1 BAB 1 PENDAHULUAN A. Latar Belakang Sistem

BAB 1
PENDAHULUAN
A. Latar Belakang
Sistem penghantaran obat yang tertarget merupakan salah satu strategi
pengobatan yang banyak dikembangkan akhir-akhir ini karena dapat langsung
menghantarkan obat menuju daerah aksi secara spesifik ( Hillary dkk., 2001).
Salah satu teknologi yang banyak digunakan dalam penghantaran obat tertarget
adalah nanopartikel. Teknologi nanopartikel mempunyai kelebihan dapat
dikonjugasikan dengan berbagai molekul pendukung tambahan seperti protein
pembawa sehingga menghasilkan sistem baru dengan spesifikasi yang lebih
lengkap (Martien dkk., 2012). Konjugasi dengan protein pembawa merupakan
tahap yang sangat penting karena akan menentukan keberhasilan dari sistem
penghantaran obat. Nanopartikel polimerik atau yang dilapisi dengan polimer
hidrofilik sangat potensial untuk digunakan karena kemampuannya sebagai
pembawa DNA dalam terapi gen, dan kemampuannya untuk menghantarkan
protein, peptida dan gen (Larger, 2000; Bhadra dkk., 2000; Kommareddy dkk.,
2005; Lee dan kim, 2005).
Pada penelitian
sebelumnya telah dilakukan konjugasi antara polimer
pektin dengan BSA menggunakan katalis EDAC sebagai acuan untuk
pengembangan nanopartikel. Untuk identifikasi adanya konjugasi telah berhasil
dilakukan dengan analisis kualitatif menggunakan metode Native-PAGE (Nondenaturing Polyacrylamide Gel Electrophoresis) yang akan memisahkan protein
1
2
berdasarkan bobot molekulnya (Juhairiyah, 2015). Metode native-PAGE
kemungkinan juga bisa memisahkan konjugasi nanopartikel-MJ-30 dengan BSA.
Pengaruh konsentrasi gel poliakrilamid yang digunakan dan waktu
pengembangan terhadap pita elektroforesis yang dihasilkan perlu dilakukan
penelitian lebih lanjut. Identifikasi konjugasi pektin dengan BSA dengan waktu
pengembangan yang terbatas tidak akan bisa memperoleh hasil pemisahan yang
baik karena sampel konjugasi belum turun dengan sempurna dan belum memasuki
gel poliakrilamid
dengan baik (Juhairiyah, 2015). Pada elektroforesis
nanopartikel MJ-C dengan polimer kitosan rantai pendek dan pektin metilasi
rendah terkonjugasi anti-EpCAM tidak ada pita yang bisa terlihat karena sampel
tertahan di atas dan tidak bisa melewati gel karena ukuran gel yang terlalu kecil
dan waktu pengembangan yang masih kurang (Kristiani, 2015).
Waktu pengembangan dan daya listrik yang digunakan juga akan
mempengaruhi pita protein karena menghasilkan panas dengan istilah Joule heat
yang
akan
mengakibatkan
terjadinya
distorsi
pita
hasil
elektroforesis,
meningkatkan proses difusi, inaktivasi enzim, dan denaturasi protein. Analisis gel
dengan daya listrik yang kecil dan waktu yang lebih lama akan mengurangi
dampak yang ditimbulkan oleh joule heat (Garvin, 2008) selain itu penggunaan
daya listrik yang tinggi dapat menyebabkan protein yang mempunyai bobot
molekul besar bermigrasi dengan tidak sempurna.
Oleh karena itu, pada penelitian ini akan dilihat pengaruh variasi
konsentrasi gel dan waktu pengembangan elektroforesis sehingga didapatkan
kondisi optimum yang bisa mengidentifikasi konjugasi antara nanopartikel MJ-30
3
menggunakan alginat sebagai polimer dengan protein BSA. Hasil akhir penelitian
ini diharapkan dapat dijadikan acuan dan pedoman dalam pengembangan obat
dengan sistem penghantaran yang tertarget.
B. Rumusan Masalah
1. Bagaimanakah pengaruh perbedaan konsentrasi gel poliakrilamid pada
identifikasi konjugasi BSA dengan nanopartikel MJ-30 ?
2. Bagaimanakah pengaruh waktu pengembangan terhadap hasil elektroforesis
pada identifikasi konjugasi BSA dengan nanopartikel MJ-30 ?
C. Tujuan penelitian
1. Tujuan Umum
Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui pengaruh konsentrasi gel
poliakrilamid dan waktu pengembangan terhadap pita hasil elektroforesis
sehingga didapatkan kondisi yang optimum untuk identifikasi biokonjugasi antara
nanopartikel MJ- 30 dengan BSA.
2. Tujuan Khusus
a. Melakukan optimasi konsentrasi gel poliakrilamid untuk mengidentifikasi
hasil reaksi biokonjugasi BSA dengan nanopartikel MJ-30 secara kualitatif.
b. Melakukan
optimasi
waktu
pengembangan
elektroforesis
diperoleh pita pemisahan protein yang bisa dengan dianalisis baik.
sehingga
4
D. Manfaat Penelitian
Penelitian ini
diharapkan bisa memberikan informasi
mengenai
konsentrasi dan waktu pengembangan gel elektroforesis yang optimum sehingga
memudahkan untuk mengidentifikasi nanopartikel MJ-30 yang terkonjugasi BSA
yang nantinya dapat digunakan pada inovasi baru dalam pengobatan kanker yang
lebih efektif dan aman.
