Uploaded by common.user150689

Pengujian Glukosa: Proposal Darah Kapiler vs. Vena

advertisement
PROPOSAL
PERBANDINGAN HASIL PEMERIKSAAN GLUKOSA PUASA
DARAH KAPILER DENGAN DARAH VENA MENGGUNAKAN
ALAT GLUKOMETER DI LABORATORIUM RUMAH
SAKIT UMUM DAERAH PORSEA
OLEH :
WICHA TANTRI SIAHAAN
NPM : 2482077
PROGRAM STUDI DIPLOMA IV
TEKNOLOGI LABORATORIUM MEDIK
FAKULTAS KEDOKTERAN
INSTITUT KESEHATAN MEDISTRA LUBUK PAKAM
2025
KATA PENGANTAR
Puji Syukur kepada Tuhan Yang Maha Esa, atas segala berkat dan karunia-Nya
sehingga penulis dapat menyelesaikan Proposal penelitian ini yang berjudul
“Penbandingan Hasil Pemeriksaan Glukosa Puasa Darah Kapiler Dengan darah Vena
Menggunakan Alat Glukometer di Laboratorium Rumah Sakit Umum Daerah Porsea”.
Proposal penelitian ini disusun untuk memenuhi salah satu syarat penyelesaian
pendidikan di Institute Kesehatan Medistra Lubuk Pakam.
Dalam penulisan proposal penelitian ini, penulis banyak dibantu oleh banyak
pihak yang mendukung hingga bisa menyelesaikan proposal ini. Pada kesempatan ini
penulis mengucapkan terimakasih kepada :
1. Drs. Johannes Sembiring, M.Pd., M.Kes., selaku Ketua Yayasan Institut
Kesehatan Medistra Lubuk Pakam.
2. Ns. Rahmad Gurusinga, S.Kep., M.Kep., selaku Rektor Institut Kesehatan
Medistra Lubuk Pakam.
3. dr. Rahmadani Sitepu, S.Pd, M.Kes, Sp.KKLP, selaku Dekan Fakultas
Kedokteran Institut Kesehatan Medistra Lubuk Pakam, selaku Dosen
Pembimbing dan Dosen Penguji yang telah banyak meluangkan waktu untuk
membimbing dan memberi arahan kepada penulis.
4. Sa’adah Siregar, S.Si., M.Kes., selaku Ketua Program Studi Teknologi
Laboratorium Medik Institut Kesehatan Medistra Lubuk Pakam.
5. Seluruh Dosen dan Staf pegawai Institut Kesehatan Medistra Lubuk Pakam
yang telah banyak memberikan pengetahuan, bimbingan, dan arahan selama
mengikuti pendidikan.
6. Kepala Ruangan Laboratorium Patologi Klinik dan rekan-rekan di RSUD
Porsea.
7. Teristimewa kepada kedua orang tua dan saudara-saudara penulis yang
senantiasa memberikan dukungan moral maupun material serta doa dan
i
motivasi kepada penulis selama ini hingga penulis dapat menyelesaikan
proposal penelitian ini.
8. Seluruh teman-teman Jurusan Teknologi Laboratorium Medik NR Angkatan 3,
terimakasih telah mensupport dan mendoakan yang terbaik kepada penulis.
Penulis menyadari banyak kelemahan dan kekurangan dalam penulisan
proposal ini, oleh karena itu penulis sangat mengharapkan kritik dan saran yang bersifat
membangun demi perbaikan proposal ini. Harapan penulis semoga proposal ini dapat
bermanfaat bagi penulis maupun pembaca.
Lubuk Pakam, April 2025
Wicha Tantri Siahaan
NPM : 2482077
ii
DAFTAR ISI
KATA PENGANTAR .................................................................................................. i
DAFTAR ISI ............................................................................................................... iii
BAB I PENDAHULUAN ............................................................................................ 1
1.1 Latar Belakang .................................................................................................... 1
1.2 Rumusan Masalah ............................................................................................... 4
1.3 Tujuan Penelitian ................................................................................................. 4
1.3.1 Tujuan Umum ............................................................................................... 4
1.3.2 Tujuan Khusus .............................................................................................. 4
1.4 Manfaat Penelitian ............................................................................................... 4
1.4.1 Bagi Institusi ................................................................................................. 4
1.4.2 Bagi Tenaga Kesehatan ................................................................................ 5
1.4.3 Bagi Peneliti.................................................................................................. 5
BAB II TINJAUAN PUSTAKA................................................................................. 6
2.1 Glukosa Darah ..................................................................................................... 6
2.2 Jenis Pemeriksaan Glukosa Darah ...................................................................... 7
2.2.1 Glukosa Darah Puasa (GDP) ........................................................................ 7
2.2.2 Glukosa Darah 2 Jam Post Prandial.............................................................. 7
2.2.3 Glukosa Darah Sewaktu (GDS) .................................................................... 8
2.2.4 Glukosa Darah Toleransi (TTGO) ................................................................ 8
2.3 Metode Pemeriksaan Glukosa Darah .................................................................. 9
2.3.1 Glukometer (POCT) ..................................................................................... 9
2.3.2 GOD-PAP ................................................................................................... 10
2.3.3 Glukosa Heksokinase .................................................................................. 11
2.3.4 Glukosa Dehidrogenase (GDH) .................................................................. 13
2.4 Lokasi Pengambilan Sampel Untuk Glukosa Darah ......................................... 14
2.4.1 Pembuluh Darah Kapiler ............................................................................ 14
2.4.2 Pembuluh Darah Vena ................................................................................ 16
2.5 Penyakit Gangguan Pada Glukosa Darah .......................................................... 17
2.5.1 Hipoglikemia .............................................................................................. 17
iii
2.5.2 Hiperglikemia ............................................................................................. 18
2.6 Kerangka Teori .................................................................................................. 19
2.7 Kerangka Konsep Penelitian ............................................................................. 20
2.8 Hipotesis ............................................................................................................ 20
BAB III METODE PENELITIAN .......................................................................... 21
3.1 Jenis dan Rancangan Penelitian ........................................................................ 21
3.2 Lokasi dan Waktu Penelitian ............................................................................. 21
3.2.1 Lokasi Penelitian......................................................................................... 21
3.2.2 Waktu Penelitian ......................................................................................... 21
3.3 Populasi dan Sampel Penelitian ........................................................................ 21
3.3.1 Populasi Penelitian...................................................................................... 21
3.3.2 Sampel Penelitian ....................................................................................... 21
3.3.3 Teknik Pengambilan Sampel ...................................................................... 22
3.4 Metode Pengumpulan Data ............................................................................... 23
3.4.1 Data Primer ................................................................................................. 23
3.4.2 Data Sekunder ............................................................................................. 23
3.5 Variabel Penelitain ............................................................................................ 23
3.5.1 Variabel Bebas (Independent Variable) ...................................................... 24
3.5.2 Variabel Terikat (Dependent Variable) ...................................................... 24
3.6 Definisi Operasional .......................................................................................... 24
3.7 Alat dan Bahan Penelitian ................................................................................. 25
3.7.1 Alat.............................................................................................................. 25
3.7.2 Bahan .......................................................................................................... 25
3.8 Prosedur Penelitian ............................................................................................ 25
3.8.1 Pengambilan Darah Kapiler ........................................................................ 25
3.8.2 Pengambilan Darah Vena ........................................................................... 26
3.8.3 Pemeriksaan Glukosa Darah ....................................................................... 26
3.9 Analisa Data ...................................................................................................... 27
DAFTAR PUSTAKA ................................................................................................ 28
iv
BAB I
PENDAHULUAN
1.1
Latar Belakang
Glukosa darah atau yang lebih dikenal sebagai gula darah merupakan gula yang
terdapat didalam darah yang terbentuk dari pembentukan karbohidrat dalam makanan
dan kemudian disimpan sebagai glikogen di otot rangka dan hati (Yulistari, 2022).
Kadar glukosa darah sangat diatur ketat oleh insulin dalam tubuh. Insulin dikenal
sebagai hormon yang berperan penting untuk mengatur keseimbangan glukosa darah
dalam sirkulasi darah. Dengan demikian ketidakseimbangan antara transportasi
glukosa ke dalam sel dengan produksi insulin oleh pankreas menyebabkan terjadinya
hiperglikemia dan berujung diabetes melitus (Yuniastuti et al., 2018).
Diabetes Melitus (DM) saat ini, menjadi salah satu ancaman serius kesehatan
global. Menurut data badan kesehatan dunia (WHO) jumlah penderita DM di seluruh
dunia telah meningkat signifikan dalam beberapa dekade terakhir. Badan kesehatan
dunia (WHO) juga menyatakan bahwa tidak kurang 150 juta orang di seluruh dunia
menderita DM yang dapat berakibat fatal. Jumlah penderitanya terus meningkat setiap
tahunnya dan sebagian besar berasal dari negara berkembang (A. Fernando et al.,
2024). Badan kesehatan dunia (WHO) juga memprediksi peningkatan jumlah penderita
DM di Indonesia akan meningkat dari 8,4 juta pada tahun 2000 menjadi sekitar 21,3
juta pada tahun 2030. Sementara itu, menurut International Diabetes Federation (IDF)
juga menunjukkan adanya kenaikan, di mana jumlah penderita DM diperkirakan
bertambah dari 10,7 juta pada tahun 2019 menjadi 13,7 juta pada tahun 2030
(Soelistijo, 2021). Oleh sebab itu, penderita DM memerlukan pengontrolan ketat
terhadap kadar glukosa darahnya.
Menurut Perkumpulan Endrikologi Indonesia (2011) yang dikutip dari (Kardi et
al., 2018), pemeriksaan kadar glukosa darah dapat dilakukan dengan berbagai metode
yaitu hexokinase, glucose oxidase dan glucose dehydrogenase. Metode hexokinase,
yang merupakan gold standard pemeriksaan kadar glukosa darah, menggunakan bahan
pemeriksaan berupa darah vena dan sering dilakukan di laboratorium. Pemeriksaan
1
kadar glukosa darah menggunakan metode glucose oxidase dan glucose dehydrogenase
menggunakan bahan pemeriksaan berupa darah kapiler dan sering diterapkan pada alat
glukometer (metode POCT).
