1) : Terdapat perbedaan signifikan antara hasil pemeriksaan glukosa darah kapiler dan vena menggunakan alat glukometer. 20 BAB III METODE PENELITIAN 3.1 Jenis dan Rancangan Penelitian Jenis Penelitian yang dilakukan adalah penelitian kuantitatif dengan pendekatan cross-sectional yaitu dengan membandingkan hasil pemeriksaan kadar glukosa darah puasa pada darah kapiler dan darah vena dengan alat glukometer. 3.2 Lokasi dan Waktu Penelitian 3.2.1 Lokasi Penelitian Penelitian ini dilakukan di instalasi laboratorium patologi klinik Rumah Sakit Umum Daerah Porsea. 3.2.2 Waktu Penelitian Penelitian ini dilaksanakan pada bulan April 2025. 3.3 Populasi dan Sampel Penelitian 3.3.1 Populasi Penelitian Populasi adalah sekelompok objek atau subjek yang memiliki kualitas dan karakteristik tertentu diterapkan dalam penelitian untuk dianalisis guna mendapatkan Kesimpulan yang relevan (Iba & Wardhana, 2021). Populasi yang digunakan dalam penelitian ini adalah seluruh pasien yang melakukan pemeriksaan glukosa puasa di Rumah Sakit Umum Daerah Porsea. 3.3.2 Sampel Penelitian Sampel adalah bagian dari populasi yang diambil dengan menggunakan caracara tertentu, sehingga dapat mewakili populasi tersebut (Suriani et al., 2023). Sampel yang digunakan dalam penelitian ini adalah pasien di Rumah Sakit Umum Daerah Porsea yang melakukan pemeriksaan glukosa puasa selama periode bulan April 2025. Rumus Slovin adalah metode yang digunakan untuk menentukan ukuran sampel dari suatu populasi yang diketahui jumlahnya, dengan mempertimbangkan tingkat kesalahan (margin of error) yang dapat ditoleransi. (Pakendek & Rantetampang, 2018). 21 Rumus Slovin untuk menentukan sampel adalah sebagai berikut : 𝑛 = 𝑁 (1 + (𝑁 ∙ 𝑒 2 )) 𝑛 = 30 (1 + 30 ∙ (0,05)2 = 30 1,075 = 27,9 Dengan perkiraan populasi sebanyak 30 orang dan margin error 5%, maka didapatkan jumlah sampel sebanyak 28 sampel. Keterangan : 𝑛 = ukuran sampel/jumlah responden 𝑁 = ukuran populasi 𝑒 = persentase kelonggaran ketelitian kesalahan pengambilan sampel yang masih bisa ditolerir. 3.3.3 Teknik Pengambilan Sampel Teknik pengambilan sampel yang digunakan dalam penelitian ini adalah purposive sampling. Menurut Sugiono (2020) yang dikutip dari (Erwan & Edi Setiawan, 2023) purposive sampling adalah teknik penentuan sampel dengan pertimbangan kriteria tertentu Dimana pengambilan sampel didasarkan pada kriteria yang telah ditetapkan sebelumnya oleh peneliti. Pengambilan sampel dalam penelitian ini berdasarkan pertimbangan kriteria inklusi dan kriteria eksklusi antara lain : 1. Kriteria Inklusi Kriteria inklusi merupakan kriteria dimana subjek penelitian mewakili sampel yang memenuhi syarat sebagai sampel (Yulianto & Alhamdi, 2022). Kriteria inklusi sampel dalam penelitian ini adalah : a. Pasien berusia 18 tahun. b. Pasien berstatus puasa minimal 8-10 jam. c. Pasien yang disarankan untuk pemeriksaan glukosa puasa. 