Johnny_immunostimulan (945-949).pmd

945
Aplikasi imunostimulan untuk meningkatkan imunitas ... (Fris Johnny)
APLIKASI IMUNOSTIMULAN UNTUK MENINGKATKAN IMUNITAS NON-SPESIFIK IKAN
KERAPU MACAN, Epinephelus fuscoguttatus TERHADAP PENYAKIT INFEKSI DI HATCHERI
Fris Johnny, Des Roza, dan Indah Mastuti
Balai Besar Riset Perikanan Budidaya Laut
Jl. Br. Gondol Kecamatan Gerokgak Kabupaten Buleleng, Kotak Pos 140, Singaraja, Bali 81101
E-mail : [email protected]
ABSTRAK
Teknologi produksi benih ikan kerapu macan, Epinephelus fuscoguttatus, telah berkembang secara intensif
dalam dekade terakhir ini, namun tetap perlu disempurnakan. Intensifikasi dalam akuakultur ini ternyata
memicu terjadinya berbagai macam penyakit infeksi, termasuk infeksi virus. Suatu penelitian untuk mengetahui
efektivitas imunostimulan peptidoglycan (PG) dalam meningkatkan kekebalan non-spesifik ikan kerapu
macan telah dilakukan. Masing-masing 100 ekor benih kerapu macan (panjang total 8–10 cm) disuntik
secara intramuskular dengan 0,1 mL PG (setara dengan 200 mg PG/ekor ikan), sedangkan kontrol hanya
disuntik dengan Phosphat Buffered Saline (PBS). Ikan selanjutnya dipelihara dalam bak beton volume 2 m3.
Booster diberikan 30 hari pasca penyuntikan pertama. Pengukuran aktivitas fagositik (PA), indeks fagositik
(PI), dan aktivitas lisozim (LA) dilakukan 60 hari pasca penyuntikan pertama. Uji tantang dengan virus irido
dilakukan di akhir penelitian. Hasil penelitian menunjukkan bahwa PA, PI, dan LA kelompok ikan yang diberi
perlakuan PG lebih tinggi dibanding kontrol, yaitu dengan nilai masing-masing 19,50%; 1,87; dan 1,87 cm,
sedangkan pada kelompok kontrol adalah 9,67%; 1,47; dan 1,27 cm. Sintasan ikan kelompok perlakuan
setelah uji tantang adalah 72,00% dan pada kontrol hanya 18,67%. Dari penelitian ini dapat disimpulkan
bahwa pemberian imunostimulan PG efektif meningkatkan kekebalan non-spesifik ikan kerapu macan
terhadap penyakit infeksi.
KATA KUNCI:
hatcheri, imunitas non-spesifik, imunostimulan, kerapu macan
PENDAHULUAN
Di Balai Besar Riset Perikanan Budidaya Laut, Gondol, Bali ikan kerapu macan, Epinephelus
fuscoguttatus telah berhasil dipijahkan secara terkontrol. Namun masih ditemukan beberapa kendala,
antara lain masih tingginya tingkat kematian pada stadia larva dan benih. Di panti benih,
pemeliharaan ikan secara intensif berpeluang untuk terserang lebih dari satu jenis penyakit pada
waktu bersamaan. Karena ,itu suatu upaya yang dianggap tepat untuk menekan angka kematian
ikan di panti benih adalah dengan cara meningkatkan ketahanan ikan tersebut baik terhadap stres
maupun terhadap panyakit.
Penyebab kematian benih ikan kerapu macan di hatcheri di antaranya karena penyakit infeksi
virus. Penyakit infeksi virus yang sering menimbulkan kematian massal pada benih ikan kerapu
adalah dari jenis Viral Nervous Necrosis (VNN) dan virus irido (Koesharyani et al., 2001). Kasus infeksi
virus irido pertama dilaporkan terjadi di Sumatera Utara yang menyerang ikan kerapu lumpur. Di
hatcheri BBRPBL Gondol juga ditemukan virus ini pada benih kerapu lumpur asal Lamongan, Jatim.