Point Off Care Test (POCT) merupakan serangkaian pemeriksaan laboratorium
sederhana menggunakan alat glukometer. Metode ini umumnya masih banyak
digunakan sebagai Bedside testing (tes disamping tempat tidur), Near Pateinet testing
(tes didekat pasien) dan Alternative site testing (tes alternatif) (Fajarna et al., 2022).
Pemeriksaan kadar glukosa darah jenis spesimen yang paling umum digunakan untuk
pemeriksaan kadar glukosa darah adalah kapiler. Penggunaan darah kapiler sebagai
bahan pemeriksaan untuk mendignosis intoleransi glukosa juga masih diperdebatkan
hingga saat ini. Karna adanya berbedaan nilai yang bervariasi dengan hasil kadar
glukosa darah vena. Meskipun demikian darah kapiler masih banyak digunakan para
klinisi sebagai bahan pemeriksaan penunjang kadar glukosa darah dengan tujuan untuk
hipoglikemi, normoglikemi, hiperglikemi dan memantau terapi (Rosares & Boy, 2022).
Pemeriksaan menggunakan glukometer digunakan hanya untuk pemeriksaan
awal. Penggunaan glukometer bisa dilakukan dengan mudah dan dilakukan dimana
saja karena relatif sederhana untuk digunakan sendiri, tetapi sebagian instansi lebih
menggunakan darah vena untuk melakukan pemeriksaan kadar glukosa darah.
Dikarenakan penambahan pemeriksaan yang diajukan untuk pasien, yang tidak hanya
dilakukan pemeriksaan menggunakan strip, jadi agar tidak dilakukan penusukan
berulang kali.
Rumah Sakit Umum Daerah (RSUD) Porsea merupakan salah satu rumah sakit
yang terletak di daerah toba, wilayah Sumatera Utara. RSUD porsea menyediakan
berbagai pelayanan kesehatan, salah satunya adalah pelayanan laboratorium.
Pemeriksaan glukosa darah adalah pemeriksaan wajib bagi semua pasien yang akan di
rawat inap di RSUD Porsea dan tercatat hampir seluruh pasien yangberobat ke RSUD
Porsea melakukan pemeriksaan glukosa. Pemeriksan glukosa darah di instalasi
laboratorium RSUD Porsea kerap dilakukan bersamaan dengan pemeriksaan
laboratorium lainnya. Untuk menghindari tindakan penusukan berulang serta
meminimalkan tingkat ketidaknyamanan atau kesakitan pada pasien, pemeriksaan
2
glukosa darah dilakukan menggunakan darah vena yang telah diambil untuk keperluan
pemeriksaan lainnya. Pengukuran kadar glukosa darah tersebut dilakukan dengan
menggunakan alat glukometer (Accu-Chek Performa). Pemeriksaan dengan alat
glukometer (Accu-Chek Performa) dianjurkan untuk menggunakan sampel darah
kapiler, karena siklus darah kapiler mengalir dari jantung langsung masuk ke pembuluh
kapiler, jika siklus darah vena darah dari jantung mengalir melewati satu pembuluh
kapiler lalu masuk ke pembuluh darah vena yang menyebabkan perbedaan konsentasi
glukosa darah antara vena dan kapiler, dimana darah kapiler mencerkinkan campuran
dari keduanya (Soraya et al., 2017). Berdasarkan teori tersebut peneliti tertarik untuk
mengetahui apakah ada perbedaan jika melakukan pemeriksaan glukosa darah puasa
pada sampel darah kapiler dan vena dengan alat glukometer (Accu-Chek Performa).
Berdasarkan penelitian yang dilakukan oleh Herawati (2017) menunjukkan hasil
penelitian didapatkan rata-rata glukosa darah kapiler tertinggi 154 mg/dl terendah 76
mg/dl dan rata-rata glukosa darah vena tertinggi 170 mg/dl terendah 86 mg/dl. Hasil
analisis uji wilcoxon P = 0,000≤0,05 sehingga Ho ditolak. Disimpulkan bahwa ada
perbedaan signifikan pada hasil perbedaan kadar glukosa darah sewaktu pada darah
kapiler dan vena.
Berdasarkan penelitian dilakukan oleh Tel, Ibrahim dan Susilawati, (2021)
menunjukkan hasil penelitian yang diperoleh bahwa dari 81 responden diperoleh ratarat kadar glukosa darah kapiler adalah 203,507 mg/dl, rata-rata kadar glukosa dalam
darah vena adalah 199,753 mg/dl dan dilakukan analisis dengan uji paired t-test
didapatkan nilai p = 0,005 (α = 0,05). Disimpulkan bahwa ada perbedaan yang
signifikan pada hasil glukosa darah dalam darah vena dengan darah kapiler.
Berdasarkan penelitian yang sama juga dilakukan oleh Simamora (2023)
menunjukkan hasil penelitian diperoleh bahwa dari 25 responden diperoleh nilai ratarata darah kapiler sebesar 192,76, dengan standar deviasi sebesar 56,302, dengan nilai
min 111 dan nilai max 288, dengan p nilai 0,007. Rerata selisih darah vena adalah
186,44, dengan standar deviasi 55,586, dengan nilai min 114 dan max 280, hasil
analisis uji paired t-test dengan nilai p = 0,007 dengan tingkat signifikansi p<𝛼 (0,05)
yaitu 0,007≤0,05. Disimpulkan bahwa terdapat perbedaan hasil kadar glukosa darah
3
menggunakan metode POCT (Point Of Care Test) menggunakan sampel darah vena
dan darah kapiler.
Berdasarkan pada pemaparan teori dan juga analisa dari beberapa penelitian
terdahulu menjadi dasar untuk penulis melanjutkan penelitian mengenai perbedaan
hasil kadar glukosa darah pada darah vena dan darah kapiler. Maka dari itu penulis
telah melakukan penelitian lebih lanjut tentang “Perbandingan Hasil Pemeriksaan
Glukosa Puasa Darah Kapiler Dengan Darah Vena Menggunakan Alat Glukometer di
Laboratorium Rumah Sakit Umum Daerah Porsea”.
1.2
Rumusan Masalah
Berdasarkan uraian latar belakang, maka rumusan masalah yang akan dibahas
dalam penelitian ini adalah : “Bagaimana perbandingan hasil pemeriksaan glukosa
darah puasa pada sampel darah kapiler dan vena dengan alat glukometer di Rumah
Sakit Umum Daerah Porsea?”.
1.3
Tujuan Penelitian
1.3.1 Tujuan Umum
Mengetahui perbedaan hasil pemeriksaan glukosa darah puasa menggunakan
sampel darah kapiler dan vena dengan alat glukometer di Rumah Sakit Umum Daerah
Porsea.
1.3.2 Tujuan Khusus
1. Mengukur glukosa darah puasa dengan alat glukometer menggunakan sampel
darah kapiler.
2. Mengukur glukosa darah puasa dengan alat glukometer menggunakan sampel
darah vena.
3. Menganalisis perbedaan kadar glukosa darah puasa pada sampel darah kapiler
dan darah vena.
1.4
Manfaat Penelitian
1.4.1 Bagi Institusi
Penelitian ini diharapkan sebagai bahan acuan pembelajaran dan bahan
tambahan referensi bacaan untuk menambah ilmu pengetahuan tentang perbandingan
4
pemeriksaan glukosa darah puasa menggunakan sampel darah kapiler dan vena dengan
alat glukometer.
1.4.2 Bagi Tenaga Kesehatan
Menyediakan informasi tambahan bagi tenaga laboratorium guna memastikan
bahwa pemeriksaan kadar gula darah puasa sudah dilakukan sesuai dengan prosedur
dan memenuhi syarat dalam melakukan pemeriksaan dan penggunaan alat.
1.4.3 Bagi Peneliti
1. Menambah informasi, wawasan, pengetahuan dan pengalaman tentang
pemeriksaan kadar glukosa darah puasa.
2. Hasil dari penelitian dapat dijadikan sebagai sumber referensi bagi peneliti
selanjutnya.
5
BAB II
TINJAUAN PUSTAKA
2.1
Glukosa Darah
Glukosa darah adalah kadar glukosa yang terdapat dalam sirkulasi darah, yang
merupakan sumber utama energi bagi sel-sel tubuh. Glukosa dihasilkan dari makanan
yang kita konsumsi, terutama karbohidrat, dan diatur oleh hormon insulin yang
diproduksi oleh pankreas. Glukosa dalam tubuh berasal dari hasil pemecahan
karbohidrat (monosakarida, disakarida, oligosakarida, dan polisakarida), Glukosa
dalam tubuh dihasilkan hati melalui proses hidrolisis makanan, kemudian
didistribusikan ke seluruh tubuh melalui aliran darah. Sekitar 50-70% dari total
kebutuhan energi dipenuhi oleh glukosa yang beredar dalam darah. Glukosa ini
kemudian masuk ke dalam sel untuk digunakan sebagai sumber energi, terutama bagi
otak dan eritrosit. Jika terdapat kelebihan glukosa, tubuh akan menyimpannya dalam
bentuk glikogen di hati dan otot, dalam proses ini, Insulin berfungsi untuk membantu
glukosa masuk ke dalam sel-sel tubuh, sehingga dapat digunakan sebagai energi atau
disimpan sebagai cadangan energi (Oktaviana et al., 2023).
Glukosa merupakan salah satu nutrisi yang dalam keadaan normal sangat
dibutuhkan untuk energi, otak, retina, dan epitel germinal gonad (Handayani et al.,
2025). Kadar glukosa harus dijaga dalam konsentrasi yang cukup untuk menyediakan
nutrisi bagi organ-organ tubuh tersebut. Namun sebaliknya, konsentrasi glukosa darah
yang terlalu tinggi dapat memberikan dampak negatif seperti dieresis osmotic dan
dehidrasi pada sel (Bagshaw & Bellomo, 2020). Oleh sebab itu pemantauan dan
pengelolaan kadar glukosa darah yang tepat sangat diperlukan.