2. Kriteria Eksklusi 22 kriteria eksklusi merupakan dimana subjek penelitian tidak dapat mewakili sampel dikarenakan tidak memenuhi syarat sebagai sampel (Yulianto & Alhamdi, 2022). Kriteria eksklusi sampel dalam penelitian adalah : a. Pasien yang berusia dibawah 18 tahun. b. Pasien yang tidak berpuasa minimal 8-10 jam. c. Pasien yang tidak disarankan untuk pemeriksaan glukosa puasa. 3.4 Metode Pengumpulan Data Metode pengumpulan data merupakan teknik ataupun cara yang digunakan peneliti untuk mengumpulkan data yang nantinya data tersebut akan digunakan peneliti untuk memperoleh bahan, keterangan, dan informasi terkait dengan penelitian yang dilakukan (Mukhamad Fathoni, 2019). Metode pengumpulan data dalam peneltian ini adalah sebagai berikut : 3.4.1 Data Primer Data primer adalah data yang dikumpulkan langsung oleh peneliti untuk tujuan penelitian spesifik melalui metode seperti survei atau eksperimen (Sekaran & Bougie, 2017). Data primer yang digunakan dalam penelitian ini diperoleh setelah melakukan pemeriksaan glukosa puasa kapiler dan glukosa puasa darah vena pada pasien yang sama dengan menggunakan alat glukometer. 3.4.2 Data Sekunder Data sekunder adalah data yang bersumber eksternal yang diperoleh melalui referensi dari luar baik artikel, jurnal, dan lainnya (Arviyanda et al., 2023). Data sekunder dalam penelitian ini diperoleh dari sumber-sumber yang relevan, baik diperoleh melalui buku, jurnal, dan informasi lain yang berkaitan dengan penelitian untuk dijadikan sebagai teoritis dalam penyusunan proposal. 3.5 Variabel Penelitain Variable penelitian Variabel penelitian merujuk pada segala aspek atau karakteristik yang ditentukan oleh peneliti untuk dianalisis, dengan tujuan memperoleh data atau informasi yang relevan, uttuk ditarik suatu Kesimpulan (Hardani et al., 2020). Variabel Penelitian dalam peneltian ini adalah sebagai berikut : 23 3.5.1 Variabel Bebas (Independent Variable) Variabel Bebas (Independent variable) adalah variabel yang mempengaruhi atau yang menjadi sebab perubahannya atau timbulnya variabel terikat (Dependent variable) (Setyawan, 2021). Variable independent yang digunakan dalam penelitian ini adalah jenis sampel darah (kapiler dan vena). 3.5.2 Variabel Terikat (Dependent Variable) Variabel Terikat (Dependent variable) merupakan Variabel yang dipengaruhi atau yang menjadi akibat karena adanya variabel bebas (Independent variable) (Setyawan, 2021). Variable dependent yang digunakan dalam penelitian ini adalah hasil kadar glukosa darah puasa yang diukur menggunakan alat glukometer. 3.6 Definisi Operasional Definisi operasional adalah definisi dari variable-variabel yang akan diteliti secara operasional (Anggreni, 2022). Definisi operasional yang digunakan dalam penelitian ini diuraikan sebagai berikut : No. 1. 