Virus irido termasuk dalam famili iridoviridae, ikan yang terinfeksi menunjukkan gejala klinis berenang
lemah atau diam di dasar air, kadang-kadang seperti tidur, sehingga penyakit ini disebut juga penyakit
tidur. Secara histopatologi ditemukan sel-sel yang membesar (giant cell) dan merupakan ciri khas
infeksi virus irido pada jaringan haematopoitik dan saluran pencernaan. Infeksi virus irido pada ikan
kerapu dapat dideteksi secara cepat dengan metode PCR (Polymerase Chain Reaction) (Kurita et al.,
1998; Koesharyani et al., 2001). Virus ini juga terbukti sangat mudah menular dengan menggunakan
air sebagai media penularannya. Oleh karena itu, ikan yang terserang harus segera dipindahkan dan
dipisahkan dari ikan yang sehat. Salah satu upaya untuk meningkatkan ketahanan dan tanggap
kebal ikan adalah dengan penggunaan imunostimulan. Aplikasi imunostimulan sudah banyak
diterapkan pada beberapa jenis ikan baik melalui pakan, perendaman maupun melalui suntikan.
Tujuan dari penelitian ini adalah untuk meningkatkan imunitas non-spesifik benih ikan kerapu
macan sebagai tindakan pencegahan penyakit infeksi di hatcheri.
Prosiding Forum Inovasi Teknologi Akuakultur 2010
946
BAHAN DAN METODE
Masing-masing sebanyak 100 ekor ikan kerapu macan, Epinephelus fuscoguttatus ukuran antara 8–
10 cm disuntik 0,1 mL/ekor ikan dengan imunostimulan peptidoglikan, atau sebanyak 200 mg/kg BB
secara intra muskular, sedangkan kontrol hanya disuntik dengan PBS. Masing-masing perlakuan
diulang 3 kali. Selanjutnya ikan dipelihara dalam bak beton volume 2 m3 berisikan air sebanyak 1,5
m3 masing-masing sebanyak 3 bak untuk perlakuan imunostimulan dan 3 bak untuk kontrol. Pada
hari ke-30 dilakukan penyuntikan ulang sebagai booster. Pada hari ke-60 dilakukan sampling darah
untuk uji aktivitas fagositik dan lisosim. Ikan dipelihara selama 60 hari dan pada akhir percobaan
dilakukan uji tantang. Pengamatan dilakukan terhadap tingkat imunitas dan sintasan.
Koleksi Darah dan Pemisahan Leukosit
Darah ikan uji diambil dari vena anterior setelah terlebih dahulu ikan uji dipingsankan dengan
menggunakan bahan pembius. Setelah ikan uji pingsan, sampel darah disedot dengan spuit plastik
steril volume 1 mL yang di dalamnya telah berisikan antikoagulan, selanjutnya sampel darah disimpan
dalam tabung evendoff. Koleksi darah pada tabung evendoff disedot dengan tabung kapiler plastik,
ditutup dengan lilin lebah dan disentrifusa pada kecepatan 12.000 rpm selama 5 menit. Selanjutnya
tabung kapiler dipotong dengan gunting pada batas leukosit dengan eritrosit, koleksi leukosit disimpan
pada tabung evendoff baru, siap digunakan untuk uji fagositosis. Sisa koleksi darah pada tabung
evendoff disentrifusa, dipisahkan plasma darah ke tabung evendoff baru, plasma darah siap digunakan
untuk uji aktivitas lisosim. Untuk pemisahan leukosit dan plasma darah dengan menggunakan
modifikasi dari metode Klontz (1994).
Uji Aktivitas Fagositik (PA) dan Indeks Fagositik (PI)
Untuk kegiatan ini dibutuhkan bahan enzim Zymosan yang berasal dari Saccharomyces cerevisiae.
Ambil Zymosan A sebanyak 50 μL yang telah dilarutkan dengan larutan PBS, dimasukkan ke dalam
tabung evendoff. Ambil leukosit yang telah disiapkan sebanyak 50 μL dan dicampurkan dengan
Zymosan A, diaduk rata dengan mikro pipet, disimpan pada suhu 25°C selama 1 jam. Selanjutnya
diteteskan pada kaca slide sebanyak satu tetes, dibuatkan preparat ulas tipis, dilakukan pewarnaan
darah dengan May-Gruenwald’s Solution Modified dan Gyemsa Solution 3%. Terakhir dilakukan
penghitungan aktivitas fagositik (PA) dan indeks fagositik (PI).
Uji Aktivitas Lisosim (LA)
Sebelumnya disiapkan media agar yang mengandung Micrococcus lysodeikticus pada cawan petri.
Diambil cawan petri, dibuatkan lobang kecil sebanyak tiga lubang pada permukaan agar dengan
menggunakan straw (pipet). Masukkan plasma darah pada kedua lobang sebanyak 10 μL, dan pada
lubang satunya dimasukkan chicken egg white lysozyme sebagai kontrol. Diamkan dulu selama 10
menit pada suhu kamar, kemudian disimpan pada inkubator dengan suhu 25°C, dicek setiap hari
zona aktivitas lisosism (LA) dan diukur, pengamatan dilakukan selama 3 hari. Metode yang digunakan
untuk respons imun non-spesifik adalah modifikasi dari metode Siwicki & Anderson (1993).
