PROPOSAL FORMULASI DAN UJI AKTIVITAS ANTIBAKTERI HAND SANITIZER KOMBINASI EKSTRAK DAUN PANDAN WANGI (Pandanus amaryllifolius R.) DAN PERASAN BUAH JERUK NIPIS (Citrus aurantifolia S.) TERHADAP BAKTERI Staphyllococus aureus Disusun Oleh : Dwinita Saefafuna Yunaz E0016057 PROGRAM STUDI FARMASI PROGRAM SARJANA STIKes BHAKTI MANDALA HUSADA SLAWI 2019/2020 DAFTAR ISI hal HALAMAN JUDUL.................................................................................................i HALAMAN PERSETUJUAN.................................................................................ii HALAMAN PENGESAHAN.................................................................................iii KATA PENGANTAR............................................................................................iv DAFTAR ISI...........................................................................................................v DAFTAR TABEL..................................................................................................vii DAFTAR GAMBAR............................................................................................viii BAB 1 PENDAHULUAN 1.1 Latar Belakang ..................................................................................................................................... ..1 1.2 Rumusan Masalah ....................................................................................................................................... ..2 1.3 Tujuan Penelitian .................................................................................................................................... ..3 1.4 Manfaat ....................................................................................................................................... ..3 BAB 2 TINJAUAN PUSTAKA 2.1 Tinjauan Pustaka ........................................................................................................................................ ..4 2.1.1 Tanaman Daun Pandan......................................................................................................................................... ..4 2.1.2 Tanaman Jeruk Nipis............................................................................................................................................ ..8 2.1.3 Ekstrak .................................................................................................................................................... 10 v 2.1.4 Metode Ekstraksi ..................................................................................................................................... 11 2.1.5 Staphylococcus aureus ......................................................................................................................................... 11 2.1.6 Uji Aktivitas Antibakteri .................................................................................................................................. 12 2.1.7 Kulit ............................................................................................................................................ 13 2.1.8 Infeksi ......................................................................................................................................... 15 2.1.9 Gel............................................................................................................................................... 16 2.1.10 Uraian Hand Sanitizer ...................................................................................................................................... 17 2.1.11 Uraian Bahan .......................................................................................................................................... 18 2.2 Landasan Teori............................................................................................................................................ 22 2.3 Hipotesis ..................................................................................................................................... 24 BAB 3 METODE PENELITIAN 3.1 Waktu dan Tempat Penelitian .................................................................................................................................... 25 3.2 Alat dan Bahan .......................................................................................................................................... 25 vi 3.3 Rancangan Penelitian .................................................................................................................................... 25 3.4 Prosedur Penelitian .................................................................................................................................... 26 3.4.1 Pengambilan Sampel ........................................................................................................................................ 26 3.4.2 Determinasi Tanaman ..................................................................................................................................... 26 3.4.3 Pembuatan Serbuk Simplisia ..................................................................................................................................... 26 3.4.4 Pembuatan Ekstrak Daun Pandan......................................................................................................................................... 27 3.4.5 Uji Parmeter Ekstrak ........................................................................................................................................ 28 3.4.6 Uji Skrining Fitokimia ..................................................................................................................................... 30 3.5 Formulasi Sediaan Gel .................................................................................................................................................... 32 3.6 Pembuatan Sediaan Gel .................................................................................................................................................... 33 3.6.1 Pembuatan Media Nutrient Agar .................................................................................................................................................... 33 3.6.2 Pembiakan Bakteri Staphylococcus aureus .................................................................................................................................................... 