2. Variabel Penelitian Independent : Darah Kapiler dan Vena Definisi Operasional Jenis sampel darah yang digunakan dalam pemeriksaan glukosa, yaitu darah kapiler dan darah vena. Dependent : Hasil Kadar Glukosa Kadar glukosa puasa yang diukur menggunakan alat glukometer setelah pasien berpuasa minimal 8 jam. Cara Parameter Skala Pengukuran Pengambilan 1. Kapiler Nominal sampel darah 2. Vena dari kapiler (ujung jari) dan vena (vena mediana cubiti) sebelum pemeriksaan glukosa. Mengukur mg/dl Rasio kadar glukosa darah kapiler dan vena dengan menggunakan alat glukometer. 24 3.7 Alat dan Bahan Penelitian 3.7.1 Alat Alat yang digunakan dalam penelitian ini adalah handscoon, blood lancet, kapas kering, kapas alkohol 70%, terniquet, spuit 3cc, tabung vacuum EDTA, alat glukometer (Accu-Chek Performa), strip tes alat glukometer (Accu-Chek Performa). 3.7.2 Bahan Bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah darah kapiler dan darah vena. 3.8 Prosedur Penelitian 3.8.1 Pengambilan Darah Kapiler a. Tahap Pra-analitik 1. Melakukan wawancara untuk memastikan nama pasien, No RM, tanggal lahir sesuai dengan form permintaan laboratorium. 2. Memberikan penjelasan tentang tujuan dan prosedur pengambilan. 3. Memastikan posisi nyaman bagi pasien (biasanya duduk atau berbaring). 4. Mempersiapkan alat yang akan digunakan. b. Tahap Analitik 1. Membersihkan area yang akan ditusuk dengan kapas alkohol 70%, di biarkan hingga kering. 2. Memegang bagian jari ujung jari manis atau jari tengah akan ditusuk dan tekan sedikit untuk mengurangi rasa nyeri. 3. Menusuk dengan cepat dan tepat dengan blood lancet. 4. Membuang tetesan darah pertama keluar dengan menggunakan kapas kering, kemudian tetesan berikutnya digunaka untuk pemeriksaan. c. Tahap Pasca-analitik Melakukan pemeriksaan dan pembacaan hasil glukosa darah dengan alat glukometer. 25 3.8.2 Pengambilan Darah Vena a. Tahap Pra-analitik 1. Melakukan wawancara untuk memastikan nama pasien, No RM, tanggal lahir sesuai dengan form permintaan laboratorium. 2. Memberikan penjelasan tentang tujuan dan prosedur pengambilan. 3. Memastikan posisi nyaman bagi pasien (biasanya duduk atau berbaring). 4. Mempersiapkan alat yang akan digunakan. b. Tahap Analitik 1. Memilih vena yang mudah diakses (pengambilan dilakukan pada vena mediana cubiti di lengan). 2. Memasang tourniquet 7-10 cm di atas lokasi tusukan dan pasien diminta mengepalkan tangan, pembendungan tidak lebih dari 1 menit . 3. Membersihkan area penusukan dengan alkohol 70% secara melingkar dari dalam ke luar, biarkan kering. 4. Menusuk vena dengan jarung menghadap keatas dengan sudut kiri–kira 30°45° 5. Melakukan aspirasi darah secara perlahan sesuai volume yang dibutuhkan, pasien diminta melepas kepalan tangan. 6. Melepaskan torniquet, dilakukan penutupan kapas diatas jarum dan melepaskan jarum perlahan-lahan. 7. Melakukan penutupan pada bekas penusukan dengan plaster. 8. Memasukan darah ke dalam dinding tabung EDTA. 9. Melakukan pelabelan sampel darah pada tabung. c. Tahap Pasca-analitik Melakukan pemeriksaan dan pembacaan hasil glukosa darah dengan alat glukometer. 3.8.3 Pemeriksaan Glukosa Darah 1. Mengambil trip tes alat glukometer (Accu-Chek Performa) dari wadahnya. 