E. Tinjauan Pustaka
1.
Biokonjugasi
Konjugasi
(Crosslinking)
merupakan
suatu
proses
kimia
untuk
menggabungkan dua atau lebih molekul dengan suatu ikatan kovalen. Disebut
sebagai biokonjugasi jika molekul yang digabungkan berupa biomolekul
(Hayworth, 2014.). teknik ini dapat diaplikasikan untuk membuat suatu sistem
termodifikasi berbasis protein yang berfungsi untuk deteksi, assay tracking atau
mentarget suatu molekul biologi (Hermanson, 1996).
Biokonjugasi antara suatu molekul sintetik dengan suatu protein memiliki
peranan yang besar dalam dunia kesehatan, misal pada pengembangan suatu agen
terapi berbasis protein dengan menggabungkan suatu polimer atau suatu molekul
obat pada protein. Gugus fungsional protein yang bisa dijadikan target dalam
biokonjugasi adalah amina primer (-NH2), karboksilat (-COOH), sulfhydryl (-SH)
dan karbonil (-CHO). Tujuan dari konjugasi ini adalah untuk menaikkan sifat
farmakokinetik dari komponen terapinya (Witus, 2012). Teknik biokonjugasi
tergantung pada gugus fungsional reaktif dari reagen crosslinking maupun dari
5
molekul target. Jika salah satu tidak memiliki gugus fungsional reaktif, atau jika
keduanya tidak kompatibel maka reaksi konjugasi tidak akan berhasil
(Hermanson, 1996). Sehingga jika ingin mendapatkan hasil reaksi yang optimal,
perlu dilakukan pemilihan antara reagen crosslinking dan molekul target yang
tepat. Reagen biokonjugasi memiliki gugus fungsi yang reaktif secara spontan dan
selektif untuk terikat pada gugus fungsional spesifik molekul target. Sebagian
lainnya tidak langsung dapat menjadi crosslinker, tetapi ada yang akan
membentuk intermediet aktif (Hermanson, 1996).
Selain bergantung dari
gugus
fungsional
reaktif
yang bereaksi,
keberhasilan konjugasi juga ditentukan oleh kondisi sistem saat dilakukan
konjugasi, misalkan pH medium, waktu dan suhu reaksi, serta konsentrasi dari
pereaksi yang digunakan harus sesuai dengan reaksi yang dilakukan agar reaksi
biokonjugasi berjalan dengan baik. Jika kondisi reaksi optimum dalam konjugasi
belum diketahui secara pasti, maka perlu dilakukan optimasi untuk memperoleh
hasil konjugasi yang optimum (Wong, 2002)
2.
Gel Elektroforesis
Gel elektroforesis merupakan metode yang biasa digunakan pada analisis
dan purifikasi protein karena bisa memberikan informasi berat molekul dan
muatan protein, struktur sub unit protein, dan kemurnian pada penelitian khusus
preparasi protein. Metode gel elektroforesis mudah untuk digunakan dan sangat
reprodusibel. Analisis kualitatif pada kompleks campuran protein merupakan
analisis yang sering menggunakan gel elektroforesis (Garvin, 2008). Ada dua
6
teknik dalam pemisahan protein menggunakan gel poliakrilamid elektroforesis,
yaitu :
a.
SDS-PAGE Protein
SDS-PAGE meupakan metode yang secara luas digunakan untuk
menganalisis protein secara kualitatif berdasasarkan ukurannya dan dapat
digunakan pula untuk menentukan berat molekul relatif suatu protein (Walker,
2002). Dalam metode ini, sampel bufer yang digunakan mengandung βmerkaptoetanol dan SDS. SDS (Sodium Dodecyl sulfat) dengan struktur kimia
CH3-[CH2]10-CH2OSO3-Na+ merupakan suatu deterjen anionik yang memiliki
ujung hidrofobik pada bagian dodesil, dan bagian yang sangat bermuatan pada
gugus sulfatnya. SDS akan terikat kuat pada bagian hidrofobik asam amino yang
menentukan konformasi 3D protein. Akibat terikat oleh SDS maka struktur
globular protein akan terdenaturasi total menjadi protein yang linear (Anonim,
2016). Struktur linear ini menjadikan protein kehilangan muatan native-nya dan
menjadi bermuatan negatif. Akibat perlakuan tersebut tidak ada perbedaan muatan
dan konformasi antar protein. Sedangkan merkaptoethanol digunakan untuk
memutus ikatan disulfida yang membentuk struktur tersier suatu protein (Walker,
2002).
b.
Native-PAGE Protein
Native-PAGE digunakan jika ingin mempertahankan bentuk
native
protein yang dapat digunakan untuk mengidentifikasi aktivitas biologi misal,
aktivitas enzim, ikatan reseptor, ikatan antibodi dan lain sebagainya. Pada tipe
7
native, tidak digunakan SDS maupun agen pereduksi lainnya seperti
merkaptoetanol pada saat preparasi gel elektroforesis, loading bufer dan running
bufer, selain itu pemanasan sampel juga tidak diperlukan (Walker, 2002).