33 3.6.3 Uji Aktivitas Antibakteri Sediaan ........................................................................................................................................ 34 vii 3.7 Uji Sediaan Fisik Gel Hand Sanitizer .................................................................................................................................................... 37 3.8 Analsis Data .................................................................................................................................................... 37 DAFTAR PUSTAKA LAMPIRAN viii BAB 1 PENDAHULUAN 1.1 Latar Belakang Penyakit sering berasal dari mikroorganisme yang tidak dapat dilihat oleh mata secara langsung. Bentuk penyebaran mikroorganisme pada manusia adalah melalui tangan (Melisa, 2013). Berbagai macam jenis virus, bakteri dan jamur menempel pada tangan setiap harinya melalui kontak fisik. Di Indonesia angka kesakitan dan angka kematian yang tinggi disebabkan terutama oleh penyakit infeksi. Telapak tangan menjadi salah satu tempat pertumbuhan bakteri, dimana bakteri baik dan bakteri buruk bisa tumbuh. Bakteri buruk bisa menyebabkan orang sakit/berpenyakit. Contoh bakteri yang ada ditelapak tangan adalah Eschericia coli dan Staphylococcus aureus yang bisa menyebabkan diare jika masuk dalam pencernaan (Muntiaha, 2014). Daun Pandan merupakan tanaman yang sering dimanfaatkan daunnya sebagai bahan tambahan makanan, umumnya sebagai bahan pewarna hijau dan pemberi aroma. Selain kegunaan tersebut, Daun Pandan juga dilaporkan memiliki aktivitas antidiabetik pada ekstrak air, antioksidan pada ekstrak air dan metanol, antikanker pada ekstrak etanol dan metanol, dan antibakteri pada ekstrak etanol dan etil asetat (Prameswari dan Widjanarko, 2014). Berdasarkan penelitian Dasopang et al (2016) Ekstrak daun pandan (pandanus amaryllifolius R.) dengan konsentrasi 10% efektif dapat menghambat bakteri, sedang pada perasan buah jeruk nipis (Citrus aurantifolia S.) dengan 1 konsentrasi 25 % dapat menghambat bakteri Staphyllococus aureus (Razak et al, 2013). Jenis sediaan farmasi yang mempermudah penggunaannya yaitu dengan cara dibuat sediaan gel hand sanitizer. Hand sanitizer (antiseptik tangan) adalah produk kesehatan yang secara instant dapat mematikan kuman tanpa menggunakan air, dapat digunakan kapan saja dan dimana saja. Pemakaian antiseptik tangan dalam bentuk sediaan gel di kalangan masyarakat menengah ke atas sudah menjadi suatu gaya hidup. Sediaan hand sanitizer pada umumnya berbentuk gel yang memiliki kemampuan sebagai antibakteri dalam menghambat hingga membunuh bakteri. Dipilih sediaan handsanitizer karena berbentuk gel sehingga lebih mudah digunakan dan menyebar rata dan juga tidak lengket (Ansel, 1989). 1.2 Rumusan Masalah Pada penelitian ini rumusan masalah yang diperoleh adalah sebagai berikut : 1. Apakah formulasi sediaan gel hand sinitizer kombinasi ekstrak daun pandan (Pandanus amaryllifolius) dan perasan buah jeruk nipis (Citrus aurantifolia swingle) memenuhi syarat evaluasi sediaan gel ? 2. Apakah kombinasi ekstrak daun pandan (Pandanus amaryllifolius) dan perasan buah jeruk nipis (Citrus aurantifolia swingle) memiliki aktivitas antibakteri terhadap bakteri Staphyllococus aureus ? 2 1.3 Tujuan Tujuan dari penelitian ini adalah : 1. Memperoleh formulasi sediaan gel hand sanitizer kombinasi ekstrak daun pandan (Pandanus amaryllifolius) dan perasan buah jeruk nipis (Citrus aurantifolia swingle) yang memenuhi syarat evaluasi sediaan fisik. 2. Mengetahui apakah kombinasi ekstrak daun pandan (Pandanus amaryllifolius) dan perasan buah jeruk nipis (Citrus aurantifolia swingle) memiliki aktivitas antibakteri terhadap bakteri Staphyllococus aureus. 1.4 Manfaat Penelitian Berdasarkan tujuan penelitian di atas, manfaat penelitian adalah sebagai berikut : 1. Memberikan informasi mengenai Ekstrak Daun Pandan Wangi (Pandanus amaryllifolius R.) dan Perasan Buah Jeruk Nipis (Citrus aurantifolia S.) sebagai Hand sanitizer alami non alkohol. 2. Meningkatkan potensi Hand sanitizer bahan alam sebagai alternatif pencegahan infeksi pada tangan. 3 4 BAB 2 TINJAUAN PUSTAKA 2.1 Tinjauan Pustaka 2.1.1 Tanaman Daun Pandan Wangi (Pandanus amaryllifolius Roxb.) Klasifikasi Daun pandan wangi Kingdom : Plantae Subkingdom : Trachebionta Super Divisi : Spermatophyta Divisi : Magnoliophyta Kelas : Liliopsida Ordo : Pandales Famili : Pandanaceae Genus : Pandanus Spesies : Pandanus amaryllifolius Roxb (Sarwono, 2001) Daun pandan merupakan komponen penting dalam tradisi masakan Indonesia dan negara-negara Asia Tenggara lainnya. Di beberapa daerah, tanaman ini dikenal dengan berbagai nama antara lain: Pandan Rampe, Pandan Wangi (Jawa); Seuke Bangu, Pandan Jau, Pandan Bebau, Pandan Rempai (Sumatera); Pondang, Pondan, Ponda, Pondago (Sulawesi); Kelamoni, Haomoni, Kekermoni, Ormon Foni, Pondak, Pondaki, Pudaka (Maluku); Pandan Arrum (Bali), Bonak (Nusa Tenggara). Daun Pandan 4 5 termasuk jenis tanaman monokotil dari famili Pandanaceae. Pandanus umumnya pohon atau semak yang tegak, tinggi 3–7 meter, bercabang, kadang-kadang batang berduri, dengan akar tunjang sekitar pangkal batang. Daun pandan memiliki panjang 1–3 m, lebar 8–12cm, ujung daun segitiga lancip-lancip, tekstur daun berlilin, berwarna hijau muda sampai hijau tua, letak buah terminal atau lateral. (Rahayu & Handayani, 2008) (a) (b) Gambar 2.1 (a) Tanaman Daun Pandan wangi (b) Daun Pandan wangi ( Dokumentasi pribadi) 2.1.2 Kandungan dan manfaat Daun Pandan Wangi Daun pandan memiliki senyawa antara lain; (1) Alkaloid suatu senyawa organik detoksikan yang menetralisir racun-racun di dalam tubuh. (2) Saponin merupakan senyawa antibakteri dan antivirus yang dapat meningkatkan sistem kekebalan tubuh, mengurangi kadar gula darah, dan mengurangi penggumpalan darah. (3) Flavonoid, suatu antioksidan alam dengan aktivitas biologis, antara lain menghambat berbagai reaksi oksidasi, bertindak sebagai pereduksi radikal hidroksil, superoksida dan radikal peroksil. (4) Minyak Atsiri merupakan senyawa khas tumbuhan tetapi tidak 6 semua tumbuhan menghasilkan minyak atsiri. Minyak atsiri hanya ditemukan pada tumbuhan yang memiliki sel glandula (Wijayakusuma, 2008). 