2. Memasukkan strip ke dalam slot alat (secara otomatis alat akan menyala jika dalam keadaan mati). 26 3. Menunggu hingga di layar muncul simbol tetes darah, menandakan alat siap digunakan. 4. Segera meneteskan darah pada ujung strip tes hingga terdengar bunyi "bip" atau indikator di layar menunjukkan darah cukup. 5. Menunggu ±5 detik hingga hasil glukosa darah muncul di layar (mg/dL). 6. Pencatatan hasil pemeriksaan sesuai format pencatatan laboratorium atau rekam medis pasien. 3.9 Analisa Data Data yang diperoleh kemudian dianalisis secara statistik diawali dengan uji normalitas, uji normalitas yang digunakan dalam penelitian ini adalah uji Shapiro Wilk yaitu merupakan salah satu metode uji normalitas yang efektif dan valid digunakan untuk sampel berjumlah kecil. Uji normalitas adalah uji yang digunakan untuk mengetahui data yang diperoleh berdistribusi normal atau tidak. Jika uji normalitas menunjukkan bahwa nilai signifikansi (p) pada data kadar glukosa darah kapiler dan darah vena > 0,05, maka data berditribusi normal dan dilanjutkan dengan uji parametrik Paired t-test yang bertujuan membandingkan rata-rata dari dua kelompok berpasangan atau dua kondisi pada sampel yang sama. Jika uji normalitas menunjukkan bahwa nilai signifikansi (p) < 0,05, maka data berditribusi tidak normal dan dilanjutkan dengan uji non-parametrik Wilcoxon Signed Rank Test yang bertujuan untuk membandingkan perbedaan peringkat antara dua kelompok berpasangan atau dua kondisi pada sampel yang sama. Setelah dilakukan salah satu uji Paired t-test dan Wilcoxon Signed Rank Test, maka dilanjutkan dengan menganalisis hasil uji dan menarik kesimpulan berdasarkan nilai p yang diperoleh. 27 DAFTAR PUSTAKA Abdimas, L. (2023). Gambaran kadar gula darah sewaktu dan tingkat pengetahuan masyarakat dusun pimpinga desa baturappe kecamatan biringbulu kabupaten gowa. 4(1), 20–28. Almaliah, I., & Sudrajat, A. (2024). DARAH SEGERA DAN DITUNDA SELAMA 2 JAM DENGAN METODE POCT. 51–56. Alydrus, N. L., & Fauzan, A. (2022). Pemeriksaan Interpretasi Hasil Gula Darah. Jurnal Pengabdian Masyarakat Teknologi Kesehatan, 3(2), 16–21. Anggreni, D. (2022). Buku Ajar Metodologi Penellitian Kesehatan. Arviyanda, R., Fernandito, E., & Landung, P. (2023). Analisis Perbedaan Bahasa dalam Komunikasi Antarmahasiswa. Jurnal Harmoni Nusa Bangsa, 1(1), 67. https://doi.org/10.47256/jhnb.v1i1.338 Badugu, R., Lakowicz, J. R., & Geddes, C. D. (2021). Emerging technologies for glucose monitoring. TrAC Trends in Analytical Chemistry. TrAC Trends in Analytical Chemistry, 103(116324), 142. https://doi.org/10.1007/s41745-02200348-3 Bagshaw, S. M., & Bellomo, R. (2020). Disorders of Sodium and Water Balance. Critical Care Nephrology, Second Edition, 515–522. https://doi.org/10.1016/B978-1-4160-4252-5.50102-7 Baharudin, Nurulita, A., & Arif, M. (2018). Uji Glukosa Darah Antara Metode Heksokinase dengan Glukosa Oksidase dan Glukos Dehidrogenesase di Diabetes