Migrasi protein melewati gel elektoforesis menuju anoda dipengaruhi oleh
berbagai macam faktor seperti, ukuran molekul, bentuk dan muatan native dari
protein itu sendiri. Oleh karena itu resolusi dari Native-PAGE tidak sebaik pada
SDS-PAGE, namun teknik ini sangat bermanfaat jika ingin mempertahankan
struktur native protein selama analisis (Smet dkk.,2006) .
Titik isoelektrik atau isoelectric point dan electrophoretic mobilitiy
merupakan dua sifat fisika dari protein yang sangat berpengaruh pada
elektroforesis.
electrophoretic
mobilitiy
atau
kecepatan
migrasi
protein
bergantung pada muatan, ukuran, dan bentuk sedangkan titik isoelektrik hanya
bergantung pada muatan protein (Garfin,2003).
Protein merupakan molekul amfoter karena bisa bermuatan positif,
negatif, atau tidak bermuatan yang dipengaruhi oleh pH lingkungannya. Muatan
native protein dapat dipengaruhi oleh pH gel. Jika pH gel lebih kecil dari titik
isoelektrik (pI) protein sampel, maka akan menghasilkan muatan positif pada
protein, dan jika di atas pI protein maka akan memberikan muatan akhir negatif.
Protein sampel harus memiliki pI < 7,0 agar memiliki muatan negatif dan dapat
menuju anoda. Secara umum, pada pH 2,0 hingga 4,0 maka protein akan
bermuatan positif, dan akan bermuatan negatif pada pH diatas 8,0. Oleh karena itu
pemilihan pH yang cocok sangat penting untuk memastikan bahwa protein yang
kita
inginkan
dapat
bermigrasi
dalam
gel
(Gallagher,
1999).
8
Komponen- komponen yang penting dalamelektroforesis :
a)
Konsentrasi gel poliakrilamid
Gel merupakan komponen kunci dalam sistem elektroforesis. Gel akan
menentukan kecepatan migrasi protein dan menahan protein selama proses
elektroforesis berlangsung sampai bisa diwarnai untuk visualisasi. Gel
poliakrilamid merupakan metode umum digunakan untuk protein. Sedangkan gel
agarosa digunakan untuk memisahkan protein yang berukuran besar dari 500 kDa
dan untuk imunoelektroforesis. Gel poliakrilamid cocok digunakan untuk
memisahkan protein karena beberapa hal yaitu ukuran pori gel bisa diatur sesuai
dengan ukuran protein, reaksi polimerisasi gel mudah terjadi, gel poliakrilamid
bersifat hidrofilik serta transparan pada gelombang cahaya diatas 250 nm dan
tidak berikatan dengan pewarna protein.
Gel poliakrilamid merupakan hasil polimerasi dari monomer akrilamid
dengan adanya N,N’-methylene-bis-acrylamide (bis-akrilamid) yang berfungsi
sebagai pembentuk silang, dimana keduanya akan berpolimerasi dengan adanya
senyawa radikal (Gambar 1). Senyawa radikal yang biasanya digunakan adalah
amonium persulfat (APS). Untuk mendekomposisi APS agar menjadi senyawa
radikal dan menyetabilkannya, maka ditambahkan TEMED (N,N,N’,N’-tetrametil
etilendiamin). Ukuran pori gel sangat ditentukan oleh perbandingan jumlah
akrilamid dan bis-akrilamid. Polimerisasi pada gel sangat dipengaruhi oleh 3 hal
yaitu jmlah monomer dan bis akrilamid yang diberikan, suhu, dan kemurnian dari
reagen- reagen yang digunakan.
9
Gambar 1. Polimerasi akrilamid (Walker, 2002)
Untuk protein elektroforesis, ukuran pori gel sangat penting karena selama
proses elektroforesis berlangsung, protein bermigrasi melaui pori. Ukuran dari
pori gel sulit untuk diukur secara langsung. Tapi, bisa ditentukan secara
operasional berdasarkan batas ukuran protein yang bisa melewati pori gel (Garfin,
2003).
b) Bufer
Arus listrik pada sel elektroforesis sebagian besar dihantarkan melalui
ion- ion pada sistem bufer, protein hanya berperan kecil dalam penghantaran arus.
Bufer berfungsi untuk mensuplai arus yang dibawa oleh ion, menjaga pH yang
diinginkan, dan mencegah medium untuk kelebihan panas yang nantinya dapat
merusak protein yang akan dianalisis. Pada sistem native PAGE bufer juga
berfungsi untuk menjaga pH lingkungan yang diperlukan untuk aktivitas protein.
Sistem bufer diklasifikasikan menjadi continuous dan discontinuous tergantung
dari satu atau lebih bufer yang digunakan. Untuk sampel yang terdilusi akan
10
mendapatkan hasil yang lebih baik dengan menggunakan discontinuous bufer
sedangkan untuk sampel dengan konsentrasi protein yang tinggi bisa
menggunakan continuous bufer (Garfin, 2003).