Kadar glukosa darah sangat diatur secara ketat oleh tubuh. Kadar gula didalam
darah yang dialirkan di dalam tubuh akan menjadi menjadi sumber energi utama untuk
sel-sel tubuh. Pada umumnya, kadar normal pada glukosa darah berada pada rentang
(70-110 mg/dl). Kadar glukosa ini meningkat setelah makan dan biasanya berada kadar
terendah di pagi hari sebelum makan. Bila kadar glukosa terlalu rendah (<70 mg/dl)
6
disebut hipoglikemia. Bila kadar gula darah berada pada kadar tinggi (>110 mg/dl)
disebut hiperglikemia (Simamora, 2023).
Kadar glukosa darah dipengaruhi oleh faktor endogen dan eksogen. Faktor
endogen disebut juga humoral faktor diantaranya hormon insulin, glukogen, koristol,
sistem reseptor pada otot dan sel hati. Faktor eksogen antara lain jenis dan jumlah
makanan yang dikonsumsi serta aktivitas fisik yang dilakukan dan penundaan
pemeriksaan dapat menurunkan kadar glukosa darah karena adanya aktifitas sel
(Alydrus & Fauzan, 2022).
2.2
Jenis Pemeriksaan Glukosa Darah
2.2.1 Glukosa Darah Puasa (GDP)
Pengukuran glukosa darah puasa merupakan salah satu indikator utama dalam
menilai kesehatan metabolik, khususnya dalam mendeteksi dan memantau diabetes
melitus, karena pada kenyataannya 70% pasien yang berpuasa mempunyai kadar
glukosa darah normal. Sehingga jika, kadar glukosa darah puasa pasien tetap tinggi, tes
ini cukup menunjang diagnosa. Nilai normal dari glukosa darah puasa adalah 60-110
mg/dl. Pemeriksaan ini dilakukan setelah seseorang menjalani puasa selama 8-12 jam
tanpa mengonsumsi makanan atau minuman selain air putih. Pemeriksaan glukosa
darah puasa umumnya dilakukan karena dapat memberikan gambaran tentang
bagaimana tubuh mengatur kadar glukosa tanpa adanya pengaruh dari makanan yang
baru dikonsumsi (Abdimas, 2023).
2.2.2 Glukosa Darah 2 Jam Post Prandial
Glukosa darah post prandial adalah kadar glukosa darah setelah makan, yang
biasanya mencapai puncak dalam satu jam setelah makan. setelah puncak tersebut,
kadar glukosa darah secara bertahap akan menurun dan mendekati kadar glukosa darah
puasa dalam waktu dua jam. Pemeriksaan ini bertujuan untuk mengetahui kemampuan
seseorang terhadap beban glukosa yang terdapat dalam tubuhnya. Pemeriksaan glukosa
darah 2 Jam Post Prandial (2 Jam PP) dilakukan setelah dua jam makan yang
sebelumnya puasa selama 8-10 jam. Nilai normal glukosa darah 2 jam post prandial
adalah 100-140 mg/dl. Saat seseorang makan, kadar glukosa dalam darah akan
7
meningkat, kemudian tubuh akan merespons dengan melepaskan insulin untuk
membantu sel-sel menyerap glukosa sebagai sumber energi. Pada individu dengan
fungsi insulin yang normal, kadar gula darah akan kembali turun ke tingkat normal
dalam waktu dua jam. Namun, pada penderita diabetes atau individu dengan gangguan
toleransi glukosa, kadar gula darah tetap tinggi setelah dua jam. Pemeriksaan ini
biasanya dilakukan dengan pengambilan sampel darah sebelum makan sebagai nilai
awal, kemudian diikuti dengan pengambilan darah dua jam setelah makan (Almaliah
& Sudrajat, 2024).
2.2.3 Glukosa Darah Sewaktu (GDS)
Salah satu metode pemeriksaan kadar glukosa dalam darah adalah glukosa
darah sewaktu (GDS). Glukosa darah sewaktu merupakan pengukuran kadar glukosa
dalam darah yang dilakukan kapan saja tanpa memperhitungkan waktu terakhir pasien
mengonsumsi makanan, sehingga hasilnya dapat bervariasi tergantung pada asupan
makanan sebelumnya (Sari et al., 2024). Nilai normal dari glukosa darah sewaktu
adalah 70-125 mg/dl. Tujuan dari pada pemeriksaan glukosa darah sewaktu adalah
untuk menilai kemampuan tubuh dalam memanfaatkan glukosa sebagai sumber energi.
Pemeriksaan ini sering digunakan di laboratorium sebagai metode skrining untuk
mendeteksi diabetes melitus. Pemeriksaan glukosa darah sewaktu, biasanya mendapati
hasil yang lebih tinggi, karena pemeriksaan dilakukan pada saat itu juga (Abdimas,
2023).
2.2.4 Glukosa Darah Toleransi (TTGO)
Tes Toleransi Glukosa Oral (TTGO) adalah pemeriksaan yang digunakan untuk
menilai bagaimana tubuh mengolah glukosa. Tes ini sering digunakan untuk
mendeteksi diabetes melitus dan diabetes gestasional pada ibu hamil. Glukosa darah
toleransi yaitu tes pemeriksaan yang bertujuan dalam penentuan diagnosa apabila
masih terdapat keraguan. Nilai normal glukosa darah toleransi adalah >140 mg/dl.
Pemeriksaan glukosa darah toleransi dilakukan dengan cara mengukur kadar glukosa
darah sebelum dan setelah mengonsumsi larutan glukosa. Pasien diminta untuk
berpuasa selama 8–12 jam sebelum pemeriksaan. Setelah pengambilan sampel darah
8
awal untuk mengukur kadar glukosa puasa, pasien akan diberikan larutan glukosa yang
umumnya mengandung 75 gr glukosa. Kemudian, sampel darah diambil kembali dalam
rentang waktu tertentu, biasanya setelah 1 dan 2 jam, untuk melihat bagaimana tubuh
merespons glukosa yang dikonsumsi. Selain metode tersebut, beberapa metode yang
dapat digunakan untuk penetapan kadar glukosa adalah metode Asatoor dan King,
metode Follin-wu, metode Nelson Smogyi, Ferisianida spektrofotometrik, metode
glukkosa oksidase, metode titriometri, metode Hagedon dan Jansen, dan metode otoluidine (Mahdalina et al., 2024).
2.3
Metode Pemeriksaan Glukosa Darah
2.3.1 Glukometer (POCT)
Glukometer yang menggunakan prinsip Point of Care Testing (POCT) atau
biasa dikenal juga Beside Test adalah sebagai pemeriksaan laboratorium yang
dilakukan pada pasien rawat inap maupun rawat jalan, sehingga memungkinkan hasil
diperoleh dengan cepat dan efisien. Salah satu penerapan POCT yang umum adalah
pemeriksaan kadar glukosa darah menggunakan alat glukometer. Pemeriksaan kadar
glukosa darah yang menggunakan POCT terdiri atas alat meter glukosa darah, strip dan
lanset. Glukometer digunakan untuk mengukur kadar glukosa darah berdasarkan
deteksi elektrokimia dengan dilapisi enzim glukosa oxidase pada strip membran
(Fajarna et al., 2022).
Dalam pemeriksaan glukosa darah berbasis POCT, dikenal dua metode
enzimatik utama yang digunakan oleh perangkat glukometer, yaitu metode glukosa
oksidase (GOD) dan glukosa dehidrogenase (GDH). Glukometer terdiri atas sensor
glukosa yang menggunakan elektroda platinum dan perak untuk membentuk bagian
dari sirkuit listrik dengan elektrolisis dari hidrogen peroksida. Hidrogen peroksida
diproduksi sebagai hasil dari oksidasi glukosa pada membran oksida glukosa. Arus
yang melalui rangkaian menyediakan hasil pengukuran konsentrasi hidrogen
peeroksida, sehingga konsentrasi glukosa dapat diketahui. Ketika sampel darah
diteteskan ke strip, glukosa dalam darah akan bereaksi dengan enzim tersebut,
menghasilkan elektron yang diteruskan ke elektroda dalam alat, menciptakan arus
9
listrik yang kemudian diukur dan dikonversi menjadi kadar glukosa darah dalam satuan
mg/dL atau mmol/L (Dewia et al., 2023).
Penggunaan Glukometer memberikan sejumlah keuntungan dalam perawatan
pasien. Pertama, alat ini mempercepat proses pengambilan keputusan dalam perawatan
karena memungkinkan pemeriksaan dilakukan secara langsung oleh pasien atau tenaga
medis tanpa harus menunggu hasil laboratorium. Keuntungan lainnya adalah hasil tes
yang cepat, yang sangat berguna bagi dokter untuk menganalisis kondisi pasien dan
menentukan langkah perawatan selanjutnya secara tepat waktu. Selain itu, Glukometer
hanya memerlukan sedikit sampel darah, hanya 0,8 μl sampel yang dibutuhkan untuk
mendapatkan hasil yang akurat dalam 5 detik, yang membuat pemeriksaannya lebih
praktis dan minim ketidaknyamanan bagi pasien. Sistem pembacaan alat ini memiliki
keakuratan dengan membaca kadar glukosa dalam darah berkisar 10-600 mg/dl 33,3
mmol/L (Laisouw et al., 2017).
Meskipun glukometer memiliki berbagai keunggulan, penggunaannya juga
memiliki keterbatasan. Keterbatasan dari pengguanaan alat glukometer penggunaan
sampel darah dalam jumlah yang sangat kecil, yang dapat menyulitkan dalam menilai
kualitas sampel tersebut. Misalnya, dalam proses pengambilan darah, tekanan atau
pemijatan yang terlalu kuat dapat menyebabkan sampel darah bercampur dengan cairan
serosa, yang pada akhirnya dapat mempengaruhi keakuratan hasil pemeriksaan (Erbach
et al., 2016).