2.1.3 Klasifikasi Tanaman Jeruk Nipis (Citrus aurantifolia) Klasifikasi Tanaman Jeruk Nipis Regnum : Plantae Devisi : Spermatophyta SubDivisi : Angiospermae Class : Dicotyledonae Subclass : Dialypetalae Ordo : Rutales Family : Rutacea Genus : Citrus Spesies : Citrus aurantifolia swingle (Sarwono, 2001). Tanaman jeruk nipis mempunyai akar tunggang, jeruk nipis termasuk jenis tumbuhan perdu yang memiliki dahan dan ranting, Batang pohon berkayu ulet dan keras, sedangkan permukaan kulit luarnya berwarna tua dan kusam. Daun majemuk, berbentuk elips dengan pangkal membulat, ujung tumpul, dan tepi beringgit. Panjang daunnya mencapai 2,5-9 cm dan lebarnya 2-5 cm. Tulang daun menyirip dengan tangkai bersayap, lebar 5-25 mm. Buah jeruk nipis berdiameter 1,5-2,5 cm, Kelopak daun berjumlah 4-5, Mahkota berjumlah 4-5, berdaun lepas lepas. Benang sari 4-5 atau 8-10, kepala ruang sari beruang 2. Tonjolan dasar bunga beringgit atau berlekuk. 7 Bunga beraturan, berkelamin 2, bentuk seperti payung, tandan atau malai. Tanaman jeruk nipis pada umur 2,5 tahun sudah mulai berbuah. Buahnya berbentuk bulat sebesar bola pingpong dengan diameter 3,5-5 cm. Kulitnya berwarna hijau atau kekuning-kuningan dengan tebal 0,2-05 cm. Daging buahnya berwarna kuning kehijauan (Sarwono, 2001). Gambar 2.2 Buah jeruk nipis (Citrus aurantifolia) (Sarwono, B., 2001) 2.1.4 Kandungan dan manfaat Buah jeruk nipis (Citrus aurantifolia) Jeruk nipis memiliki kandungan flavonoid, saponin dan minyak atsiri. Komponen minyak atsirinya adalah siral, limonene, feladren, dan glikosida hedperidin. Sari buah jeruk nipis mengandung minyak atsiri limonene dan asam sitrat 7%. Buah jeruk mengandung zat bioflavonoid, pectin, enzim, protein, lemak dan pigmen (karoten dan klorofil). Berdasarkan beberapa penelitian, buah jeruk nipis memiliki kandungan metabolit sekunder flavonoid dalam jumlah yang banyak baik dalam bentuk C atau O-glikosida. Flavonoid jeruk dapat diklasifikasikan menjadi flavonon, flavon dan flavonol (Prastiwi & Ferdiansyah, 2013) Jeruk nipis (Citrus aurantifolia S.) adalah salah satu tanaman toga yang banyak digunakan oleh masyarakat sebagai bumbu masakan dan obat-obatan. Dalam bidang medis, 8 jeruk nipis dimanfaatkan sebagai penambah nafsu makan, diare, antipireutik, antiinflamasi, antibakteri dan diet (Prastiwi & Ferdiansyah, 2013) 2.1.5 Ekstraksi Ekstraksi merupakan kegiatan penarikan kandungan kimia yang dapat larut sehingga terpisah dari bahan yang tidak larut dengan pelarut cair. Senyawa aktif yang terdapat dalam berbagai simplisia dapat digolongkan kedalam golongan minyak atsiri, alkaloid, flavonoid, dan lain-lain. Dengan diketahuinya senyawa aktif yang dikandung simplisia akan mempermudah pemilihan pelarut dan cara ekstraksi yang tepat (Anonim, 2000). 2.1.5.1 Metode Ekstraksi 1. Cara Dingin a. Maserasi Maserasi dilakukan dengan cara merendam serbuk simplisia dalam pelarut. Metode maserasi biasanya dilakukan selama 3 hari pada temperatur kamar dan terlindung dari cahaya. Pelarut akan menembus dinding sel dan masuk ke dalam rongga sel yang mengandung zat aktif sehingga zat aktif akan larut. Karena adanya perbedaan konsentrasi antara larutan zat aktif didalam sel, maka larutan yang terpekat didesak keluar. Pelarut yang digunakan dapat berupa air, etanol, air-etanol, atau pelarut lain. Keuntungan cara ekstraksi dengan menggunakan metode ini, adalah cara pengerjaannya yang mudah dan peralatan yang digunakan cukup sederhana (Anonim, 2000). 9 b. Perkolasi Perkolasi merupakan suatu metode ekstraksi dengan menggunakan alat yang disebut perkolator. Perkolasi merupakan ekstraksi dengan menggunakan pelarut yang selalu baru sampai sempurna yang umumnya dilakukan pada temperatur ruangan (Anonim, 2000) 2. Cara Panas a. Refluks Ekstraksi metode refluks dengan menggunakan pelarut pada temperatur titik didihnya, selama waktu tertentu dan jumlah pelarut terbatas yang relatif konstan dengan adanya pendingin balik (Anonim, 2000). b. Sokletasi Sokletasi merupakan ekstraksi dengan menggunakan pelarut yang selalu baru yang umumnya dilakukan dengan alat khusus sehingga terjadi ekstrak kontinyu dengan jumlah pelarut relatif konstan dengan adanya pendingin balik (Anonim, 2000). c. Digesti Digesti adalah metode maserasi kinetik (dengan menggunakan pengadukan secara kontinyu) pada temperatur yang lebih tinggi dari pada temperatur ruangan, yaitu secara umum dilakukan pada temperatur 40-50ºC (Anonim, 2000). d. Infundasi 10 Proses metode infundasi melalui penyarian yang umumnya dilakukan untuk menyari zat kandungan aktif yang larut dalam air dari bahan-bahan nabati. Proses ini dilakukan pada suhu 90ºC selama 15 menit (Anonim, 2000). e. Dekok Dekok merupakan infus pada waktu yang lebih lama dan temperatur sampai titik didih air, yakni 30 menit pada suhu 90-100ºC. Sampai diperoleh ekstrak (perkolat) (Anonim, 2000). 2.1.6 Ekstrak Ekstrak adalah sediaan kental yang diperoleh dengan cara mengekstraksi senyawa aktif dari simplisia nabati atau hewani dengan menggunakan pelarut yang sesuai, kemudian semua pelarut atau hampir semua pelarut diuapkan dan massa atau serbuk yang tersisa diperlakukan sedemikian hingga memenuhi syarat baku yang telah ditetapkan (Anonim, 2000). 2.1.7 Staphylococcus aureus Staphylococcus aureus merupakan bakteri gram positif, berbentuk kokus atau gerombolan seperti anggur, non motil, anaerobik fakultatif, menghasilkan koagulase. Dijumpai pada selaput hidung, kulit dan kantung rambut (Pelczar dan Chan, 2005). Staphylococcus aureus merupakan salah satu bakteri gram positif yang berbentuk bulat berdiameter 0,7-12 μm, tidak membentuk spora. Bakteri ini 11 tumbuh pada suhu optimum 370C, koloni pada perbenihan padat berwarna abu-abu sampai kuning keemasan, berbentuk bundar halus, menonjol, dan berkilau. Bakteri ini dapat memfermentasikan beberapa karbohidrat dan dapat menghasilkan pigmen yang berwarna (Jawetz, 2008). Gambar 2.3 Staphylococcus aureus dilihat dari mikroskop elektron (Todar, 2008) Sistematika Staphylococcus aureus adalah sebagai berikut: Divisi : Protophyta Kelas : Schizomycetes Bangsa : Eubacteriales Suku : Micrococcaceae Marga : Staphylococcus Jenis : Staphylococcus aureus (Jawetz, 2008). 