Continuous bufer
Menggunakan pH yang konstan dan bufer yang sama pada gel, sampel,
dan elektroda. Ketika sampel dimasukkan pada gel, proses pemisahan akan
langsung terjadi.

Discontinuous bufer
Discontinuous bufer digunakan untuk mendapatkaan resolusi yang tinggi
dalam pemisahan gel. Terdapat dua macam gel yang digunakan dalam
pemisahan protein menggunakan gel poliakrilamid yaitu gel penumpuk
(stacking gel) dan gel pemisah (separating gel). Gel pemisah digunakan
untuk memisahkan protein berdasarkan bobot molekulnya. Ukuran pori
gel pemisah dapat bervariasi sesuai dengan range ukuran protein yang
ingin dipisahkan. Stacking gel atau gel penumpuk berfungsi untuk tempat
loading sampel atau ruang pembatas antar sampel. Ukuran pori gel pada
bagian ini sangat besar yaitu sekitar 4% dengan tujuan agar protein dapat
bermigrasi dengan mudah (Walker, 2002).
c)
Pertimbangan sumber daya listrik
Digunakan untuk desain elektroforesis yang akan mengontrol kecepatan
migrasi protein atau elektroforetik. Voltase tetap, arus tetap, atau sumber daya
listrik tetap dapat digunakan. Pemilihan sumber daya listrik didasari oleh
kemampuan dari bejana elektroforesis untuk menstabilkan panas akibat arus listrik
11
yang digunakan. Panas yang ditimbulkan akibat arus listrik selama proses
elektroforesis dinamakan joule heat. Joule heat akan mengakibatkan terjadinya
distorsi pita hasil elektroforesis, meningkatkan proses difusi, inaktivasi enzim, dan
denaturasi protein. Bejana elektroforesis yang baik akan mentransfer panas dari
gel ke lingkungannya sehingga efek yang tidak diinginkan bisa teratasi. Sel
vertikal biasanya tahan pada sumber daya listrik 10- 20 V/cm dan arus dengan
rentang 15- 25 mA/mm tebal gel (Garvin,2003).
d) Pewarnaan gel
Deteksi protein setelah elektroforesis umumnya menggunakan pewarna
organik atau silver. Silver staining sangat sensitif akan tetapi prosesnya lebih
rumit, reagen yang digunakan harus murni, dan menggunakan zat kimia yang
berbahaya. Untuk pewarna organik biasanya menggunakan Coomassie Brilliant
Blue. Coomassie Brilliant Blue akan membentuk ikatan yang kuat dengan protein
tapi bukan ikatan kovalen. Kebanyakan adalah kombinasi antara ikatan van der
Waals dengan interaksi elektrostatik.
Kompleks protein dan pewarna akan membentuk warna biru yang
terlihat pada membran atau gel karena muatan negatif dari bentuk anionik dari
pewarna. Molekul pewarna yang berikatan pada pita hasil elektroforesis
sebanding dengan jumlah protein yang ada pada pita. Struktur dari coomassie
seperti pada Gambar 2 memiliki gugus asam sulfonat yang mempunyai peranan
penting dalam pewarnaan protein karena akan bereaksi dengan gugus amina pada
protein.
12
Gambar 2. Struktur dari coomassie Brilliant Blue R250
3.
Ribosome Inactivating Protein (RIP) MJ- 30
Ribosome Inactivating Protein (RIP) merupakan sekelompok sitotoksin
yang memiliki aktivitas menghambat sintesis protein pada eukariotik sehingga
berpotensi untuk dikembangkan sebagai senyawa antikanker. RIP bersifat
merusak ribosom secara irreversible, dengan menghilangkan residu adenin dari
rRNA dan juga mendepurinasi asam nukleat lainnya. Penggunaan RIP sebagai
komponen konjugasi dengan antibodi atau sebagai imunotoksin (Stirpe, 2006).
RIP terdistribusi luas dalam tanaman tingkat tinggi. Kebanyakan spesies
tanaman yang mengandung RIP termasuk subdivisi angiospermae. Fraksi protein
dari daun M. jalapa L. diketahui mempunyai aktivitas untuk memotong DNA
superkoil dan aktivitas N-glikosidase. Aktivitas rRNA N-glikosidase ini
menyebabkan depurinasi adenin pada posisi 4324 dari 28S rRNA. Protein dari
akarnya sitotoksik terhadap sel HeLa, dan fraksi protein totalnya terbukti aktif
menginduksi apoptosis sel HeLa (Sudjadi dkk., 2007). Ekstrak daun, biji, dan akar
tanaman ini mengandung protein-protein sejenis RIP yang disebut Mirabilis
Antiviral Protein (MAP) dan MJ- 30 yang mempunyai efek sitotoksik terhadap sel
13
Hela (Kataoka dkk., 1992; Sudjadi dkk., 2007). Ribosom inactivating protein
(RIP) diisolasi dari daun Mirabilis jalapa dan dinamakan MJ-30 karena
mempunyai berat molekul 30 kD. MJ-30 memiliki efek sitotoksik terhadap sel
T47D dan sel siHa yang merupakan sel line kanker payudara dan kanker serviks.
Efek sitotoksik MJ-30 pada sel kanker lebih tinggi daripada sel normal (Ikawati
dkk., 2006).
4.