Melitus. In Indonesian Journal of Clinical Pathology and Medical Laboratory: Vol. Vol. 21 (Issue No. 2, pp. 170–173). Brito, P. C., Lopes, V., Antunes, E., Alves, M., Gonçalves, I., & Matos, A. C. (2023). Hypoglycemia in a Non-diabetic Patient and the Side Effects of Diazoxide Use. Cureus, 15(3). https://doi.org/10.7759/cureus.36804 Chatwin, H., Broadley, M., Valdersdorf Jensen, M., Hendrieckx, C., Carlton, J., Heller, S., Amiel, S., De Galan, B., Hermanns, N., Finke-Groene, K., Speight, J., & Pouwer, F. (2021). Never again will i be carefree’: A qualitative study of the impact of hypoglycemia on quality of life among adults with type 1 diabetes. BMJ Open Diabetes Research and Care, 9(1), 1–10. https://doi.org/10.1136/bmjdrc2021-002322 Dewia, O. Y., Saputrob, A. A., Islamiyahc, N., & Kurniad, S. D. (2023). Perbedaan Hasil Pemeriksaan Kadar Glukosa Darah Sewaktu Menggunakan Metode Glucose Oxidase-Peroxidase Aminoantypirin (GOD-PAP) Dan Strip Test Poct (Point Care Of Testing). Jurnal Medika Indonesia, 4(2), 9–14. Erbach, M., Freckmann, G., Hinzmann, R., Kulzer, B., Ziegler, R., Heinemann, L., & Schnell, O. (2016). Interferences and limitations in blood glucose self-testing: An 28 overview of the current knowledge. Journal of Diabetes Science and Technology, 10(5), 1161–1168. https://doi.org/10.1177/1932296816641433 Erwan, E. S., & Edi Setiawan. (2023). Pengaruh Kemudahan Penggunaan Dan Promosi Penjualan Terhadap Keputusan Penggunaan E-Wallet Dana Pada Mahasiswa Di Kota Yogyakarta. Jurnal Manajemen Dirgantara, 16(1), 129–140. https://doi.org/10.56521/manajemen-dirgantara.v16i1.822 Fajarna, F., Putri, S. K., & Irayana, N. I. (2022). Perbedaan kadar glukosa darah berdasarkan hasil pemeriksaan spektrofotometer dengan glukometer di UPTD Puskesmas Sukajaya Kota Sabang. Jurnal SAGO Gizi Dan Kesehatan, 4(1), 89. https://doi.org/10.30867/gikes.v4i1.1068 Fernando, A., Nurhidayanti, & Bastian. (2024). Perbedaan Kadar Glukosa Darah Metode God-Pap Dan Poct Menggunakan Sampel Darah Vena Dan Darah Kapiler. Masker Medika, 12(1), 202–208. https://doi.org/10.52523/maskermedika.v12i1.626 Fernando, P., Mandias, R. J., & Senduk, A. F. S. (2024). PERILAKU MEROKOK DAN KADAR GULA DARAH PENDERITA DIABETES MELITUS. Nutrix Journal, 171–178. Gandosoebrata, R. (2013). PENUNTUN LABORATORIUM KLINIK: Vol. XV. Dian Rakyat. Guyton, & Hall. (2021). Text Book of Medical Physiology. 1013. Handayani, F., Suangga, F., & Ennimay, E. (2025). Pengaruh Edukasi Terhadap Tingkat Kepatuhan Minum Obat Dan Prilaku Diet Pada Pasien Diabetes Mellitus Tipe II di RSUD Kabupaten Bintan. Hardani, Andriani, H., Ustiawaty, J., Utami, E. F., Istiqomah, R. R., Fardani, R. A., Sukmana, D. J., & Auliya, N. H. (2020). Metode penelitian Kualitatif & Kuantitatif. In Revista Brasileira de Linguística Aplicada (Vol. 5, Issue 1). Hassan, M. H., Vyas, C., Grieve, B., & Bartolo, P. (2021). Recent advances in enzymatic and non-enzymatic electrochemical glucose