2.1.8 Uji Aktivitas Antibakteri Metode cakram merupakan metode yang paling sering digunakan untuk menentukan kepekaan kuman terhadap berbagai macam obat-obatan. Metode cakram kertas saring ini memiliki kelebihan mudah untuk 12 dilakukan, tidak memerlukan peralatan khusus untuk perlakuan dan biaya yang relatif murah (Bonang, 1992). Metode cakram dilakukan dengan menggunakan suatu cakram kertas saring (paper disc) yang berfungsi sebagai tempat menampung zat antimikroba. Cakram kertas saring yang berisi agen antimikroba diletakkan pada media agar yang telah ditanami mikoorganisme yang akan berdifusi pada media agar tersebut. Pada umumnya hasil yang didapat bisa diamati setelah inkubasi selama 18-24 jam dengan suhu 370 C. Area jernih mengindikasikan adanya hambatan pertumbuhan suatu mikroorganisme oleh agen antimikroba yang ada pada permukaan media agar (Pratiwi, 2008). Menurut Davis & Stout pada penelitian (Ni kadek yunita sari, 2019). efektifitas suatu zat antibakteri bisa diklasifikasikan pada tabel 2.1 Tabel 2.1 Kategori Daya Hambat Bakteri Daya Hambat Bakteri ≥ 20 mm 10-20 mm 5-10 mm ≤ 5 mm Kategori Sangat Kuat Kuat Sedang Lemah 2.1.9 Kulit Kulit merupakan pertahanan eksternal terhadap mikroba asing. Kulit tidak hanya berfungsi sebagai sawar mekanis antara lingkungan eksternal dan jaringan dibawahnya tetapi juga secara dinamis terlibat dalam mekanisme pertahanan dan fungsi penting lain. Kulit pada orang dewasa 13 rerata memiliki berat 9 pon dan melingkupi area permukaan sekitar 21 m2. Lapisan terdalamnya mengandung banyak pembuluh darah, yang jika dibentangkan dari ujung ke ujung lainnya mencapai lebih dari 11 mil (Sherwood, 2014). Gambar 2.3 Fisiologi kulit (Sherwood, 2014) Kulit manusia tersusun atas lapisan epidemis dan dermis. Epidermis merupakan lapisan teratas pada kulit manusia yang terdiri dari banyak lapisan sel epitel. Bagian dalam lapisan epidermmis terdiri dari sel-sel berbentuk kubus yang hidup dan cepat membelah, sementara sel-sel dilapisan luar merupakan sel mati dan gepeng. Epidermis tidak memiliki aliran darah langsung. Selain sel-sel epitel, epidermis juga tersusun atas lapisan : a) Melanosit merupakan sel yang menghasilkan pigmen melanin yang disebarkan ke sel-sel kulit sekitar. b) Sel langerhans merupakan sel yang menyajikan antigen ke sel T helper, memperlancar responsivitas sel terhadap antigen terkait kulit. Sel langerhans lebih rentan terhadap kerusakan oleh radiasi UV dari pada sel granstein. c) Sel granstein merupakan sel yang berfungsi sebagai “rem” terhadap respon imun yang 14 diaktifkan oleh kulit. d) Keratinosit merupakan sel yang menghasilkan keratin.. Dermis merupakan lapisan kulit dibawah epidermis. Dermis merupakan suatu lapisan jaringan ikat yang mengandung banyak serat elastin dan serat kolagen serta banyak pembuluh darah dan ujung saraf khusus. Pembuluh darah dermis tidak saja memasok dermis dan epidermis tetapi juga berperan besar dalam mengatur suhu tubuh (Sherwood, 2014). 2.1.10 Infeksi Infeksi merupakan proses saat organisme dapat mengakibatkan masuknya suatu penyakit kedalam tubuh atau jaringan dan menyebabkan trauma atau kerusakan (Pierce et al., 2007). Terjadinya infeksi bakteri membutuhkan sumber bakteri, lingkungan yang rentan terhadap bakteri, hilangnya resistensi terhadap infeksi, sekresi bakteri menimbulkan efek sakitnya dengan melepaskan senyawa enzim, eksotoksin dan endotoksin (Pierce et al., 2007). 2.1.11 Gel Gel umumnya merupakan suatu sediaan semipadat yang jernih, tembus cahaya, mengandung zat aktif, merupakan dispersi koloid mempunyai kekuatan yang disebabkan oleh jaringan yang saling berikatan pada fase terdispersi. Makromolekul pada sediaan gel disebarkan keseluruh cairan sampai tidak terlihat ada batas diantaranya, disebut dengan gel satu fase. Jika masa gel terdiri dari kelompok partikel kecil yang berbeda, maka gel ini dikelompokkan dalam sistem dua fase (Ansel, 1989). 15 Polimer-polimer yang biasa digunakan untuk membuat gel farmasetik meliputi gom alam tragakan, pektin, karagen, agar, asam alginat, serta bahan-bahan sintetis dan semi sintetis seperti metil selulosa, hidroksi etil selulosa, karboksi metil selulosa, dan karbopol yang merupakan polimer vinil sintetis dengan gugus karboksil yang terionisasi. Gel dibuat dengan proses peleburan, atau diperlukan suatu prosedur khusus berkenaan dengan sifat mengembang dari gel (Lachman et al., 1994). 2.1.12 Hand sanitizer Hand sanitizer merupakan desinfektan khusus yang mengurangi jumlah kuman-kuman kontaminasi sampai tingkat yang aman bagi kesehatan masyarakat. Hand sanitizer merupakan gel dengan berbagai kandungan yang cepat membunuh mikroorganisme yang ada pada kulit tangan. Hand sanitizer banyak digunakan karena alasan kepraktisan pada saat darurat tidak adanya air. Handsanitizer mudah dibawa dan bisa cepat digunakan tanpa perlu menggunakan air. Kelebihan Hand sanitizer menurut US FDA (Food and Drug Administration) dapat membunuh kuman dalam waktu relatif cepat (Anonim, 2008) Istilah antiseptik digunakan untuk sediaan yang dipakai pada jaringan hidup. Antiseptik merupakan senyawa kimia yang digunakan untuk menghambat atau mematikan mikroorganisme pada jaringan hidup yang mempunyai efek membatasi dan mencegah infeksi agar tidak menjadi lebih parah. Antiseptik yang ideal dapat menghambat pertumbuhan dan merusak 16 sel-sel bakteri, spora bakteri dan jamur, virus dan protozoa tanpa jaringan tubuh inang atau hospes (Anonim, 2008). 2.2 Landasan Teori Bentuk penyebaran mikroorganisme pada manusia adalah melalui tangan (Shu, 2013). Staphylococcus aureus merupakan bakteri yang paling sering menyebabkan infeksi pada kulit. Gel yaitu sistem semi padat berupa suspensi, yang terbuat dari partikel anorganik kecil atau molekul organik besar yang terpenetrasi dalam cairan (Syamsuni, 2006). Sediaan gel merupakan salah satu bentuk sediaan yang cukup digemari sebagai handsanitizer. Sediaan gel handsanitizer merupakan sediaan yang mempunyai kemampuan antibakteri dalam menghambat pertumbuhan hingga membunuh bakteri (Sari dan Isadiartuti, 2006). Sediaan gel handsanitizer dapat menjadi salah satu alternatif untuk tetap menjaga kebersihan tangan dalam keadaan tidak adanya air dan sabun. Handsanitizer dalam bentuk sediaan gel sangat praktis digunakan. Cara pemakaiannya dengan diteteskan pada telapak tangan, kemudian diratakan pada permukaan tangan tanpa dibilas dengan air (Retnosari dan Isadiartuti, 2006). Berdasarkan penelitian Dasopang et al (2016) Ekstrak daun pandan (Pandanus amaryllifolius) dengan konsentrasi 10% efektif dapat menghambat bakteri, sedang pada perasan buah jeruk nipis (Citrus aurantifolia swingle) dengan konsentrasi 25% dapat menghambat bakteri (Razak et al, 2013). Mekanisme kerja flavonoid sebagai antibakteri yaitu 17 dengan cara menghambat pertumbuhan bakteri dengan merusak dinding sel dan membran sitoplasma. Senyawa tanin sebagai antibakteri yaitu dengan cara mengkerutkan dinding sel bakteri sehingga dapat mengganggu permeabilitas sel. Terganggunya permeabilitas sel bakteri menyebabkan sel tersebut tidak dapat melakukan aktivitas hidup sehingga pertumbuhannya terhambat atau mati (Mataliana et al., 2013). Mekanisme kerja minyak atsiri sebagai antibakteri yaitu menghambat atau mematikan pertumbuhan mikroba dengan cara mengganggu proses