Bovine Serum Albumin (BSA)
Bovine serum albumin (BSA) sering digunakan sebagai model untuk studi
fisika-kimia protein karena merupakan polipeptida yang mudah tersedia (Carter &
Ho, 1994). BSA merupakan suatu protein globular yang tersusun dari dua puluh
asam amino esensial dalam struktur yang terdiri dari 583 unit (Peters, 1995). Berat
molekul (dikalkulasikan dari teknik yang berbeda) sekitar 66411 hingga 66700
Da, dan saat berada dalam larutan berat molekul yang dianggap paling benar
adalah 66500 Da (Peters, 1995; Gonzalez Flecha dkk, 2003).
BSA sangat mudah larut dalam air dan hanya dapat diendapkan
menggunakan garam netral yang memiliki konsentrasi tinggi seperti ammonium
sulfat. BSA sering digunakan sebagai penstabil untuk protein terlarut lainnya atau
enzim yang labil. Dalam aplikasi di bidang biokimia, BSA digunakan sebagai
Enzyme-Linked
Immunosorbent
Assay
(ELISA),
Immunoblots,
dan
Immunohistochemistry (IHC) (Rani, 2012). BSA juga dapat digunakan sebagai
standar pada kalibrasi protein untuk menentukan kuantitas protein lain dengan
menggunakan metode Lowry dan Bradford protein assay, dan sebagai blocking
14
agent pada Western blot (Patnam, 1975 & Rani, 2012). Pada penelitian ini BSA
digunakan sebagai protein model yang akan dikonjugasikan dengan permukaan
nanopartikel alginat.
BSA memiliki range Isoelektrik Point (pI) antara pH 4,7 sampai 5,2
(Kongraksawech dkk, 2007) dan transformasi konformasi proteinnya dipengaruhi
oleh perubahan pH (Gambar 3). Pada pH antara 4.5 dan 7,0 BSA berada pada
bentuk native (N). Pada pH 3.5 bentuk native (N) BSA akan berubah secara
reversible menjadi bentuk fast (F) yang mengakibatkan BSA bermigrasi secara
cepat pada gel elektroforesis. Pada pH 2,0 konformasi BSA menjadi bentuk
expanded (E) sehingga konformasinya menjadi lebih besar. Ketika pH lebih dari
7,0 hingga 9,0 bentuk N akan berubah menjadi bentuk basic (B) dan selanjutnya
menjadi bentuk E jika pH terus dinaikkan. Konformasi native (N) merupakan
bentuk paling kompak/padat, sedangkan bentuk expanded (E) merupakan struktur
yang paling terbuka (Foster, 1977; Michnik dkk., 2005; Yamasaki dkk., 1990).
Pada penelitian ini, nanopartikel MJ-30-BSA diformulasikan pada pH 4.5, 5.5,
dan pH 6.5 sehingga BSA berada pada bentuk native.
Gambar 3. Transformasi konformasi BSA yang dipengaruhi oleh perubahan pH (Foster,
1977; Michnik dkk., 2005; Yamasaki dkk., 1990)
15
5.
Alginat
Alginat merupakan senyawa polisakarida hasil ekstraksi dari kelompok
alga coklat atau Alginophyta. Alginat adalah garam dari asam alginat yang
mengandung ion natrium, kalsium atau kalium (Kadi dan Atmaja, 1988). Berat
molekul alginat adalah 32- 200 kDa, berhubungan erat dengan derajat polimerisasi
180- 930, nilai pK gugus karboksil adalah 3,4- 4,4.Alginat mempunyai kandungan
air yang tinggi disebabkan oleh pengaruh garam yang bersifat higroskopis.
Kandungan air dalam alginat bervariasi tergantung pada kelembaban relatif dari
lingkungannya (Yunizal,2004).
Alginat yang banyak dikenal adalah bentuk garam dari asam alginat yang
tersusun oleh asam D-mannuronat dan asam L-guluronat. Alginat merupakan
poliuronat yang mengandung asam ß-D-mannuronat (M) dan asam α-Lgulukoronat (G), dan kedua asam tersebut dihubungkan oleh ikatan pada atom C1
dan C4. Selain mengandung asam polimanuronat (MM) dan poliguluronat (GG),
juga mengandung kopolimer berganti (MG) (Gambar 4).
Poliguluronat
Polimanuronat
Kopolimer
berganti
Gambar 4 . struktur dan tipe polimer dari alginat ( Higham.,dkk)
16
Karakter dari alginat adalah :
a.
Kelarutan
Alginat bersifat larut air dalam bentuk garam alkali, magnesium,
ammonia atau amin (Belitz & Grosch, 2004). Alginat tidak larut air dalam bentuk
garam kalsium alginat atau asam alginat. Kelarutan alginat dan kemampuannya
mengikat air bergantung pada jumlah ion karboksilat, berat molekul dan pH.
Kemampuan mengikat air meningkat jika jumlah ion karboksilat semakin banyak
dan pada pH di bawah 3 terjadi pengendapan (McHugh, 2003).
b.