2.3.2 GOD-PAP
Metode GOD-PAP (Glucose Oxidase-Peroxidase Aminoantypirin) adalah salah
satu teknik enzimatik yang digunakan untuk mengukur kadar glukosa dalam darah
dengan tingkat ketelitian yang tinggi. Metode ini banyak digunakan di laboratorium
klinis karena mampu memberikan hasil yang akurat dan dapat diandalkan dalam
diagnosis serta pemantauan diabetes. Prinsip utama metode ini adalah reaksi oksidasi
glukosa oleh enzim glukosa oksidase (GOD), yang mengubah glukosa dalam sampel
darah menjadi asam glukonat dan hidrogen peroksida. Hidrogen peroksida yang
terbentuk kemudian bereaksi dengan 4-Aminoantipyrine dan fenol dalam suatu reaksi
yang dikatalis oleh enzim peroksidase (POD), menghasilkan senyawa berwarna
10
quinonemine dan air. Intensitas warna yang terbentuk sebanding dengan kadar glukosa
dalam sampel dan dapat diukur menggunakan fotometer pada panjang gelombang 500
nm. Senyawa berwarna ini kemudian diukur menggunakan alat spektrofotometer pada
panjang gelombang sekitar 505 nm. Intensitas warna yang terbentuk sebanding
langsung dengan konsentrasi glukosa dalam sampel, sehingga dari absorbansi yang
terbaca, kadar glukosa dapat dihitung (Fernando et al., 2024).
Metode GOD-PAP memiliki keunggulan berupa spesifisitas tinggi terhadap
glukosa, stabilitas reagen yang baik, serta dapat diaplikasikan pada berbagai jenis
spesimen seperti serum, plasma, maupun darah utuh. Selain itu, metode ini sangat
sesuai digunakan dalam sistem analisis otomatis di laboratorium, sehingga mendukung
efisiensi kerja dan konsistensi hasil. Namun demikian, metode ini juga memiliki
beberapa keterbatasan, seperti potensi interferensi dari zat-zat dalam darah seperti asam
urat, asam askorbat, dan bilirubin, yang dapat memengaruhi akurasi pengukuran.
Selain itu, karena reaksi awal metode ini memerlukan oksigen sebagai akseptor
elektron, maka penggunaannya dapat kurang optimal dalam kondisi hipoksia. Metode
GOD-PAP juga tidak didesain untuk keperluan point-of-care testing (POCT) karena
memerlukan peralatan laboratorium seperti fotometer serta waktu inkubasi tertentu
(Moghadam et al., 2021).
Meskipun terdapat berbagai alternatif metode pemeriksaan glukosa yang terus
berkembang, metode GOD-PAP masih dianggap sebagai metode standar dan andal
untuk pemeriksaan glukosa darah secara laboratorium, terutama dalam pengukuran
kadar glukosa puasa maupun postprandial (Tawiah et al., 2022).
2.3.3 Glukosa Heksokinase
Metode Hexokinase adalah salah satu metode enzimatik yang digunakan untuk
mengukur kadar glukosa dalam darah, yang sering dianggap sebagai standar acuan
dalam pengujian glukosa karena tingkat spesifisitas dan akurasi yang sangat tinggi.
Prinsip dasar dari metode ini melibatkan reaksi fosforilasi glukosa oleh enzim
hexokinase, yang memerlukan ATP sebagai donor fosfat. Dalam tahap pertama,
glukosa diubah menjadi glukosa-6-fosfat (G6P), yang kemudian akan diubah lebih
lanjut oleh enzim glukosa-6-fosfat dehidrogenase (G6PD) dalam keberadaan NADP⁺,
11
menghasilkan NADPH. NADPH yang terbentuk sebanding dengan jumlah glukosa
dalam sampel dan dapat diukur secara fotometrik pada panjang gelombang 340 nm.
Reaksi ini memberikan hasil yang sangat akurat karena melibatkan tahap pengukuran
NADPH, yang hanya diproduksi dalam reaksi pengolahan glukosa (Baharudin et al.,
2018).
Untuk melakukan pemeriksaan dengan metode ini, diperlukan beberapa alat dan
bahan, seperti spektrofotometer, micropipet (10 μl dan 1000 μl), tabung reaksi, rak
tabung, tip kuning dan biru, inkubator atau waterbath, sentrifuge, timer, kapas alkohol,
tisu, serta spuit 3 ml. Selain itu, reagen yang digunakan meliputi enzim heksokinase,
ATP, NADP+ atau NAD+, serta buffer yang sesuai untuk menjaga kestabilan reaksi.
Proses analisis dimulai dengan mencampurkan sampel darah atau serum dengan
reagen, kemudian diinkubasi pada suhu 37°C agar reaksi berjalan optimal. Setelah
inkubasi, absorbansi diukur menggunakan spektrofotometer pada panjang gelombang
340 nm, di mana peningkatan absorbansi sebanding dengan kadar glukosa dalam
sampel. Metode ini sering digunakan dalam laboratorium klinis karena memberikan
hasil yang sangat spesifik dan akurat dalam mengukur konsentrasi glukosa darah
(Puspita et al., 2023).
Keunggulan utama dari metode hexokinase adalah spesifisitas tinggi terhadap
glukosa, yang menjadikannya sangat sedikit terpengaruh oleh interferensi dari zat-zat
lain yang mungkin ada dalam sampel, seperti bilirubin, hemoglobin, atau asam
askorbat. Hal ini membuat metode ini sangat akurasi dan presisi, menjadikannya
pilihan utama dalam pengujian kadar glukosa darah di laboratorium rujukan. Metode
ini sering digunakan sebagai metode rujukan oleh lembaga-lembaga kesehatan
internasional seperti IFCC (International Federation of Clinical Chemistry) dan CDC
(Centers for Disease Control and Prevention) (Petersmann et al., 2020).
Namun demikian, meskipun sangat akurat, metode hexokinase memiliki
beberapa keterbatasan. Salah satu kendala utama adalah kebutuhan terhadap reagen
enzimatik yang sensitif dan relatif mahal, serta peralatan khusus seperti
spektrofotometer UV yang dapat mengukur pada panjang gelombang 340 nm. Oleh
karena itu, metode ini lebih cocok digunakan di laboratorium pusat dengan fasilitas
12
lengkap, bukan untuk pengujian di point-of-care testing (POCT), yang memerlukan
alat yang lebih portabel dan cepat. Meskipun ada berbagai alternatif metode
pengukuran glukosa, metode hexokinase tetap menjadi pilihan utama dalam banyak
laboratorium karena memberikan hasil yang sangat konsisten dan akurat dalam
menentukan kadar glukosa darah, baik untuk pemeriksaan rutin maupun untuk
keperluan uji validasi metode pengukuran lainnya (Badugu et al., 2021).
2.3.4 Glukosa Dehidrogenase (GDH)
Metode Glukosa Dehidrogenase adalah salah satu teknik enzimatik yang
digunakan untuk mengukur kadar glukosa dalam darah dengan prinsip reaksi
oksidoreduksi. Metode ini memanfaatkan enzim glukosa dehidrogenase (GDH), yang
mengkatalisis oksidasi glukosa menjadi asam glukonat dengan menggunakan kofaktor
seperti NAD⁺ (Nicotinamide Adenine Dinucleotide) atau PQQ (Pyrroloquinoline
Quinone), tergantung pada jenis enzim yang digunakan. Dalam reaksi ini, glukosa
mengalami dehidrogenasi, menghasilkan asam glukonat dan bentuk tereduksi dari
kofaktor, yaitu NADH atau PQQH₂. Produk reaksi ini kemudian diukur menggunakan
fotometer atau spektrofotometer, karena perubahan konsentrasi NADH atau PQQH₂
menghasilkan peningkatan absorbansi cahaya pada panjang gelombang tertentu,
biasanya sekitar 340 nm untuk NADH.Untuk melakukan pemeriksaan dengan metode
Glukosa Dehidrogenase, diperlukan berbagai alat dan bahan, antara lain fotometer atau
spektrofotometer, micropipet (10 μl dan 1000 μl), tabung reaksi, rak tabung, tip kuning
dan biru, sentrifuge, waterbath atau inkubator, timer, kapas alkohol, tisu, dan spuit 3
ml. Reagenyang digunakan meliputi enzim glukosa dehidrogenase, kofaktor NAD⁺
atau PQQ, serta buffer reaksi untuk menjaga stabilitas pH selama proses analisis.
Prosedur pemeriksaan dimulai dengan mencampurkan sampel darah dengan reagen
yang mengandung enzim dan kofaktor, kemudian campuran tersebut diinkubasi pada
suhu optimal selama beberapa menit. Setelah itu, absorbansi diukur dengan fotometer
atau spektrofotometer untuk menentukan kadar glukosa berdasarkan peningkatan
konsentrasi produk reaksi. Metode ini dikenal karena keakuratannya dan ketahanannya
13
terhadap gangguan dari zat lain dalam darah, sehingga sering digunakan dalam
pemeriksaan laboratorium maupun alat glukometer portabel (Baharudin et al., 2018).
Keunggulan utama dari metode GDH adalah kemampuannya untuk digunakan
dalam perangkat portabel, memberikan hasil dalam hitungan detik, serta hanya
memerlukan volume sampel yang sangat kecil. Selain itu, metode GDH memiliki
sensitivitas yang tinggi dan dapat bekerja baik dalam kondisi rendah oksigen, sehingga
cocok digunakan di berbagai lingkungan, termasuk di tempat tidur pasien atau fasilitas
kesehatan dengan sumber daya terbatas. Namun, metode GDH juga memiliki
keterbatasan, terutama dalam hal spesifisitas substrat. Beberapa varian enzim GDH,
seperti GDH-PQQ, tidak hanya bereaksi terhadap glukosa tetapi juga terhadap gula lain
seperti maltosa, galaktosa, dan xilosa, yang dapat menyebabkan hasil positif palsu. Hal
ini menjadi perhatian terutama pada pasien yang menerima terapi parenteral
mengandung gula-gula tersebut (Hassan et al., 2021).
2.4
Lokasi Pengambilan Sampel Untuk Glukosa Darah
Pembuluh darah merupakan saluran tertutup yang membawa darah dari jantung
ke jaringan dan kembali ke jantung. Fungsi utama pembuluh darah adalah mengalirkan
darah dari jantung ke seluruh tubuh, menghantarkan oksigen dan nutrisi ke semua sel,
serta mengangkut zat buangan seperti karbon dioksida (Guyton & Hall, 2021).