terbentuknya membran atau dinding sel sehingga tidak terbentuk sempurna. Berdasarkan uraian tersebut, dapat dilakukan penelitian untuk mengetahui uji aktivitas antibakteri kombinasi dari ekstrak daun Pandan (Pandanus amarryllifolius) dan perasan buah jeruk nipis (Citrus aurantifolia) terhadap bakteri Staphylococcus aureus, yang kemudian dilanjut dengan membuat formulasi dalam sediaan gel yang dapat mengurangi infeksi terhadap bakteri Staphylococcus aureus. Metode cakram dipilih untuk menentukan kepekaan bakteri. Metode cakram dilakukan dengan menggunakan suatu cakram kertas saring (paper disc) yang berfungsi sebagai tempat menampung zat antimikroba. Cakram kertas saring yang berisi agen antimikroba diletakkan pada media agar yang telah ditanami mikoorganisme yang akan berdifusi pada media agar tersebut. Area jernih mengindikasikan adanya hambatan pertumbuhan suatu mikroorganisme oleh agen antimikroba pada permukaan media agar (Pratiwi, 2008). Sediaan gel Hand sanitizer dipilih dengan tujuan untuk 18 mengurangi efek yang akan terjadi pada pemakaian secara berulang pada sediaan hand sanitizer yang biasanya mengandung alcohol. 2.3 Hipotesis Formulasi kombinasi ekstrak daun pandan (Pandanus amaryllifolius) dan perasan buah jeruk Nipis (Citrus aurantifolia swingle) memiliki aktivitas antibakteri Staphillococus aureus. 19 BAB 3 METODE PENELITIAN 3.1 Waktu dan Tempat penelitian Penelitian dilakukan selama 4 bulan di Laboratorium Tekhnologi sediaan Farmasi dan Laboratorium Mikrobiologi Sekolah Tinggi Ilmu Kesehatan Bhakti Mandala Husada Slawi. 3.2 Alat dan Bahan Penelitian 3.2.1 Alat Alat yang digunakan dalam penelitian ini adalah alat-alat gelas (Phyrex), timbangan analitik (HH-DJ203A), oven (YNC-OV), blender (Philips), batang pengaduk (Phyrex), rotary evaporator, water bath (DSS), cawan porselen (Phyrex), jarum ose, Moisture balance (MB60), autoklaf (Alamerican), incubator (Memmert IN 55), mortar dan stamper, alumunium foil, lampu Bunsen, tali, pinset, kain kasa, kertas saring, batang L, kain flanel 3.2.2 Bahan Bahan yang dibutuhkan pada penelitian ini adalah daun pandan (Pandanus amaryllifolius) dan perasan buah jeruk nipis (Citrus aurantifolia swingle), etil asetat, eter, HCL 2N, FeCL3 1%, CMC-NA, Gliserin, Triethanolamin, Metil paraben, Aquadest, Nutrient Agar, Asam sulfat encer, bakteri Staphylococcus aureus. 21 20 3.3 Rancangan Penelitian 3.3.1 Variabel bebas Variabel bebas yang digunakan dalam penelitian ini adalah konsentrasi kombinasi ekstrak daun pandan dan perasan buah jeruk nipis. 3.3.2 Variabel terikat Variabel terikat pada penelitian ini adalah hasil zona hambat dan daya sebar sediaan gel handsanitizer. 3.3.3 Variabel terkendali Variabel terkendali dalam penelitian ini adalah tempat pengambilan sampel, suhu, maserasi (titik didih, sifat fisik, dan metode pembuatan sediaan gel). 3.4 Prosedur Penelitian Prosedur penelitian formulasi dan uji aktivitas sediaan kombinasi ekstrak daun pandan (Pandanus amaryllifolius) dan perasan buah jeruk nipis (Citrus aurantifolia swingle) sebagai handsanitizer meliputi: 3.4.1 Pengambilan Sampel Sampel yang digunakan dalam penelitian ini adalah ekstrak daun pandan (Pandanus amaryllifolius) dan perasan buah jeruk nipis (Citrus aurantifolia swingle) yang diambil dari daerah Procot Slawi Kabupaten Tegal. 3.4.2 Determinasi Tanaman Determinasi tanaman dilakukan di Laboratorium Bahan Alam Prodi Farmasi S1 STIKes Bhakti Mandala Husada Slawi. Determinasi tanaman dilakukan untuk memastikan kebenaran identitas dari tanaman yang akan diteliti. 21 3.4.3 Pembuatan Serbuk Simplisia Pembuatan simplisia yang pertama dilakukan adalah mengumpulkan bahan baku. Bahan baku yang digunakan dalam penelitian ini berasal dari simplisia nabati yaitu daun pandan (Pandanus amaryllifolius) dan perasan buah jeruk nipis (Citrus aurantifolia swingle) yang diambil dari daerah Procot Slawi Kabupaten Tegal. Daun pandan dan buah jeruk nipis yang dipilih adalah daun yang masih muda, berwarna hijau. Pengambilan sampel dipilih pada waktu pagi hari. Sedangkan pengambilan sampel buah yang dipilih adalah buah yang berwarna hujau kekuningan. Langkah selanjutnya sortasi basah yaitu dengan cara menyeleksi daun pandan dan buah jeruk nipis dengan cara dipisahkan dari kotoran yang menempel. Daun pandan dan buah jeruk nipis dicuci menggunakan air bersih yang mengalir, pencucian dilakukan sebanyak 3 kali sampai benar-benar bersih. Setelah dicuci, daun pandan dirajang, sedangkan jeruk nipis dipotong dan diambil air perasannya. Proses selanjutnya melakukan pengeringan simplisia terhadap daun pandan. Pengeringan dilakukan dengan menggunakan pengeringan oven dengan suhu 400 C. Setelah daun pandan kering dilanjutkan dengan proses penggilingan simplisia kering hingga menjadi serbuk simplisia. Serbuk yang diperoleh masing-masing disimpan dalam wadah bersih, kering dan tertutup rapat (Maryam et al., 2015). 3.4.4 Pembuatan Ekstrak Daun Pandan Metode yang dipilih adalah metode maserasi. Maserasi merupakan cara penyarian yang sederhana yang dilakukan dengan cara merendam 22 serbuk simplisia dalam cairan penyari/pelarut dengan beberapa kali pengocokan atau pengadukan pada temperatur ruangan (kamar). Maserasi bertujuan untuk menarik zat-zat berkhasiat yang tahan pemanasan maupun yang tidak tahan panas ( Anonim,2000). Metode maserasi dipilih karena lebih sederhana, tidak terlalu banyak menggunakan pelarut dan tidak menggunakan proses pemanasan. Proses ekstraksi dilakukan dengan merendam simplisisa dalam pelarut dengan perbandingan dan waktu tertentu. Selama perendaman dilakukan pengadukan sehingga ekstraksi dapat berlangsung secara optimal. Pelarut yang digunakan adalah etil asetat karena sifatnya semipolar yang volatil dan dapat melarutkan senyawa semi polar pada dinding sel seperti aglikon flavanoid, tidak beracun dan tidak higroskopis. Disamping itu, etil asetat digunakan sebagai pelarut karena etil asetat dapat menarik senyawa-senyawa yang memberikan aktivitas antibakteri, diantaranya flavanoid polihidroksi dan fenol (Harbone,1987). Filtrat yang diperoleh kemudian dipekatkan dengan cara diuapkan pada waterbath dengan tujuan untuk menghilangkan cairan penyari yang digunakan (Anonim,1979). Ekstrak kental yang diperoleh kemudian dihitung rendemen ekstraknya. Rendemen merupakan perbandingan ekstrak yang diperoleh dengan simplisia awal (Anonim, 2000). 