Pembentukan gel
Alginat yang larut dalam air membentuk gel pada larutan asam karena
adanya ion kalsium atau kation logam polivalen lainnya. Penggantian kation Na+
2+
lebih dari 35 % dengan kation Ca
akan menggantikan pergeseran molekul dan
2+
terbentuk struktur gel yang stabil. Secara kasar penambahan kation Ca
pada
konsentrasi rendah tidak menimbulkan perubahan shear dan membentuk gel,
2+
sedangkan jumlah Ca
yang tinggi menyebabkan perubahan shear yang tinggi
2+
dan membentuk gel kalsium alginat. Ketika ada crosslinker berupa Ca
maka
struktur alginat akan membentuk egg-box seperti yang bisa dilihat pada Gambar
5.
c.
Viskositas
Viskositas dari larutan alginat dipengaruhi oleh konsentrasi, pH, bobot
molekul, suhu dan adanya kation logam polivalen. Semakin tinggi konsentrasi
atau bobot molekul maka semakin tinggi viskositasnya (Chapman, 1970).
17
Viskositas larutan alginat akan menurun dengan pemanasan, meningkat lagi bila
didingankan kembali, kecuali dengan pemanasan pada suhu tinggi dan waktu
relatif lama akan mengakibatkan degradasi molekul dan menyebabkan penurunan
viskositas (Klose dan Glicksman, 1972). Pada kondisi larutan tanpa kation
barvalensi dua atau tiga atau dengan adanya bahan pengkelat, viskositas larutan
alginat rendah. Sebaliknya dengan penigkatan kation multivalen ( misalnya
kalsium) terjadi peningkatan viskositas yang bersifat paralel. Oleh karena itu,
viskositas larutan alginat dapat diatur sesuai keinginan. Proses freezing dan
2+
thawing Na- alginat yang mengandung ionCa dapat menghasilkan peningkatan
viskositas (Belitz & Grosch, 2004).
PAG dilarutkan
dalam air
Rantai
Alginat
Partikel
CaCO3
Fotolisis PAG oleh UV :
melepaskan H+
Gabungan alginat dan Ca2+
“egg-box”
Gambar 5. visualisasi UV pembentukan dari hidrogel alginat dengan menggunakan
crosslinking CaCO3. Sistem mengandung sodium alginat dan photoacid generator (PAG) yang
larut dalam air dan terdispersi dengan partikel CaCO3. (Javvaji.,dkk)
18
6.
Nanopartikel
Nanopartikel didefinisikan sebagai disperse partikulat atau partikel padat
dengan jarak ukuran 1 – 1000 nm. Obat dilarutkan, dijerat, dienkapsulasi, dan
diikat dalam matriks nanopartikel. Berdasarkan metode pembuatannya dapat
diperoleh nanopartikel, nanospheres, dan nanokapsul. Nanokapsul merupakan
sistem dimana obat berada dalam rongga yang dikelilingi oleh membran polimer
yang unik, sedangkan nanosphere merupakan sistem matriks dimana obat
terdispersi secara fisik dan secara merata. Nanopartikel polimerik terbiodegradasi
sering digunakan akhir-akhir ini, terutama yang dilapisi dengan polimer hidrofilik
digunakan sebagai alat penghantaran obat yang potensial karena kemampuannya
untuk bersirkulasi dalam waktu yang diperpanjang dalam organ target, sebagai
pembawa DNA dalam terapi gen, dan kemampuannya untuk menghantarkan
protein, peptida, dan gen (Larger, 2000; Bhadra dkk., 2000; Kommareddy dkk.,
2005).
Nanopartikel banyak diaplikasikan karena memiliki kelebihan yaitu dapat
melindungi senyawa terapeutik dari degradasi oleh berbagai macam senyawa
dalam tubuh, meningkatkan absorbsi obat yang berefek langsung pada
peningkatan bioavailabilitas, pelepasan obat dapat dikontrol, lebih dapat tertarget
pada sel spesifik, serta dapat menaikkan penetrasi intraseluler (Hu dkk., 2012;
Peer dkk., 2007, Mardiyati dkk., 2012). Nanopartikel dari bahan polimer alam
banyak digunakan pada sistem penghantaran obat karena bersifat biokompatibel,
biodegradabel dan non-toxic (Wilczewska dkk., 2012; Mardiyati dkk, 2012).
Liposom, solid lipid nanopartikel, dendrimer, polimer, silikon atau
19
material karbon, dan magnetic nanopartikel merupakan contoh dari nanocarrier
yang telah diuji sebagai drug delivery sytem (DDS) (Gambar 6).
Nanopartikel sebagai sistem pelepasan obat
Gambar 6. Jenis Nanocarrier yang digunakan sebagai drug delivery sistem (DDS)
(Wilczewska dkk., 2012).
Walaupun liposom telah digunakan sebagai pembawa potensial dengan
keuntungan yang unik seperti melindungi obat dari degradasi, bertarget ke tempat
aksi dan mengurangi efek toksik dan efek samping, namun penggunaannya
terbatas karena sifatnya yang bermasalah seperti efisiensi enkapsulasi yang
rendah, obat yang larut air mudah lepas dengan cepat dalam komponen darah, dan
stabilitas penyimpanan yang rendah sementara nanopartikel polimerik memiliki
beberapa
keuntungan
spesifik
dibandingkan
liposom.