2.4.1 Pembuluh Darah Kapiler
Pembuluh darah kapiler adalah pembuluh darah terkecil yang menghubungkan
arteriol (pembuluh darah kecil dari arteri) dengan venula (pembuluh darah kecil dari
vena). Darah di dalam kapiler adalah campuran dari darah vena dan darah arteri.
Kapiler memiliki dinding yang sangat tipis, hanya terdiri dari satu lapisan sel endotel,
yang memungkinkan pertukaran gas, nutrisi, dan limbah metabolik antara darah dan
jaringan tubuh (Guyton & Hall, 2021). Distribusi kapiler dalam jaringan tubuh
bervariasi dengan aktivitas metabolik dari setiap jaringan. Kapiler terutama melimpah
di jaringan aktif, seperti jaringan otot dan saraf, di mana hampir setiap sel dekat dengan
kapiler. Kapiler kurang melimpah di jaringan ikat, dan mereka tidak hadir di beberapa
jaringan, seperti tulang rawan, epidermis, dan lensa dan kornea mata (Saadah, 2018).
14
Lokasi pengambilan darah kapiler pada orang dewasa biasanya diambil dari
ujung jari atau daun telinga. Sedangkan itu, pengambilan darah kapiler pada bayi dan
anak-anak, lokasi yang dapat digunakan meliputi tumit dan ibu jari kaki. Lokasi
pengambilan harus menghindari area yang menunjukkan gangguan sirkulasi darah,
seperti sianosis atau kondisi pucat (Natasya, 2022).
Pengambilan darah kapiler harus dilakukan dengan baik agar tidak
menyebabkan kesalahan yang dapat mempengaruhi kualitas darah kapiler. Berikut
prosedur pengambilan darah kapiler :
a.
Alat dan bahan yang akan digunakan pasatikan alat tersebut steril.
b.
Membersihkan tempat itu memakai alkohot 70% dan biarkan sampai kering
lagi.
c.
Memegang bagian yang akan ditusuk supaya tidak bergerak dan tekan sedikit
supaya rasa nyeri berkurang.
d.
Menusuk dengan cepat memakai lanset steril.
e.
Menusuk jari ke tiga atau ke empat dengan arah tegak lurus,pada garis garis
sidik kulit, jangan sejajar dengan garis-garis sidik tersebut.
f.
Menusuk bagian pinggir daun telinga, jangan sisinya. Tusukan harus cukup
dalam agar darah mudah keluar. Jangan sampai menekan-nekan jari atau telinga
itu untuk mendapat cukup darah. Darah yang diperas ke luar semacam itu telah
bercampur dengan cairan jaringan sehingga menjadi encer dan menyebabkan
kesalahan.
g.
Membuang tetesan darah yang pertama keluar dengan memakai kapas kering.
Tetesan
darah
yang
berikutnya
boleh
dipakai
untuk
pemeriksaan
(Gandosoebrata, 2013).
Adapun beberapa faktor-faktor kesalahan secara teknis pengambilan darah
kapiler yang dapat mempengaruhi hasil pemeriksaan yaitu tusukan yang kurang dalam
sehingga dapat mengakibatkan darah harus diperas-peras keluar, tetes darah pertama
digunakan untuk pemeriksaan, terjadi bekuan pada tetes darah karena terlalu lambat
bekerja, pengambilan darah dari tempat yang ada gangguan peredaran seperti
vasokonstriksi (pucat), vasodilatasi (radang, trauma), kongesti atau cyanosis setempat,
15
serta penusukan kulit yang masih basah dengan alkohol sehingga mengakibatkan darah
melebar di atas kulit dan sukar untuk dihisap ke dalam pipet (Irawan & Helviola, 2022).
2.4.2 Pembuluh Darah Vena
Pembuluh darah vena adalah pembuluh darah yang membawa darah menuju
jantung. Pembuluh vena terbentuk dari penyatuan kapiler. Sebagian besar vena
membawa darah yang tidak mengandung oksigen dari jaringan tubuh kembali ke
jantung, kecuali vena pulmonalis dan vena umbilikalis yang membawa darah
beroksigen. Pembuluh darah vena adalah pembuluh yang bersifat lentur dan berfungsi
terutama sebagai tempat penyimpanan darah serta mengembalikan darah ke jantung
dengan tekanan rendah. Vena adalah pembuluh darah berdinding tipis yang memiliki
lumen lebih besar dibandingkan arteri serta jaringan otot dan elastis yang lebih sedikit.
Vena juga memiliki katup untuk mencegah aliran balik darah dan memastikan aliran
darah satu arah menuju jantung. Karena hampir 60% dari volume darah berada dalam
pembuluh darah, vena dapat dianggap sebagai area penyimpanan darah yang dapat
dibawa ke bagian lain dari tubuh pada saat dibutuhkan. Sinusoid vena di hati dan limpa
sangat penting. Jika darah hilang oleh perdarahan, baik volume darah maupun tekanan
darah mengalami penurunan. Sebagai tanggapan hal tersebut, system saraf simpatik
mengirimkan impuls untuk mengerut dinding otot pembuluh darah, yang mengurangi
volume vena dan mengkompensasi kehilangan darah (Saadah, 2018).
Lokasi pengambilan darah vena biasanya pada orang dewasa dipakai salah satu
vena dalam fossa cubiti, pada bayi vena jugularis superficialis dapat dipakai atau juga
darah dari sinus sagittalis superior (Gandosoebrata, 2013).
Pengambilan darah vena harus dilakukan dengan baik agar tidak menyebabkan
kesalahan yang dapat mempengaruhi kualitas darah kapiler. Berikut prosedur
pengambilan darah kapiler :
a.
Menyediakan alat dan bahan yang akan diperlukan, dipastikan alat dan bahan
yang dipakai tetap dalam keadaan steril.
b.
Membersihkan tempat itu dengan alkohol 70% dan biarkan sampai menjadi
kering lagi.
16
c.
Memilih vena dalam fossa cubiti, pasang ikatan pembendung pada lengan atas
dan pasien diminta mengepalkan dan membuka tangannya berkali-kali agar
vena terlihat jelas. Pembendungan vena tidak perlu dengan ikatan erat-erat,
bahkan sebaiknya hanya cukup erat untuk memperlihatkan dan agak
menonjolkan vena.
d.
Menusuk kulit dengan jarum spuid dalam tangan kanan sampai ujung jarum
masuk ke dalam lumen vena.
e.
Melepaskan atau renggangkan pembendungan dan pelahan-lahan, tarik
pengisap spuid sampai jumlah darah yang dikehendaki didapat.
f.
Melepaskan pembendungan jika masih terpasang.
g.
Meletakkan kapas di atas jarum dan cabut spuid.
h.
Menekan bekas tusukan selama beberapa menit.
i.
Masukkan darah ke tabung melalui dinding tabung (Gandosoebrata, 2013).
Beberapa kesalahan yang mempengaruhi kualitas darah vena adalah
menggunakan spuid yang basah, mengenakan ikatan pembendung terlalu lama atau
terlalu keras mengakibatkan hemokonsentrasi, terjadinya bekuan dalam spuid karena
lambatnya bekerja, terjadinya hemolisis, yaitu terjadinya ketidaksesuaian cara
pengambilan darah, tidak tercampurnya darah dengan antikoagulan (Sandy, 2019).
2.5
Penyakit Gangguan Pada Glukosa Darah
2.5.1 Hipoglikemia
Hipoglikemia adalah suatu kondisi medis yang ditandai dengan kadar glukosa
darah yang sangat rendah, yang umumnya terjadi pada individu yang menderita
diabetes mellitus. Kadar glukosa darah yang dianggap sangat rendah adalah di bawah
2,2 mmol/l. Kondisi ini dapat muncul akibat tidak seimbangan antara asupan makanan,
aktivitas fisik, dan penggunaan obat-obatan yang dapat mempengaruhi kadar glukosa
dalam darah. Penderita diabetes yang mengonsumsi obat-obatan tertentu, seperti
insulin, tanpa memperhatikan pola makan dan aktivitas fisik mereka, berisiko tinggi
mengalami hipoglikemi (Ubaidillah et al., 2021).
Gejala klinis dari hipoglikemia sangat bervariasi, tetapi beberapa gejala yang
umum terjadi meliputi pusing, kelemahan, gemetar, pandangan yang berkunang-
17
kunang, dan keringat dingin, Gejala-gejala ini muncul sebagai respons tubuh terhadap
penurunan kadar glukosa yang diperlukan oleh otak dan organ vital lainnya untuk
berfungsi dengan baik. Jika kadar glukosa darah turun lebih jauh, misalnya hingga 1,7
mmol/l, gejala dapat menjadi lebih parah dan berpotensi mengancam jiwa, termasuk
kehilangan kesadaran. Penting untuk dicatat bahwa otak manusia sangat bergantung
pada glukosa sebagai sumber energi utama (Brito et al., 2023).
Ketika kadar glukosa darah rendah, otak tidak dapat berfungsi secara optimal,
yang dapat menyebabkan kebingungan, kesulitan berkonsentrasi, hingga, koma.,
pengelolaan hipoglikemia sangat penting bagi penderita diabetes. disarankan untuk
mengenali tanda-tanda awal hipoglikemia dan segera mengambil tindakan, seperti
mengonsumsi
makanan
atau
minuman
yang
mengandung
glukosa,
untuk
mengembalikan kadar glukosa darah ke tingkat yang aman. Kondisi hipoglikemia ini
juga dapat dipicu oleh beberapa faktor, termasuk pengambilan makanan yang tidak
teratur, aktivitas fisik yang berlebihan, atau penggunaan obat-obatan yang tidak sesuai
(Chatwin et al., 2021).