3.4.5 Uji Parameter Ekstrak 1. Kadar Air Alat moisture analizer diset pada suhu 105oC, dan otomatis langsung memeriksa ketika alat ditutup. Sebanyak 200 mg ekstrak 23 dimasukkan dan diratakan dalam mangkok aluminium foil, kemudian dimasukkan kedalam alat. Pemanas halogen akan menyala dan memulai memanaskan ekstrak hingga bobot konstan, selama lampu halogen masih menyala maka berat ekstrak belum konstan, setelah lampu mati berat ekstrak sudah konstan dan dilayar akan ditampilkan hasil kadar air dari ekstrak. Berdasarkan literature presentase kadar air dalam suatu ekstrak yaitu kurang dari 10% yang bertujuan untuk menghindari mudahnya pertumbuhan jamur pada ekstrak (Anonim, 2000). 2. Kadar Abu Total Sebanyak 1 gram ekstrak ditimbang seksama (W1) dimasukkan dalam krus silikat yang sebelumnya telah dipijarkan dan ditimbang (W0). Setelah itu ekstrak dipijar dengan menggunakan tanur secara perlahan-lahan dengan suhu dinaikkan secara bertahap hingga 600 ± 250C hingga arang habis. Kemudian ditimbang hingga bobot tetap (W2). Berdasarkan literatur persentase kadar abu dalam suatu ekstrak tidak boleh lebih dari 10,2% (Anonim, 2000). Kadar Abu Total = 𝑤2−𝑤0 𝑤1 x 100% Keterangan : W0 = bobot cawan kosong (gram) W1 = bobot ekstrak awal (gram) W2 = bobot cawan + ekstrak setelah diabukan (gram) 3. Kadar abu tidak larut asam Abu yang diperoleh pada penetapan kadar abu dididihkan dengan 25 mL asam sulfat encer selama 5 menit, kumpulkan bagian 24 yang tidak larut asam. Kemudian disaring dengan kertas saring dan residunya dibilas dengan air panas. Abu yang tersaring dan kertas saringnya dimasukkan kembali dalam krus silikat yang sama. Setelah itu ekstrak dipijar dengan menggunakan tanur secara perlahan-lahan dengan suhu dinaikkan secara bertahap hingga 600 ± 250C hingga arang habis. Kemudian ditimbang hingga bobot tetap (W3) (Anonim, 2000). Berdasarkan literatur persentase kadar abu dalam suatu ekstrak tidak boleh lebih dari 1,7 % (Anonim, 2000). Kadar abu tidak larut asam = (𝑤3−𝑐)−𝑤0 𝑤1 x 100% Keterangan : W0 = bobot cawan kosong (gram) C = bobot kertas saring (gram) W1 = bobot ekstrak awal (gram) W3 = bobot cawan + abu yang tidak larut asam (gram) 3.4.6 Uji Skrining Fitokimia 1. Uji Flavonoid Uji Flavonoid dilakukan dengan metode Wilstater, dilakukan dengan cara, larutan ekstrak daun pandan wangi ditambahkan sedikit serbuk Mg dan 1 ml HCl pekat, kemudian diocok-kocok. Terbentuknya endapan orange, mengindikasikan adanya senyawa falvonoid (Wahyuni et al., 2018) 2. Uji Saponin Uji Saponin, dilakukan menggunakan metode forth, dengan cara memasukkan 1 mL ekstrak daun pandan kedalam tabung 25 reaksi, lalu tambahkan 1 mL akuades dan dikocok selama 30 detik. Apabila terbentuk busa, tidak hilang selama 30 detik maka menunjukkan adanya saponin (Wahyuni et al., 2018) 3. Uji Tanin Sebanyak 20 mg serbuk simplisia yang telah dihaluskan, ditambah etanol hingga serbuk simplisia terendam semuanya. Kemudian sebanyak 1 mL larutan dipindahkan kedalam tabung reaksi dan ditambahkan 2-3 tetes larutan FeCl3 1%. Hasil positif ditunjukkan dengan terbentuknya warna hitam kebiruan atau hijau (Sangi et al., 2008). 4. Uji Polifenol Sebanyak 1 gram daun pandan segar, simplisia dan ekstrak etanol daun pandan dipanaskan dengan air 10 ml selama 10 menit dalam penangas air mendidih, disaring panas-panas kemudian didinginkan dan ditambah FeCL3 3 Tetes adanya fenol ditunjukan dengan adanya warna hijau kehitaman ( Dasopang et al, 2016) 3.5 Formulasi Sediaan Gel Tabel 3.1 Formulasi Sediaan Gel Hand sanitizer Kombinasi Ekstrak Daun pandan wangi (Pandanus amaryllifolius Roxb.) dan perasan buah jeruk nipis (Citrus aurantifolia s.) Bahan F1 F2 F3 F4 F5 Ekstrak Daun Pandan Perasan Buah jeruk 10% - 5% 10% 15% Kontrol (-) 0 - 40% 20% 30% 40% 0 26 CMC Na Gliserin 3.5% 10% 3.5% 10% 3.5% 10% 3.5% 10% 3.5% 10% 3.5% 10% TEA 2.5% 2.5% 2.5% 2.5% 2.5% 2.5% Metil Paraben 0.2% 0.2% 0.2% 0.2% 0.2% 0.2% Aquadest Ad Ad Ad Ad Ad Ad 100% 100% 100% 100% 100% 100% 3.5.1 Uraian Bahan 1. CMC-Na Nama lain Pemerian : Selulosa; Karboksimetil eter : Serbuk granul, berwarna putih, tidak berbau dan tidak berasa serta bersifat higroskopis. Kelarutan : Mudah terdispersi dalam air membentuk larutan koloidal, tidak larut dalam etanol, eter dan pelarut lain. pH antara 6,5-8,5. Dapat larut dalam air dingin maupun air panas. Stabilitas : Larutan CMC-Na dalam air stabil terhadap suhu dan stabil dalam waktu lama pada suhu 1000C tanpa mengalami koagulasi. Penyimpanan : Disimpan dalam wadah kedap udara. Kadar lazim : 3-6% Kadar terpilih : 1,5% Fungsi : Basis gel (Rowe et al., 2009). 27 2. Propilenglikol Nama lain Pemerian : TEA : Cairan kental, berwarna kuning pucat hingga tidak berwarna, agak berbau amoniak. Kelarutan : Mudah larut dalam benzene dan etil eter; larut dalam aseton, karbon tetraklorida, etanol dan air. Stabilitas : Stabil pada wadah tertutup, stabil bila dicampur dengan etanol 95%, gliserin dan air. OTT : Bereaksi dengan asam mineral membentuk kristal garam dan eter, dengan asam lemak tinggi larut dalam air memiliki karakteristik sabun, bereaksi dengan tembaga membentuk kompleks garam. Penyimpanan : Pada wadah tertutup rapat dan terlindung dari cahaya diletakkan pada tempat yang sejuk dan kering. Kadar terpilih : 0,6% Fungsi : Emulgator 3. Metil Paraben Sinonim : Methylis Parabenum, Nipagin Pemerian : Serbuk hablur putih, tidak berbau, tidak mempunyai rasa tebal. Kelarutan : Larut dalam 500 bagian air, dalam 2 bagian air mendidih dan etanol 95% dan 3 bagian aseton, mudah larut dalam eter dan 28 larut dalam larutan alkali hidroksida, larut dalam 60 bagian gliserol panas dan dalam 4 bagian minyak lemak nabati panas, jika diinginkan larutan tetap jernih. Stabilitas : Larutan metil paraben pH 3-6 dapat disterilkan dengan autoklaf pada suhu 1200C selama 20 menit, tanpa penguraian. Larutan ini stabil selama kurang lebih 4 tahun dalam suhu kamar, sedangkan pada pH 8 atau lebih dapat meningkatkan laju hidrolisis. OTT : Surfaktan non-ionik seperti polisorbat 80, bentonit, magnesium trisilikat, talk, tragakan, dan sodium algina. Penyimpanan : Disimpan dalam wadah tertutup rapat Kadar lazim : 0,02-3% untuk aktivitas antimikroba yang luas Kadar terpilih : 0,2% Fungsi : Pengawet (Hardwood, 2006). 4. Gliserin Sinonim : Glycerine; Glycerolum; Gliserol Pemerian : Cairan jernih, tidak berwarna, tidak berbau, kental, cairan higroskopis, memiliki rasa manis, kurang lebih 0,6 kali lebih manis darisukrosa. Kelarutan : Larut dalam air, dan dengan etanol (95%) P, praktis tidak larut dalam kloroform P, dalam eter P dan dalam minyak lemak. 