Sebagai
contoh,
nanopartikel polimerik membantu meningkatkan stabilitas dari obat dan protein
dan menghasilkan sifat pelepasan terkontrol (Vila dkk .,2002; Mu dan Feng,
2003)
Biokonjugasi antara nanopartikel dengan suatu molekul penarget
(targeting agent) sebagai suatu sistem penghantaran obat tertarget merupakan
alternatif yang menarik. Nanopartikel yang telah termodifikasi menunjukkan
20
kenaikan efek terapi dibandingkan dengan tanpa konjugasi (Broyer dkk., 2011),
hal ini diakibatkan karena obat ditransportkan ke tempat aksi secara spesifik
sehingga dapat lebih efektif dan dapat mengurangi efek samping. Strategi
konjugasi menjadi faktor penting dalam keberhasilan pembuatan terapi yang
tertarget. Strategi pembuatan terletak pada pengikatan gugus aktif pada
permukaan nanopartikel dengan suatu molekul penarget (Wilczewska dkk., 2012).
Sistem penghantaran tertarget ini sering diaplikasikan pada pengobatan
kanker. Targeting agent dapat berupa protein (monoklonal antibodi dan fragmenfragmennya), asam nukleat, atau ligan lainnya (peptida, vitamin, karbohidrat)
(Peer dkk., 2007). Pada penelitian ini menggunakan nanopartikel dari alginat.
Yang secara umum mempunyai ukuran sekitar 10- 100 nm. Nanopartikel alginat
bisa membawa enzim, obat, dan senyawa kimia lainnya dengan cara dijerap di
dalam nanopartikel atau dengan menempelkan/konjugasi pada matriks dari
naopartikel (paques dkk.,2014). Berikut beberapa metode yang digunakan untuk
membentuk nanopartikel, yaitu :
a)
Gelasi ionik
Penyiapan nanopartikel dengan metode gelasi ionik pertama kali dilaporkan
oleh Calvo (1998) dan telah diuji dan dikembangkan secara luas (Janes dkk.,
2001; Pan dkk., 2002). Mekanisme pembentukan nanopartikel didasarkan pada
interaksi elektrostatik antara gugus amina alginat dan muatan negative kelompok
polianion seperti tripolifosfat.
b) Dispersi polimer
Metoda dispersi polimer terdiri dari dua cara yaitu :
21
1. Metode penguapan solven
Polimer dilarutkan ke dalam pelarut organik seperti diklorometan,
kloroform, atau etil asetat. Pelarut yang digunakan adalah pelarut yang
digunakan juga untuk melarutkan obat-obat yang hidrofobik. Campuran
polimer dan larutan obat kemudian dielmusikan ke dalam larutan berair
yang mengandung surfaktan atau emulsifying agent. Setelah terbentuk
emulsi yang stabil, pelarut organik diuapkan masing-masing dengan
pengurangan tekanan atau pengadukan terus-menerus. Ukuran partikel
yang terbentuk dipngaruhi oleh tipe dan konsentrasi stabilizer, kecepatan
pengadukan dan konsentrasi polimer (Kwon., 2001).
2. Metode difusi spontan
Dalam metode ini, air bercampur pelarut bersama dengan sejumlah kecil
air bercampur pelarut organik digunakan sebagai fase minyak. Karena
difusi spontan pelarut sebuah turbulensi antar muka yang dibuat antara 2
fase yang mengarah ke pembentukan partikel kecil. Konsentrasi air
bercampur pelarut meningkat, penurunan ukuran dapat dicapai.
c)
Metode polimerisasi monomer
Polimer dibuat dengan proses polimerisasi untuk membentu nanopartikel
dalam medium polimerisasi bersama dengan monomer, kemudian diinisiasi
dengan penambahan ion atau radikal bebas atau radiasi sinar berenergi seperti
sinar gamma, UV-Vis atau dengan menambahkan obat dalam polimer
nanopartikel yang sudah terbentuk sebelumnya supaya monomer saling berikatan
menjadi polimer yang mengendap dalam ukuran nanopartikel dengan membawa
22
obat (Reis dkk., 2006).
Karakterisasi nanopartikel yang berpengaruh pada penghantaran obat
antara lain ukuran partikel. Ukuran partikel dan distribusi ukuran partikel dapat
menggambarkan distribusi atau nasib obat di dalam tubuh, toksisitas dan
kemampuan penargetan nanopartikel tersebut. Ukuran nanopartikel berpengaruh
pada loading obat, pelepasan obat dan stabilitas nanopartikel (Panyam dan
Labhasetwar, 2003). Nanopartikel mempunyai kemampuan uptake intracellular
yang lebih tinggi dibandingkan dengan mikropartikel dan mempunyai range target
terapi biologis yang lebih luas karena ukurannya yang lebih kecil dan mudah
bergerak. Metode menentukan ukuran nanopartikel dapat dilakukan dengan alat
Scanning Electron Microscopy (SEM) atau Transmission Electron Microscope
(TEM) (Kroll dkk., 1998).
Formula dari nanopartikel alginat yang membawa senyawa obat biasanya
berukuran
250- 850
nm
(Rajaonarivony
dkk,1993).
Pada
pembentukan
nanoagregat (Gambar 7) konsentrasi alginat dan kationik polimer yang digunakan,
berat molekul, konsentrasi CaCl2 sangat berpengaruh pada ukuran nanopartikel.