2.5.2 Hiperglikemia
Hiperglikemia
merupakan
suatu
kondisi
medis
yang
ditandai
oleh
meningkatnya kadar glukosa dalam darah secara signifikan dan dapat terjadi secara
mendadak. Keadaan ini umumnya dipicu oleh berbagai faktor, seperti stres fisiologis,
infeksi, serta penggunaan obat-obatan tertentu. Pada diabetes mellitus, hiperglikemia
terjadi akibat ketidakmampuan tubuh dalam memproduksi insulin dalam jumlah yang
memadai atau karena resistensi insulin, yaitu ketika sel-sel tubuh tidak mampu
merespons insulin secara efektif. Akibatnya, glukosa tidak dapat masuk ke dalam sel
untuk digunakan sebagai sumber energi dan menumpuk di dalam aliran darahTanda
klinis hiperglikemia yang paling umum meliputi poliuria (frekuensi buang air kecil
yang meningkat), polidipsia (rasa haus yang berlebihan), polifagia (peningkatan nafsu
makan), serta mudah lelah. Apabila tidak ditangani dengan baik dan berlangsung dalam
jangka waktu lama, dapat menimbulkan komplikasi seperti infeksi jamur pada area
genital, gastroparesis (gangguan pengosongan lambung), serta gangguan fungsi
18
seksual seperti disfungsi ereksi serta komplikasi lainnya retinopatidiabetic (katarak
yang diakibatkan oleh diabetes) (Konda, 2021).
Apabila kadar glukosa darah melebihi ambang batas ginjal, yaitu sekitar 160–
180 mg/dL, maka akan terjadi glukosuria, yaitu kondisi di mana glukosa terdeteksi
dalam urine karena tidak seluruhnya dapat direabsorpsi oleh tubulus ginjal.
Hiperglikemia kronis yang tidak terkontrol secara optimal berisiko menyebabkan
komplikasi jangka panjang, seperti arteriosklerosis (penyempitan arteri), penebalan
membran basal kapiler, serta gangguan pada sistem saraf perifer.sehingga dapat
menyebabkan nefropathydiabetic, Oleh karena itu, pemantauan kadar glukosa darah
secara berkala dan penerapan pengelolaan yang tepat sangat diperlukan pada individu
dengan diabetes melitus (Wu et al., 2023).
2.6
Kerangka Teori
Adapun kerangka teori dalam penelitian ini adalah sebagai berikut :
Glukosa Darah
Darah Kapiler
Darah Vena
Hasil pemeriksaan
glukosa puasa darah
kapiler
Hasil pemeriksaan
glukosa puasa darah
Vena
Perbandingan Hasil
Pemeriksaan Glukosa
darah puasa melalui
Kapiler dan Vena
Skema 2.6.1 Kerangka Teori
19
2.7
Kerangka Konsep Penelitian
Adapun kerangka konsep dalam penelitian ini adalah sebagai berikut :
Variebel Independen
Variabel Dependen
Darah Kapiler
Kadar Glukosa Darah
Puasa
Darah Vena
Skema 2.7.1 Kerangka Konsep
2.8
Hipotesis
Berdasarkan kerangka teori dan kerangka konsep yang telah dibuat
sebelumnya, maka dirumuskan hipotesis-hipotesis penelitian ini sebagai berikut :
1. Hipotesis nol (H0) : Tidak ada perbedaan signifikan antara hasil pemeriksaan
glukosa darah kapiler dan vena menggunakan alat glukometer.
2. Hipotesis alternatif (H1) : Terdapat perbedaan signifikan antara hasil
pemeriksaan glukosa darah kapiler dan vena menggunakan alat glukometer.
20
BAB III
METODE PENELITIAN
3.1
Jenis dan Rancangan Penelitian
Jenis Penelitian yang dilakukan adalah penelitian kuantitatif dengan pendekatan
cross-sectional yaitu dengan membandingkan hasil pemeriksaan kadar glukosa darah
puasa pada darah kapiler dan darah vena dengan alat glukometer.
3.2
Lokasi dan Waktu Penelitian
3.2.1 Lokasi Penelitian
Penelitian ini dilakukan di instalasi laboratorium patologi klinik Rumah Sakit
Umum Daerah Porsea.
3.2.2 Waktu Penelitian
Penelitian ini dilaksanakan pada bulan April 2025.
3.3
Populasi dan Sampel Penelitian
3.3.1 Populasi Penelitian
Populasi adalah sekelompok objek atau subjek yang memiliki kualitas dan
karakteristik tertentu diterapkan dalam penelitian untuk dianalisis guna mendapatkan
Kesimpulan yang relevan (Iba & Wardhana, 2021). Populasi yang digunakan dalam
penelitian ini adalah seluruh pasien yang melakukan pemeriksaan glukosa puasa di
Rumah Sakit Umum Daerah Porsea.
3.3.2 Sampel Penelitian
Sampel adalah bagian dari populasi yang diambil dengan menggunakan caracara tertentu, sehingga dapat mewakili populasi tersebut (Suriani et al., 2023). Sampel
yang digunakan dalam penelitian ini adalah pasien di Rumah Sakit Umum Daerah
Porsea yang melakukan pemeriksaan glukosa puasa selama periode bulan April 2025.
Rumus Slovin adalah metode yang digunakan untuk menentukan ukuran sampel
dari suatu populasi yang diketahui jumlahnya, dengan mempertimbangkan tingkat
kesalahan (margin of error) yang dapat ditoleransi. (Pakendek & Rantetampang, 2018).
21
Rumus Slovin untuk menentukan sampel adalah sebagai berikut :
𝑛 =
𝑁
(1 + (𝑁 ∙ 𝑒 2 ))
𝑛 =
30
(1 + 30 ∙ (0,05)2
=
30
1,075
= 27,9
Dengan perkiraan populasi sebanyak 30 orang dan margin error 5%, maka didapatkan
jumlah sampel sebanyak 28 sampel.
Keterangan :
𝑛 = ukuran sampel/jumlah responden
𝑁 = ukuran populasi
𝑒 = persentase kelonggaran ketelitian kesalahan pengambilan sampel yang masih
bisa ditolerir.
3.3.3 Teknik Pengambilan Sampel
Teknik pengambilan sampel yang digunakan dalam penelitian ini adalah
purposive sampling. Menurut Sugiono (2020) yang dikutip dari (Erwan & Edi
Setiawan, 2023) purposive sampling adalah teknik penentuan sampel dengan
pertimbangan kriteria tertentu Dimana pengambilan sampel didasarkan pada kriteria
yang telah ditetapkan sebelumnya oleh peneliti. Pengambilan sampel dalam penelitian
ini berdasarkan pertimbangan kriteria inklusi dan kriteria eksklusi antara lain :
1. Kriteria Inklusi
Kriteria inklusi merupakan kriteria dimana subjek penelitian mewakili sampel
yang memenuhi syarat sebagai sampel (Yulianto & Alhamdi, 2022). Kriteria inklusi
sampel dalam penelitian ini adalah :
a. Pasien berusia 18 tahun.
b. Pasien berstatus puasa minimal 8-10 jam.
c. Pasien yang disarankan untuk pemeriksaan glukosa puasa.
2. Kriteria Eksklusi
22
kriteria eksklusi merupakan dimana subjek penelitian tidak dapat mewakili
sampel dikarenakan tidak memenuhi syarat sebagai sampel (Yulianto & Alhamdi,
2022). Kriteria eksklusi sampel dalam penelitian adalah :
a. Pasien yang berusia dibawah 18 tahun.
b. Pasien yang tidak berpuasa minimal 8-10 jam.
c. Pasien yang tidak disarankan untuk pemeriksaan glukosa puasa.
3.4
Metode Pengumpulan Data
Metode pengumpulan data merupakan teknik ataupun cara yang digunakan
peneliti untuk mengumpulkan data yang nantinya data tersebut akan digunakan peneliti
untuk memperoleh bahan, keterangan, dan informasi terkait dengan penelitian yang
dilakukan (Mukhamad Fathoni, 2019). Metode pengumpulan data dalam peneltian ini
adalah sebagai berikut :
3.4.1 Data Primer
Data primer adalah data yang dikumpulkan langsung oleh peneliti untuk tujuan
penelitian spesifik melalui metode seperti survei atau eksperimen (Sekaran & Bougie,
2017). Data primer yang digunakan dalam penelitian ini diperoleh setelah melakukan
pemeriksaan glukosa puasa kapiler dan glukosa puasa darah vena pada pasien yang
sama dengan menggunakan alat glukometer.
3.4.2 Data Sekunder
Data sekunder adalah data yang bersumber eksternal yang diperoleh melalui
referensi dari luar baik artikel, jurnal, dan lainnya (Arviyanda et al., 2023). Data
sekunder dalam penelitian ini diperoleh dari sumber-sumber yang relevan, baik
diperoleh melalui buku, jurnal, dan informasi lain yang berkaitan dengan penelitian
untuk dijadikan sebagai teoritis dalam penyusunan proposal.
3.5
Variabel Penelitain
Variable penelitian Variabel penelitian merujuk pada segala aspek atau
karakteristik yang ditentukan oleh peneliti untuk dianalisis, dengan tujuan memperoleh
data atau informasi yang relevan, uttuk ditarik suatu Kesimpulan (Hardani et al., 2020).
Variabel Penelitian dalam peneltian ini adalah sebagai berikut :
23
3.5.1 Variabel Bebas (Independent Variable)
Variabel Bebas (Independent variable) adalah variabel yang mempengaruhi
atau yang menjadi sebab perubahannya atau timbulnya variabel terikat (Dependent
variable) (Setyawan, 2021). Variable independent yang digunakan dalam penelitian ini
adalah jenis sampel darah (kapiler dan vena).
3.5.2 Variabel Terikat (Dependent Variable)
Variabel Terikat (Dependent variable) merupakan Variabel yang dipengaruhi
atau yang menjadi akibat karena adanya variabel bebas (Independent variable)
(Setyawan, 2021). Variable dependent yang digunakan dalam penelitian ini adalah hasil
kadar glukosa darah puasa yang diukur menggunakan alat glukometer.
3.6
Definisi Operasional
Definisi operasional adalah definisi dari variable-variabel yang akan diteliti
secara operasional (Anggreni, 2022). Definisi operasional yang digunakan dalam
penelitian ini diuraikan sebagai berikut :
No.
1.
2.
Variabel
Penelitian
Independent :
Darah Kapiler
dan Vena
Definisi
Operasional
Jenis sampel
darah yang
digunakan dalam
pemeriksaan
glukosa, yaitu
darah kapiler dan
darah vena.