29 Stabilitas : Gliserin bersifat higroskopis. Dapat terurai dengan pemanasan yang bisa menghasilkan akrolein yang beracun. Campuran gliserin dengan air, etanol 95% dan propilena glikol secara kimiawi stabil. Gliserin bisa mengkristal jika disimpan pada suhu rendah yang perlu dihangatkan sampai suhu 200C untuk mencairkannya. OTT : Gliserin bisa meledak jika bercampur dengan oksidator kuat seperti kromium trioksida, potasium klorat atau potasium permanganat. Adanya kontaminan besi bisa menggelapkan warna dari campuran yang terdiri dari fenol, salisilat dan tanin. Gliserin membentuk kompleks asam borat, asam gliseroborat yang merupakan asam yang lebih kuat dari asam borat. Penyimpanan : Wadah tertutup rapat Kadar lazim : Gliserin digunakan sebagai humektan dan emolien pada konsentrasi ≤ 30% dalam formula sediaan topikal dan kosmetika. Kadar terpilih : 5% Fungsi : Pelembut (Hardwood, 2006). 5. Aquadest Pemerian : Cairan jernih tidak berwarna, tidak berbau,tidak berasa. Kelarutan : Larut dengan semua jenis larutan. 30 Stabilitas : Air merupakan salah satu bahan kimia yang stabil dalam bentuk fisik (es, air, dan uap). Air harus disimpan dalam wadah yang sesuai. Pada saat penyimpanan dan penggunaannya harus terlindungi `dari kontaminasi partikel-partikel ion dan bahan organik yang dapat menaikkan konduktivitas jumlah karbon organik. Serta harus terlindung dari partikel lain dan mikroorganisme yang dapat tumbuh dan merusak fungsi air. OTT : Dalam formula air dapat bereaksi dengan bahan tambahan lainnya yang mudah terhidrolisis. Penyimpanan : Dalam wadah tertutup baik Fungsi : Zat pelarut (Hardwood, 2006). 3.6 Pembuatan Sediaan Gel Hand Sanitizer Ekstrak daun Pandan (pandanus amaryllifolius) dan Perasan Buah Jeruk Nipis (Citrus aurantifolia) Pembuatan sediaan gel handsanitizer dilakukan dengan cara menimbang masing-masing bahan, kemudian dikembangkan CMC-Na dalam aquadest panas gerus cepat dalam mortir sampai terbentuk masa gel yang jernih. Setelah itu ditambahkan propilen glikol gerus sampai homogen. Basis gel yang telah terbentuk ditambahkan dengan metil paraben yang sudah dilarutkan dengan sedikit air panas dan diaduk, selanjutnya ditambahkan Ekstrak daun Pandan (Pandanus amaryllifolius R.) dan Perasan Buah Jeruk Nipis (Citrus aurantifolia S.) diaduk hingga homogen. Tambahkan aquadest hinga 30 mL diaduk sampai homogen, kemudian gel dilakukan uji aktivitas antibakteri, 31 evaluasi sifat fisik sediaan gel dan uji kesukaan terhadap panelis (Manus et al., 2016). 3.6.1 Pembuatan Media Nutrient Agar Media padat NA 9,5 g dilarutkan dalam aquadest steril 250 mL dan dipanaskan hingga melarut. Kemudian disterilisasi dengan autoclave 1210C selama 15-20 menit. Media yang telah steril dimasukkan ke dalam cawan petri di ruang LAF (Widyawati et.al., 2017). 3.6.2 Pembiakan bakteri Staphylococcus aureus Pembiakan bakteri dilakukan dengan metode tuang. Diambil satu gores bakteri Staphylococcus aureus menggunakan jarum ose, kemudian dilarutkan dengan aquades steril dalam tabung reaksi. Diambil 0,1 mL suspensi, tuangkan pada media agar, lalu ratakan dengan batang L. Kemudian diinkubasi pada suhu 370 C selama 24 jam (Ngajow, Abidjulu, & Kamu, 2013). 3.6.3 Uji Aktivitas Antibakteri Alat-alat yang akan digunakan dalam penelitian uji aktivitas antibakteri harus disterilkan terlebih dahulu sebelum digunakan. Alatalat gelas disterilkan didalam oven. Media disterilkan di autoklaf pada suhu 1210C selama 15 menit. Jarum ose dan pinset disterilkan dengan menggunakan lampu bunsen (Dwidjoseputro, 1994). Pengujian dilakukan dengan metode difusi cakram. Kertas cakram dicelupkan dalam Gel yang akan uji sesuai konsentrasi selama 5 menit kemudian diletakkan diatas permukaan media nutrient agar yang berisi 32 bakteri. Untuk kontrol negatif, kertas cakram dicelupkan dalam sediaan tanpa ektrak daun pandan dan perasan buah jeruk nipis. Masing-masing cawan petri diinkubasi pada suhu 370 C selama 24 jam. Aktivitas antiseptik diamati berdasarkan pengukuran diameter daerah hambat atau daerah bening yang terbentuk di sekeliling kertas cakram. Pengujian dilakukan 3 kali pengulangan (Mulyadi et al., 2013). Zona hambat yang dihasilkan dari masing-masing perlakuan memiliki diameter yang berbeda-beda dan bentuk yang tidak beraturan. Oleh karena itu, pengamatan zona hambat dilakukan dengan mengukur diameter horizontal dan diameter vertikal dari zona yang terbentuk di sekitar cakram. Kedua diameter tersebut dimasukan ke dalam rumus untuk mencari nilai rata-rata luas zona hambat (Torar et al., 2015). Diameter zona hambat diukur dengan rumus: Gambar 3.1 Pengukuran Diameter Zona Hambat. (Kandoli et al, 2016) Zona Hambat = Keterangan : DV: Diameter vertikal DC: Diameter cakram (𝐷𝑉−𝐷𝐶)+(𝐷𝐻−𝐷𝐶) 2 33 DH: Diameter horizontal (Torar et al., 2015) 3.7 Uji Sediaan Fisik Gel Hand Sanitizer 1. Uji Organoleptis Uji organoleptis dilakukan dengan mengamati bentuk, warna, bau dan tekstur sediaan gel hand sanitizer yang dihasilkan (Anief, 1997). 2. Uji Homogenitas Pemeriksaan homogenitas sediaan dapat dilakukan dengan cara, sediaan dioleskan pada dua keping kaca atau bahan transparan lain yang cocok, sediaan harus menunjukan susunan yang homogen dan tidak terlihat adanya butiran kasar (Anonim, 2000). 3. Uji Daya Sebar Pengujian daya sebar dilakukan dengan cara sebanyak 0,5 gram sampel gel diletakkan diatas kaca arloji berdiameter 15 cm, kaca lainnya diletakkan diatasnya dan dibiarkan selama 1 menit. Diameter sebar gel diukur. Setelah itu ditambahkan 150 gram beban tambahan dan didiamkan selama 1 menit lalu diukur diameter yang konstan. Daya sebar 5-7 cm menunjukkan konsistensi semisolid yang sangat nyaman dalam penggunaan (Garg et al., 2002). 4. Uji pH Uji pH dilakukan dengan cara mengoleskan sedikit sediaan gel pada stik pH, lalu mencocokkan warna stik yang dihasilkan dengan melihat indikator pH. pH sediaan gel sesuai dengan pH kulit yaitu antara 4,5-7,0 (Tranggono, 2007). 6. Uji Kesukaan 34 Evaluasi sediaan gel dilakukan terhadap formula yang dianggap peneliti memenuhi sifat fisik dari gel dan sebagai pembanding digunakan gel antiseptik tangan dipasaran. Pengujian dilakukan dengan metode kuesioner kepada 20 responden. Kuesioner tersebut diukur berdasarkan penilaian responden terhadap gel antiseptik tangan, meliputi warna, aroma, kesan tidak lengket ( Marya et al, 2014). 3.8 Analisis Data Analisis data yang diperoleh dari hasil penelitian merupakan data diameter zona hambat dan evaluasi sediaan pada masing-masing konsentrasi sediaan Hand sanitizer kombinasi ekstrak daun pandan (Pandanus amaryllifolius R.) dan perasan buah jeruk nipis (Citrus aurantifolia S.) yang memiliki aktivitas antibakter terhadap bakteri staphyllococus aureus menggunakan SPSS 22.0 for windows evaluasion version. 