sensing. Sensors, 21(14). https://doi.org/10.3390/s21144672 Herawati, E. Y., Ariyadi, T., & Santosa, B. (2017). PERBEDAAN KADAR GLUKOSA DARAH SEWAKTU PADA DARAH KAPILER DAN VENA DENGAN TEST STRIP (GLUCOMETER ON CALL). Perpus Unimus. http://repository.unimus.ac.id/id/eprint/405 Iba, Z., & Wardhana, A. (2021). Populasi dan Sampel. In Metode Penelitian Pendekatan Kuantitatif (Vol. 14, Issue 1). Irawan, M. P., & Helviola, H. (2022). Kadar Kolesterol Darah Tanpa Usapan Dan Dengan Usapan Kapas Kering Metode Point of Care Testing (Poct). SENTRI: Jurnal Riset Ilmiah, 2(1), 109–114. https://doi.org/10.55681/sentri.v2i1.308 29 Kardi, R. I., Sukeksi, A., & Nuroini, F. (2018). PERBEDAAN HASIL PEMERIKSAAN KADAR GLUKOSA DARAH DENGAN GLUKOMETER (METODE POCT) MENGGUNAKAN SAMPEL DARAH VENA DAN DARAH KAPILER. Reposity Universitas Muhamadia Semarang, 722. http://repository.unimus.ac.id/id/eprint/1243 Konda, L. (2021). High Blood Sugar Levels Over a Prolonged Period : Diabetes. Journal of Glycobiology High, 10, 3–4. Laisouw, A. J., Herlisa, A., & Ariyadi, T. (2017). Perbedaan Kadar Glukosa Darah Tanpa dan Dengan Hapusan kapan Kering Metode POCT. Jurnal Universitas Muhammadiyah Semarang, 2030(September), 661–665. Mahdalina, D., Sari, E. P., & Kusumawardani, E. (2024). Gambaran Kadar Tes Toleransi Glukosa Oral ( TTGO ) Pada Wanita Dengan Sedentary Lifestyle ( Studi di Dusun Kapas , Dukuhklopo , Peterongan , Jombang ) Description of Oral Glucose Tolerance Test ( OGTT ) Levels in Women with. 5(September), 131–136. Moghadam, M. R., Saadatmand, M., & Khajeh, K. (2021). Recent advances in enzymebased glucose biosensors: A review. Biosensors and Bioelectronics, 3(14), 183, 113246. https://doi.org/10.1039/c2ra22351a Mukhamad Fathoni, M. P. I. (2019). Teknik Pengumpulan Data Penelitian. In Jurnal Keperawatan (Issue July). Natasya, R. S. (2022). KELAYAKAN SAMPEL DARAH VENA DAN DARAH KAPILER TERHADAP PEMERIKSAAN JUMLAH TROMBOSIT MENGGUNAKAN HEMATOLOGY ANALYZER SYSMEX XP-100 DI RS KHUSUS BEDAH RAWAMANGUN. 9, 356–363. https://repository.binawan.ac.id/1917/1/TLM2022-REHEZKIEL SASHA NATASYA.pdf?utm Oktaviana, E., Nadrati, B., Supriyatna, L. D., & Zuliardi, Z. (2023). Pemeriksaan Gula Darah Untuk Mencegah Peningkatan Kadar Gula Darah Pada Pasien Diabetes Mellitus. Jurnal LENTERA, 2(2), 232–237. https://doi.org/10.57267/lentera.v2i2.201 Pakendek, G., & Rantetampang, A. . (2018). Study Persepsi Pasien Kualitas Penyediaan Makanan Terhadap Citra Rumah Sakit Umum Jayapura. Jurnal Nasional Ilmu Kesehatan (Jnik), 1(69), 1–16. Petersmann, A., Müller-Wieland, D., Müller, U. A., Landgraf, R., & Nauck, M. Freckmann, G., Heinemann, L. (2020). New glucose monitoring technologies and their application in type 1 and type 2 diabetes: A consensus report by the German Diabetes Association (DDG). Diabetologia, 63(2), 221–229. https://doi.org/10.1055/a-1624-3282 Puspita, I., Kurniawan, M. R., & Riyanti, A. (2023). Perbandingan Pemeriksaan Glukosa Darah