Dependent :
Hasil Kadar
Glukosa
Kadar glukosa
puasa yang diukur
menggunakan alat
glukometer
setelah pasien
berpuasa minimal
8 jam.
Cara
Parameter Skala
Pengukuran
Pengambilan
1. Kapiler Nominal
sampel darah
2. Vena
dari kapiler
(ujung jari)
dan vena
(vena mediana
cubiti)
sebelum
pemeriksaan
glukosa.
Mengukur
mg/dl
Rasio
kadar glukosa
darah kapiler
dan vena
dengan
menggunakan
alat
glukometer.
24
3.7
Alat dan Bahan Penelitian
3.7.1 Alat
Alat yang digunakan dalam penelitian ini adalah handscoon, blood lancet, kapas
kering, kapas alkohol 70%, terniquet, spuit 3cc, tabung vacuum EDTA, alat glukometer
(Accu-Chek Performa), strip tes alat glukometer (Accu-Chek Performa).
3.7.2 Bahan
Bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah darah kapiler dan darah vena.
3.8
Prosedur Penelitian
3.8.1 Pengambilan Darah Kapiler
a.
Tahap Pra-analitik
1. Melakukan wawancara untuk memastikan nama pasien, No RM, tanggal lahir
sesuai dengan form permintaan laboratorium.
2. Memberikan penjelasan tentang tujuan dan prosedur pengambilan.
3. Memastikan posisi nyaman bagi pasien (biasanya duduk atau berbaring).
4. Mempersiapkan alat yang akan digunakan.
b.
Tahap Analitik
1. Membersihkan area yang akan ditusuk dengan kapas alkohol 70%, di biarkan
hingga kering.
2. Memegang bagian jari ujung jari manis atau jari tengah akan ditusuk dan tekan
sedikit untuk mengurangi rasa nyeri.
3. Menusuk dengan cepat dan tepat dengan blood lancet.
4. Membuang tetesan darah pertama keluar dengan menggunakan kapas kering,
kemudian tetesan berikutnya digunaka untuk pemeriksaan.
c.
Tahap Pasca-analitik
Melakukan pemeriksaan dan pembacaan hasil glukosa darah dengan alat
glukometer.
25
3.8.2 Pengambilan Darah Vena
a.
Tahap Pra-analitik
1. Melakukan wawancara untuk memastikan nama pasien, No RM, tanggal lahir
sesuai dengan form permintaan laboratorium.
2. Memberikan penjelasan tentang tujuan dan prosedur pengambilan.
3. Memastikan posisi nyaman bagi pasien (biasanya duduk atau berbaring).
4. Mempersiapkan alat yang akan digunakan.
b.
Tahap Analitik
1. Memilih vena yang mudah diakses (pengambilan dilakukan pada vena mediana
cubiti di lengan).
2. Memasang tourniquet 7-10 cm di atas lokasi tusukan dan pasien diminta
mengepalkan tangan, pembendungan tidak lebih dari 1 menit .
3. Membersihkan area penusukan dengan alkohol 70% secara melingkar dari
dalam ke luar, biarkan kering.
4. Menusuk vena dengan jarung menghadap keatas dengan sudut kiri–kira 30°45°
5. Melakukan aspirasi darah secara perlahan sesuai volume yang dibutuhkan,
pasien diminta melepas kepalan tangan.
6. Melepaskan torniquet, dilakukan penutupan kapas diatas jarum dan melepaskan
jarum perlahan-lahan.
7. Melakukan penutupan pada bekas penusukan dengan plaster.
8. Memasukan darah ke dalam dinding tabung EDTA.
9. Melakukan pelabelan sampel darah pada tabung.
c.
Tahap Pasca-analitik
Melakukan pemeriksaan dan pembacaan hasil glukosa darah dengan alat
glukometer.
3.8.3 Pemeriksaan Glukosa Darah
1. Mengambil trip tes alat glukometer (Accu-Chek Performa) dari wadahnya.
2. Memasukkan strip ke dalam slot alat (secara otomatis alat akan menyala jika
dalam keadaan mati).
26
3. Menunggu hingga di layar muncul simbol tetes darah, menandakan alat siap
digunakan.
4. Segera meneteskan darah pada ujung strip tes hingga terdengar bunyi "bip"
atau indikator di layar menunjukkan darah cukup.
5. Menunggu ±5 detik hingga hasil glukosa darah muncul di layar (mg/dL).
6. Pencatatan hasil pemeriksaan sesuai format pencatatan laboratorium atau
rekam medis pasien.
3.9
Analisa Data
Data yang diperoleh kemudian dianalisis secara statistik diawali dengan uji
normalitas, uji normalitas yang digunakan dalam penelitian ini adalah uji Shapiro Wilk
yaitu merupakan salah satu metode uji normalitas yang efektif dan valid digunakan
untuk sampel berjumlah kecil.
Uji normalitas adalah uji yang digunakan untuk
mengetahui data yang diperoleh berdistribusi normal atau tidak. Jika uji normalitas
menunjukkan bahwa nilai signifikansi (p) pada data kadar glukosa darah kapiler dan
darah vena > 0,05, maka data berditribusi normal dan dilanjutkan dengan uji parametrik
Paired t-test yang bertujuan membandingkan rata-rata dari dua kelompok berpasangan
atau dua kondisi pada sampel yang sama. Jika uji normalitas menunjukkan bahwa nilai
signifikansi (p) < 0,05, maka data berditribusi tidak normal dan dilanjutkan dengan uji
non-parametrik Wilcoxon Signed Rank Test yang bertujuan untuk membandingkan
perbedaan peringkat antara dua kelompok berpasangan atau dua kondisi pada sampel
yang sama. Setelah dilakukan salah satu uji Paired t-test dan Wilcoxon Signed Rank
Test, maka dilanjutkan dengan menganalisis hasil uji dan menarik kesimpulan
berdasarkan nilai p yang diperoleh.
27
DAFTAR PUSTAKA
Abdimas, L. (2023). Gambaran kadar gula darah sewaktu dan tingkat pengetahuan
masyarakat dusun pimpinga desa baturappe kecamatan biringbulu kabupaten
gowa. 4(1), 20–28.
Almaliah, I., & Sudrajat, A. (2024). DARAH SEGERA DAN DITUNDA SELAMA 2
JAM DENGAN METODE POCT. 51–56.
Alydrus, N. L., & Fauzan, A. (2022). Pemeriksaan Interpretasi Hasil Gula Darah.
Jurnal Pengabdian Masyarakat Teknologi Kesehatan, 3(2), 16–21.
Anggreni, D. (2022). Buku Ajar Metodologi Penellitian Kesehatan.
Arviyanda, R., Fernandito, E., & Landung, P. (2023). Analisis Perbedaan Bahasa
dalam Komunikasi Antarmahasiswa. Jurnal Harmoni Nusa Bangsa, 1(1), 67.
https://doi.org/10.47256/jhnb.v1i1.338
Badugu, R., Lakowicz, J. R., & Geddes, C. D. (2021). Emerging technologies for
glucose monitoring. TrAC Trends in Analytical Chemistry. TrAC Trends in
Analytical Chemistry, 103(116324), 142. https://doi.org/10.1007/s41745-02200348-3
Bagshaw, S. M., & Bellomo, R. (2020). Disorders of Sodium and Water Balance.
Critical
Care
Nephrology,
Second
Edition,
515–522.
https://doi.org/10.1016/B978-1-4160-4252-5.50102-7
Baharudin, Nurulita, A., & Arif, M. (2018). Uji Glukosa Darah Antara Metode
Heksokinase dengan Glukosa Oksidase dan Glukos Dehidrogenesase di Diabetes
Melitus. In Indonesian Journal of Clinical Pathology and Medical Laboratory:
Vol. Vol. 21 (Issue No. 2, pp. 170–173).
Brito, P. C., Lopes, V., Antunes, E., Alves, M., Gonçalves, I., & Matos, A. C. (2023).
Hypoglycemia in a Non-diabetic Patient and the Side Effects of Diazoxide Use.
Cureus, 15(3). https://doi.org/10.7759/cureus.36804
Chatwin, H., Broadley, M., Valdersdorf Jensen, M., Hendrieckx, C., Carlton, J., Heller,
S., Amiel, S., De Galan, B., Hermanns, N., Finke-Groene, K., Speight, J., &
Pouwer, F. (2021). Never again will i be carefree’: A qualitative study of the
impact of hypoglycemia on quality of life among adults with type 1 diabetes. BMJ
Open Diabetes Research and Care, 9(1), 1–10. https://doi.org/10.1136/bmjdrc2021-002322
Dewia, O. Y., Saputrob, A. A., Islamiyahc, N., & Kurniad, S. D. (2023). Perbedaan
Hasil Pemeriksaan Kadar Glukosa Darah Sewaktu Menggunakan Metode Glucose
Oxidase-Peroxidase Aminoantypirin (GOD-PAP) Dan Strip Test Poct (Point Care
Of Testing). Jurnal Medika Indonesia, 4(2), 9–14.
Erbach, M., Freckmann, G., Hinzmann, R., Kulzer, B., Ziegler, R., Heinemann, L., &
Schnell, O. (2016). Interferences and limitations in blood glucose self-testing: An
28
overview of the current knowledge. Journal of Diabetes Science and Technology,
10(5), 1161–1168. https://doi.org/10.1177/1932296816641433
Erwan, E. S., & Edi Setiawan. (2023). Pengaruh Kemudahan Penggunaan Dan Promosi
Penjualan Terhadap Keputusan Penggunaan E-Wallet Dana Pada Mahasiswa Di
Kota Yogyakarta. Jurnal Manajemen Dirgantara, 16(1), 129–140.
https://doi.org/10.56521/manajemen-dirgantara.v16i1.822
Fajarna, F., Putri, S. K., & Irayana, N. I. (2022). Perbedaan kadar glukosa darah
berdasarkan hasil pemeriksaan spektrofotometer dengan glukometer di UPTD
Puskesmas Sukajaya Kota Sabang. Jurnal SAGO Gizi Dan Kesehatan, 4(1), 89.
https://doi.org/10.30867/gikes.v4i1.1068
Fernando, A., Nurhidayanti, & Bastian. (2024). Perbedaan Kadar Glukosa Darah
Metode God-Pap Dan Poct Menggunakan Sampel Darah Vena Dan Darah
Kapiler.