3.9 Jadwal Penelitian No Jenis penelitian 1 2 3 4 Pembuatan proposal Penelitian Analisis data Pembuatan laporan akhir Bulan Mar Apr Mei Jun Jul 35 DAFTAR PUSTAKA Anief, M. (1997). Ilmu meracik Obat. Yogyakarta: UGM. Anonim. (1979). Farmakope Indonesia Edisi Ketiga. Jakarta: Depkes RI. Anonim. (1995). Farmakope Indonesia Edisi IV. Jakarta: Depkes RI. Anonim. (2000). Parameter Standar Umum Ekstrak Tumbuhan Obat. Cetakan Pertama. Jakarta: Departemen Kesehatan RI. Anonim. (2008). Kumpulan kuliah Farmakologi Edisi 2. Jakarta: EGC. Ansel, Howard., C. (1989). Pengantar Bentuk Sediaan Farmasi. Edisi IV terjemahan Farida Ibrahim. Jakarta: Universitas Indonesia Press. Bonang, G. (1992). Mikrobiologi Untuk Profesi Kesehatan Edisi 16. Jakarta : Buku Kedokteran EGC. Dwidjoseputro, S. (1994). Sterilisasi. Jakarta: PT. Gramedia Pustaka Utama. Garg, A., D., Aggarwal, S., Garg, & A., K., Sigla. (2002). Spreading of Semisolid Formulation: An Update. Pharmaceutical Tecnology. September: 84-102. Harwood, R., J. (2006). In: Rowe et al. (eds.), Handbook of Pharmaceutical Excipients, Fifth Edition, Pharmaceutical Press, UK. Harborne, J., B. (1987). Metode Fitokimia Penuntun Cara Modern Menganalisis Tumbuhan. Penerbit ITB. Bandung Jawetz, Melnick, Adelberg. (2008). Mikrobiologi Kedokteran. (H. Hartanto, C. Rachman, A. Dimanti, A. Diani). Jakarta : EG Lachman, L., Lieberman, A., H., Kanig, L., J. (1994). Teori dan praktek farmasi Industri. Edisi III. Jakarta: UI Press Manus, N., Yamlean, V., Y., P & Kojong, S., N. (2016). Formulasi Sediaan Gel Minyak Atsiri Daun Sereh (Cymbopogon citratus) Sebagai Antiseptik Tangan. UNSRAT Manado. Vol.5 No.3. ISSN 2302-2493. Marya. (2014). Formulasi Sediaan Gel Antiseptik Tangan Minyak Atsiri Jeruk Lemon (citrus limon (l) burm. f) Dengan Basis Karbopol Dan Aktivitas Antibakteri Terhadap Staphylococcus aureus. Yogyakarta : UGM Maryam, S., Juniasti, S., & Kosman, R. (2015). Uji Aktivitas Antibakteri Ekstrak Etanol Buah Belimbing Wuluh (Averrhoa Bilimbi L.). Universitas Muslim Indonesia. Vol.07 No. 01. ISSN: 2085-4714. Marliana, E. (2012). Aktivitas Antioksidan Ekstrak Etanol Daun Andong (Cordyline fruticosa L) A. Cheval. Mulawarman Scientifie, 11(1). 36 Melisa, S. (2013). Formulasi Sediaan Gel Hand Sanitizer Dengan Bahan Aktif Triklosan 0,5% Dan 1%. Universitas Surabaya Vol.2 No.1 2(1), 1–14. Mulyadi, M., Wuryanti & Purbowatiningrum, R., S. (2013). Konsentrasi Hambat Minimum (KHM) Kadar Sampel Alang-Alang (Imperata cylindrical) Dalam Etanol Melalui Metode Difusi Cakram. Universitas Diponegoro Vol. 1 (1), Hal 35-42. Muntiaha, C., H., Miryam, Yamlean, Y., V., P., & Lolo, A., W. (2014). Uji Aktivitas Sediaan Krim Getah Jarak Cina (Jatropha mutifida L.) Untuk Pengobatan Luka Sayat Yang Terinfeksi Bakteri Staphylococcus aureus Pada Kelinci (Orytolaguscuniculus). Jurnal Ilmiah Farmasi. Vol.3 (3). Murhadi, et all. (2007). Aktivitas Antibakteri Ekstrak Daun Salam (Syzygium polyantha) dan Daun Pandan (Pandanus amaryllifolius). Jurnal Teknologi dan Industri Pangan Vol. XVIII No. 1. Ngajow, M., Abidjulu, J., & Kamu, V. S. (2013). Pengaruh Antibakteri Ekstrak Kulit Batang Matoa (Pometia pinnata) terhadap Bakteri Staphylococcus aureus secara In vitro. Jurnal MIPA, 2(2), 128. https://doi.org/10.35799/jm.2.2.2013.3121 Pelczar, M. dan Chan, E.C.S. (2005). Dasar-dasar Mikrobiologi, Jilid 2. (Ranta Siri Hadioetomo, Teja Imas, S. Sutarmi Tjitrosomo dan Sri Lestari Angka). Jakarta : UI Press. Pierce A, neil R. Borley.(2007).At a Glance Ilmu Bedah.edisi ketiga. Jakarta: Erlangga. Pratiwi, Sylvia T. (2008). Mikrobiologi Farmasi. Yogyakarta : Penerbit Erlangga. Prameswari, O. M. dan S. B. Widjanarko. (2014). Uji Efek Ekstrak Air Daun Pandan Wangi terhadap Penurunan Kadar Glukosa Darah dan Histopatologi Tikus Diabetes Mellitus. J. Pangan dan Agroindustri. 2(2):16-27 Prastiwi, S. S., & Ferdiansyah, F. (2013). Farmaka daun jeruk nipis. 15, 1–8. Rahayu, S. E., & Handayani, S. (2008). Keanekaragaman Morfologi Dan Anatomi Pandanus (Pandanaceae) Di Jawa Barat. Vis Vitalis, 01(2), 29–44. Razak, A., Djamal, A., & Revilla, G. (2013). Artikel Penelitian Uji Daya Hambat Air Perasan Buah Jeruk Nipis ( Citrus aurantifolia s .) Terhadap Pertumbuhan Bakteri Staphylococcus Aureus Secara In Vitro. 2(1), 5–8. Retnosari, Dewi Isadiartuti, (2006). Studi efektivitas sediaan gel antiseptik tangan ekstrak daun sirih (Piper betle Linn.). Majalah Farmasi Indonesia, 17(4), 163169 Rohmawati, E. (1995). Skrining kandungan kimia daun pandan serta isolasi dan identifikasi alkaloidnya. Aspirator Hal: 85-91 37 Rowe, R. et al. (2009). Handbook of Pharmaceutical Excipients, Fifth Edition, Pharmaceutical Press, UK. Sangi, M., M. R. J. Runtuwene., H. E. I. Simbala dan V. M. A. Makang. (2008). Analisa Fitokimia Tumbuhan Obat Di Minahasa Utara. Jurnal Chemmical Prog. Vol 01 No 01. Sarwono, B. (2001). Khasiat & Manfaat Jeruk Nipis. Depok: AgroMedia Pustaka. Setiowati, FK., Nugrahaningsih. (2015). Uji aktivitas antibakteri sediaan salep kombinasi gelatin dari kulit kaki ayam dan ekstrak daun binahong terhadap bakteri Staphyllococus aureus. Vol 1(2): 103-106. Sherwood, L. (2014). Fisiologi manusia : dari sel ke sistem. Edisi 8. Jakarta: EGC Standar Nasional Indonesia (SNI). SNI-01-2712-2-1992. Standar Proses Pengalenga. Dewan Standarisasi. Indonesia, Jakarta Syamsuni, H. (2006). Farmasetika Dasar dan Hitungan Farmasi. EGC, Jakarta. Todar, K. PhD. (2008). Staphylococcus aureus and Staphylococcal disease. Todar’s online text book of bacteriology (http://textbookofbacteriology. net/staph.html)(Diakses pada 15 Oktober 2018). Torar S., Benedictus S., Bernat S. (2015). Uji Daya Hambat Ekstrak Rumput Laut Gracilralia SP Terhadap Pertumbuhan Bakteri Staphylococcus aureus. Jurnal e-GiGi (eG), Vol. 3 (1). Tranggono IR, Latifah. (2007). Buku Pegangan Ilmu Pengetahuan Kosmetika. Jakarta: PT. Gramedia Pustaka Utama. Voight, R. (1994). Buku Pelajaran Teknologi Farmasi. Terjemahan : S. Noerono. Gadjah Mada University Press. Indonesia. Wahyuni, I., Erina., Fakhrurazi. (2018). UJI DAYA HAMBAT EKSTRAK DAUN PANDAN WANGI ( Pandanus amaryllifolius roxb ) TERHADAP BAKTERI Escherichia coli dan Salmonella sp . 2(3), 242–254. Widyawati Lili, Mustariani. A. Y. Baiq, dan Purmafitriah En. (2017). Formulasi Sediaan Gel Hand Sanitizer Ekstrak Etanol Daun Sirsak (Annona muricata Linn.) Sebagai Antibakteri Terhadap Staphylococcus aureus. Jurnal Farmasetis, Vol. 6 (2). Wijayakusuma, H. (2008). Ramuan lengkap herbal taklukan penyakit. Jakarta: Pustaka bunda.