Puasa Dengan Menggunakan Sampel Serum Dan Plasma Edta Pada Pasien Diabetes Melitus Tipe 2. Journal of Indonesian Medical Laboratory 30 and Science (JoIMedLabS), https://doi.org/10.53699/joimedlabs.v4i2.118 4(2), 87–94. Rosares, V. E., & Boy, E. (2022). Pemeriksaan Kadar Gula Darah untuk Screening Hiperglikemia dan Hipoglikemia. Jurnal Implementa Husada, 3(2), 65–71. https://doi.org/10.30596/jih.v3i2.11906 Saadah, S. (2018). Sistem Peredaran Darah Manusia. In PROGRAM STUDI PENDIDIKAN BIOLOGI FAKULTAS TARBIYAH DAN KEGURUAN UIN SUNAN GUNUNG DJATI BANDUNG. https://idschool.net/smp/sistemperedaran-darah-manusia/ Sandy, M. E. (2019). Perbedaan kadar Glukosa Darah Menggunakan Sampel Darah Vena dan Darah Kapiler. Stikes Insan Cendekia Medika Jombang. Sekaran, U., & Bougie, R. (2017). Research Methods for Business: A Skill-Building Approach. Setyawan, D. A. (2021). Hipotesis Dan Variabel Penelitian. In Tahta Media Group. Simamora, A. (2023). PERBEDAAN HASIL PEMERIKSAAN KADAR GLUKOSA DARAH METODE POINT OF CARE TEST (POCT) MENGGUNAKAN SAMPEL DARAH VENA DAN DARAH KAPILER PADA PASIEN DIABETES MELITUS TIPE II Differences In The Results Of Examination Of Blood Glucose Levels By The Point Of Care Te. Jurnal Medistra Medical Journal (MMJ), e-ISSN XXXX-XXXX, 1(1). https://ejournal.medistra.ac.id/index.php/MMJ Soelistijo, S. (2021). Pedoman Pengelolaan dan Pencegahan Diabetes Melitus Tipe 2 Dewasa di Indonesia 2021. Global Initiative for Asthma, 46. www.ginasthma.org. Suriani, N., Risnita, & Jailani, M. S. (2023). Konsep Populasi dan Sampling Serta Pemilihan Partisipan Ditinjau Dari Penelitian Ilmiah Pendidikan. Jurnal IHSAN : Jurnal Pendidikan Islam, 1(2), 24–36. https://doi.org/10.61104/ihsan.v1i2.55 Tawiah, K., Jackson, L., Omosule, C., Ballman, C., Shahideh, B., Scott, M. G., Murtagh, G., & Farnsworth, C. W. (2022). Evaluation of enzyme-based laboratory methods for plasma glucose determination: Current challenges and perspectives. Clinical Biochemistry, 107(June), 24–32. https://doi.org/10.1016/j.clinbiochem.2022.06.002 Ubaidillah, Z., Sari, D. A. P., & Mashfufu, E. W. (2021). DETERMINAN INSIDEN HIPOGLIKEMIA PADA PASIEN DIABETES MELLITUS TIPE. Jurnal Ilmiah Keperawatan, 7. Wu, T., Ding, L., Andoh, V., Zhang, J., & Chen, L. (2023). The Mechanism of Hyperglycemia-Induced Renal Cell Injury in Diabetic Nephropathy Disease: An Update. Life, 13(2), 1–18. https://doi.org/10.3390/life13020539 Yulianto, A. A., & Alhamdi, F. (2022). Jurnal Hasi Penelitian Dan Pengkajian Ilmiah 31 Eksakta. Jppie, 01(01), 59–64. http://jurnal.unidha.ac.id/index.php/jppie Yulistari, N. (2022). KARYA TULIS ILMIAH HUBUNGAN TINGKAT STRES DENGAN KADAR GLUKOSA DARAH PADA MAHASISWA SEMESTER 6 PRODI D3 TLM DI ITSKes ICMe JOMBANG. 9, 356–363. Yuniastuti, A., Susanti, R., & Iswari, R. S. (2018). Efek Infusa Umbi Garut (Marantha arundinaceae L) Terhadap Kadar Glukosa dan Insulin Plasma Tikus yang Diinduksi Streptozotocyn. Jurnal Mipa, 41(1), 34–39. 32