Gambar 7. Skema pembentukan nano agregat. Keterangan : (a) pregel setelah ditambahkan
CaCl2 (b). penambahan polimer kation (c) isolasi, pencucian (d). nanoagregat (J.P paques
dkk.,2014)
23
F. Landasan Teori
Metode analisa kualitatif yang sederhana
untuk sampel yang
mengandung protein adalah teknik elektroforesis menggunakan gel akrilamid.
Prinsip metode ini adalah memisahkan protein berdasarkan perbedaan bobot atau
ukuran molekulnya (Wong dan Jameson, 2012). BSA yang terkonjugasi oleh
nanopartikel MJ-30 akan memiliki bobot molekul yang lebih besar dibandingkan
dengan BSA bebas. BSA dengan ukuran yang lebih besar akan memiliki jarak
migrasi lebih pendek saat bergerak pada gel yang diberi aliran listrik menuju
anoda.
Penelitian terdahulu bisa mengidentifikasi kojugasi antara polimer pektin
dengan BSA menggunakan Non-Denaturating Polyacrilamid Gel Electrophoresis
(Native-PAGE) karena dapat mempertahankan bentuk asli protein. Sodium
Duodecyl Sulphonate atau SDS-PAGE bisa memutus ikatan amida antara BSA
dan pectin. BSA lebih terikat kuat pada SDS dibandingkan dengan pektin karena
SDS merupakan senyawa yang mampu terikat kuat pada bagian hidrofobik asam
amino dan memberikan muatan negatif pada semua protein karena memiliki
bagian yang sangat bermuatan pada gugus sulfatnya (Juhairiyah., 2015). Untuk
menghindari putusnya konjugasi antara BSA dengan alginat pada permukaan
nanopartikel MJ-30 maka dilakukan metode elektroforesis menggunakan prinsip
Native-PAGE.
Konsentrasi
gel
poliakrilamid
dan
lama
waktu
pengembangan
elektroforesis merupakan faktor yang penting pada pita hasil pemisahan protein.
24
Ukuran pori gel pada poliakrilamid tergantung pada konsentrasi dari akrilamid
dan bis-akrilamid yang digunakan. Konsentrasi yang dipilih tergantung dari
ukuran pori gel yang ingin dipisahkan. Semakin kecil bobot molekul protein yang
akan dipisahan maka konsentrasi gel yang dibutuhkan makin tinggi (Arora dkk.,
2013). Namun, ukuran dari pori tersebut sulit untuk diperkirakan secara tepat.
Nanopartikel MJ­30 dengan polimer alginat terkonjugasi BSA mempunyai kisaran
ukuran 129 kDa sampai 297 kDa. Gel poliakrilamid dengan konsentrasi 8% dapat
memisahkan protein dengan bobot molekul 40 kDa sampai dengan 250 kDa
(Thermo Fisher Scientific Inc.,2016). Alginat mempunyai karakter mudah untuk
swelling dan dalam satu nanopartikel tidak dapat dipastikan berapa molekul
alginat yang membentuk gel. Untuk itu dibutuhkan gel dengan ukuran pori yang
lebih besar dari 8%.
Waktu pengembangan elektroforesis merupakan komponen yang sangat
penting pada identifikasi pita hasil konjugasi. Waktu pengembangan yang terlalu
pendek tidak akan menghasilkan pemisahan yang sempurna dari sampel. Pada
metode Native-PAGE, penentu kecepatan migrasi BSA adalah muatan asli protein
itu sendiri tanpa adanya tambahan muatan negatif oleh SDS sehingga pergerakan
protein akan menjadi lebih lama. Lama waktu pengembangan elektroforesis
berkaitan dengan sumber daya listrik yang digunakan. Sel vertikal biasanya
menggunakan sumber daya listrik 10- 20 V/cm dan arus listrik dengan rentang
15- 25 mA/mm tebal gel. Jika kelebihan panas dapat mengakibatkan kerusakan
pada protein sampel maupun pada gel (Garvin, 2003). Untuk itu perlu dilakukan
pemilihan sumber daya listrik yang tepat.
25
Untuk interpretasi pita hasil elektroforesis dilakukan dengan pewarnaan.
Poliakrilamid gel elektroforesis umumnya mendeteksi protein dengan pewarna
organik yaitu coomassie Blue. Pewarna Coomassie Brilliant Blue R-250
merupakan pewarna yang memiliki gugus asam sulfonat yang akan bereaksi
dengan gugus amina pada protein (BioTechniques, 1996). Selain itu,
penelitian­penelitian sebelumnya yang menggunakan BSA ataupun protein lain
menggunakan coomassie blue sebagai pewarna (Juhairiyah, 2015; Kristiani, 2015;
Maakh, 2015 ).
G. Hipotesis
1.
Gel poliakrilamid dengan konsentrasi antara 5-8% akan menghasilkan pita
elektroforesis
dengan
pola
migrasi
yang
baik
sehingga
dapat
mengidentifikasi adanya konjugasi nanopartikel MJ- 30 dengan BSA.
2.
Waktu pengembangan yang lebih lama akan menghasikan pemisahan pita
elektroforesis yang lebih baik.