Masker
Medika,
12(1),
202–208.
https://doi.org/10.52523/maskermedika.v12i1.626
Fernando, P., Mandias, R. J., & Senduk, A. F. S. (2024). PERILAKU MEROKOK
DAN KADAR GULA DARAH PENDERITA DIABETES MELITUS. Nutrix
Journal, 171–178.
Gandosoebrata, R. (2013). PENUNTUN LABORATORIUM KLINIK: Vol. XV. Dian
Rakyat.
Guyton, & Hall. (2021). Text Book of Medical Physiology. 1013.
Handayani, F., Suangga, F., & Ennimay, E. (2025). Pengaruh Edukasi Terhadap
Tingkat Kepatuhan Minum Obat Dan Prilaku Diet Pada Pasien Diabetes Mellitus
Tipe II di RSUD Kabupaten Bintan.
Hardani, Andriani, H., Ustiawaty, J., Utami, E. F., Istiqomah, R. R., Fardani, R. A.,
Sukmana, D. J., & Auliya, N. H. (2020). Metode penelitian Kualitatif &
Kuantitatif. In Revista Brasileira de Linguística Aplicada (Vol. 5, Issue 1).
Hassan, M. H., Vyas, C., Grieve, B., & Bartolo, P. (2021). Recent advances in
enzymatic and non-enzymatic electrochemical glucose sensing. Sensors, 21(14).
https://doi.org/10.3390/s21144672
Herawati, E. Y., Ariyadi, T., & Santosa, B. (2017). PERBEDAAN KADAR
GLUKOSA DARAH SEWAKTU PADA DARAH KAPILER DAN VENA
DENGAN TEST STRIP (GLUCOMETER ON CALL). Perpus Unimus.
http://repository.unimus.ac.id/id/eprint/405
Iba, Z., & Wardhana, A. (2021). Populasi dan Sampel. In Metode Penelitian
Pendekatan Kuantitatif (Vol. 14, Issue 1).
Irawan, M. P., & Helviola, H. (2022). Kadar Kolesterol Darah Tanpa Usapan Dan
Dengan Usapan Kapas Kering Metode Point of Care Testing (Poct). SENTRI:
Jurnal Riset Ilmiah, 2(1), 109–114. https://doi.org/10.55681/sentri.v2i1.308
29
Kardi, R. I., Sukeksi, A., & Nuroini, F. (2018). PERBEDAAN HASIL
PEMERIKSAAN KADAR GLUKOSA DARAH DENGAN GLUKOMETER
(METODE POCT) MENGGUNAKAN SAMPEL DARAH VENA DAN
DARAH KAPILER. Reposity Universitas Muhamadia Semarang, 722.
http://repository.unimus.ac.id/id/eprint/1243
Konda, L. (2021). High Blood Sugar Levels Over a Prolonged Period : Diabetes.
Journal of Glycobiology High, 10, 3–4.
Laisouw, A. J., Herlisa, A., & Ariyadi, T. (2017). Perbedaan Kadar Glukosa Darah
Tanpa dan Dengan Hapusan kapan Kering Metode POCT. Jurnal Universitas
Muhammadiyah Semarang, 2030(September), 661–665.
Mahdalina, D., Sari, E. P., & Kusumawardani, E. (2024). Gambaran Kadar Tes
Toleransi Glukosa Oral ( TTGO ) Pada Wanita Dengan Sedentary Lifestyle (
Studi di Dusun Kapas , Dukuhklopo , Peterongan , Jombang ) Description of Oral
Glucose Tolerance Test ( OGTT ) Levels in Women with. 5(September), 131–136.
Moghadam, M. R., Saadatmand, M., & Khajeh, K. (2021). Recent advances in enzymebased glucose biosensors: A review. Biosensors and Bioelectronics, 3(14), 183,
113246. https://doi.org/10.1039/c2ra22351a
Mukhamad Fathoni, M. P. I. (2019). Teknik Pengumpulan Data Penelitian. In Jurnal
Keperawatan (Issue July).
Natasya, R. S. (2022). KELAYAKAN SAMPEL DARAH VENA DAN DARAH KAPILER
TERHADAP PEMERIKSAAN JUMLAH TROMBOSIT MENGGUNAKAN
HEMATOLOGY ANALYZER SYSMEX XP-100 DI RS KHUSUS BEDAH
RAWAMANGUN. 9, 356–363. https://repository.binawan.ac.id/1917/1/TLM2022-REHEZKIEL SASHA NATASYA.pdf?utm
Oktaviana, E., Nadrati, B., Supriyatna, L. D., & Zuliardi, Z. (2023). Pemeriksaan Gula
Darah Untuk Mencegah Peningkatan Kadar Gula Darah Pada Pasien Diabetes
Mellitus.
Jurnal
LENTERA,
2(2),
232–237.
https://doi.org/10.57267/lentera.v2i2.201
Pakendek, G., & Rantetampang, A. . (2018). Study Persepsi Pasien Kualitas
Penyediaan Makanan Terhadap Citra Rumah Sakit Umum Jayapura. Jurnal
Nasional Ilmu Kesehatan (Jnik), 1(69), 1–16.
Petersmann, A., Müller-Wieland, D., Müller, U. A., Landgraf, R., & Nauck, M.
Freckmann, G., Heinemann, L. (2020). New glucose monitoring technologies and
their application in type 1 and type 2 diabetes: A consensus report by the German
Diabetes
Association
(DDG).
Diabetologia,
63(2),
221–229.
https://doi.org/10.1055/a-1624-3282
Puspita, I., Kurniawan, M. R., & Riyanti, A. (2023). Perbandingan Pemeriksaan
Glukosa Darah Puasa Dengan Menggunakan Sampel Serum Dan Plasma Edta
Pada Pasien Diabetes Melitus Tipe 2. Journal of Indonesian Medical Laboratory
30
and
Science
(JoIMedLabS),
https://doi.org/10.53699/joimedlabs.v4i2.118
4(2),
87–94.
Rosares, V. E., & Boy, E. (2022). Pemeriksaan Kadar Gula Darah untuk Screening
Hiperglikemia dan Hipoglikemia. Jurnal Implementa Husada, 3(2), 65–71.
https://doi.org/10.30596/jih.v3i2.11906
Saadah, S. (2018). Sistem Peredaran Darah Manusia. In PROGRAM STUDI
PENDIDIKAN BIOLOGI FAKULTAS TARBIYAH DAN KEGURUAN UIN
SUNAN GUNUNG DJATI BANDUNG. https://idschool.net/smp/sistemperedaran-darah-manusia/
Sandy, M. E. (2019). Perbedaan kadar Glukosa Darah Menggunakan Sampel Darah
Vena dan Darah Kapiler. Stikes Insan Cendekia Medika Jombang.
Sekaran, U., & Bougie, R. (2017). Research Methods for Business: A Skill-Building
Approach.
Setyawan, D. A. (2021). Hipotesis Dan Variabel Penelitian. In Tahta Media Group.
Simamora, A. (2023). PERBEDAAN HASIL PEMERIKSAAN KADAR GLUKOSA
DARAH METODE POINT OF CARE TEST (POCT) MENGGUNAKAN
SAMPEL DARAH VENA DAN DARAH KAPILER PADA PASIEN
DIABETES MELITUS TIPE II Differences In The Results Of Examination Of
Blood Glucose Levels By The Point Of Care Te. Jurnal Medistra Medical Journal
(MMJ),
e-ISSN
XXXX-XXXX,
1(1).
https://ejournal.medistra.ac.id/index.php/MMJ
Soelistijo, S. (2021). Pedoman Pengelolaan dan Pencegahan Diabetes Melitus Tipe 2
Dewasa di Indonesia 2021. Global Initiative for Asthma, 46. www.ginasthma.org.
Suriani, N., Risnita, & Jailani, M. S. (2023). Konsep Populasi dan Sampling Serta
Pemilihan Partisipan Ditinjau Dari Penelitian Ilmiah Pendidikan. Jurnal IHSAN :
Jurnal Pendidikan Islam, 1(2), 24–36. https://doi.org/10.61104/ihsan.v1i2.55
Tawiah, K., Jackson, L., Omosule, C., Ballman, C., Shahideh, B., Scott, M. G.,
Murtagh, G., & Farnsworth, C. W. (2022). Evaluation of enzyme-based laboratory
methods for plasma glucose determination: Current challenges and perspectives.
Clinical
Biochemistry,
107(June),
24–32.
https://doi.org/10.1016/j.clinbiochem.2022.06.002
Ubaidillah, Z., Sari, D. A. P., & Mashfufu, E. W. (2021). DETERMINAN INSIDEN
HIPOGLIKEMIA PADA PASIEN DIABETES MELLITUS TIPE. Jurnal Ilmiah
Keperawatan, 7.
Wu, T., Ding, L., Andoh, V., Zhang, J., & Chen, L. (2023). The Mechanism of
Hyperglycemia-Induced Renal Cell Injury in Diabetic Nephropathy Disease: An
Update. Life, 13(2), 1–18. https://doi.org/10.3390/life13020539
Yulianto, A. A., & Alhamdi, F. (2022). Jurnal Hasi Penelitian Dan Pengkajian Ilmiah
31
Eksakta. Jppie, 01(01), 59–64. http://jurnal.unidha.ac.id/index.php/jppie
Yulistari, N. (2022). KARYA TULIS ILMIAH HUBUNGAN TINGKAT STRES
DENGAN KADAR GLUKOSA DARAH PADA MAHASISWA SEMESTER 6
PRODI D3 TLM DI ITSKes ICMe JOMBANG. 9, 356–363.
Yuniastuti, A., Susanti, R., & Iswari, R. S. (2018). Efek Infusa Umbi Garut (Marantha
arundinaceae L) Terhadap Kadar Glukosa dan Insulin Plasma Tikus yang
Diinduksi Streptozotocyn. Jurnal Mipa, 41(1), 34–39.
32
Download