Pembuatan Inokulum Iridovirus
Inokulum iridovirus disiapkan berpedoman pada metode Arimoto et al. (1993). Limpa kerapu
yang terinfeksi virus irido secara alami dicampur dengan Phosphat Buffered Saline (PBS) dengan
perbandingan 1:9 dan digerus dalam gelas homogenizer. Suspensi tersebut selanjutnya disentrifugasi
dengan kecepatan 3.000 rpm selama 30 menit dan supernatannya difilter dengan membran filter
(0,45 μm). Hasil filtrasi tersebut disimpan dalam biofreezer–85°C sampai digunakan sebagai inokulum
untuk uji tantang.
Uji Tantang
Dilakukan setelah 60 hari perlakuan dengan menggunakan inokulum virus irido dengan
penyuntikan secara intramuskular dengan dosis 1 mL/kg bobot ikan. Uji tantang dilakukan pada
tangki beton volume 2 m3 berisikan air laut sebanyak 1,5 m3. Masing-masing bak diisi 50 ekor ikan
uji. Pengamatan dilakukan selama 10 hari terhadap gejala klinis dan sintasan.
947
Aplikasi imunostimulan untuk meningkatkan imunitas ... (Fris Johnny)
HASIL DAN BAHASAN
Data sintasan benih ikan kerapu macan selama 60 hari penelitian dengan aplikasi imunostimulan
peptidoglikan melalui penyuntikan dengan dosis 200 mg/kg bobot ikan kerapu macan diperoleh
sebesar 84,33% dan lebih tinggi daripada kontrol (61,67%). Selama penelitian terlihat peningkatan
yang nyata pada kelompok ikan yang diberi imunostimulan peptidoglikan dibandingkan kontrol
(Tabel 1).
Tabel 1. Sintasan (%) ikan kerapu macan, Epinephelus fuscoguttatus selama 60
hari penelitian dengan menggunakan imunostimulan peptidoglikan
*
Perlakuan
Ulangan
Sintasan (%)
Imunostimulan
1
2
3
Rataan
91
80
82
84,33b
Kontrol
1
2
3
Rataan
66
63
56
61,67a
Angka-angka dalam kolom yang diikuti dengan huruf yang
sama menunjukkan tidak beda nyata (P>0,05)
Nilai aktivitas fagositik (PA), indeks fagositik (PI), dan aktivitas lisosim (LA) dengan penggunaan
imunostimulan peptidoglikan pada benih ikan kerapu macan setelah 60 hari pemeliharaan disajikan
secara lengkap pada Tabel 2. Pada hari ke-60 setelah pemeliharaan nilai tertinggi yaitu 19,50% diperoleh
pada pemberian imunostimulan peptidoglikan, sedangkan pada kontrol sebesar 9,67%, secara statistik
berbeda nyata. Hal ini juga terjadi pada ikan kerapu tikus, Cromileptes altivelis (Roza et al., 2003)
tetapi dosisnya lebih rendah yaitu 100 mg/kg memberikan nilai PA sebesar 17,56%. Sedangkan
penyuntikan imunostimulan bakterin dengan kepadatan 107 cfu/mL dosis 0,1 mL/ekor pada benih
ikan kerapu lumpur, Epinephelus coioides memberikan nilai PA sebesar 17,33% (Johnny et al., 2001).
Aktivitas fagositik (PA) adalah suatu kegiatan sel-sel fagosit untuk melakukan fagositosis dalam
suatu sistem kekebalan non-spesifik, dengan melibatkan sel mononuklier (monosit dan makrofag),
granulosit (neutrofil), dan limfosit. fagosit mempunyai kemampuan intrisik untuk mengikat
mikroorganisme secara langsung. Fagositosis yang efektif pada invasi kuman dini akan dapat mencegah
timbulnya infeksi. Dalam kerjanya, sel fagosit juga berinteraksi dengan komplemen dan sistem
kekebalan spesifik. Monosit ditemukan dalam sirkulasi, tetapi dalam jumlah yang lebih kurang
dibanding neutrofil. Sel-sel tersebut bermigrasi ke jaringan dan di sana berdiferensiasi menjadi
makrofag yang seterusnya hidup dalam jaringan. Makrofag dapat hidup lama, mempunyai beberapa
granul dan melepas berbagai bahan, antara lain lisosim, komplemen, interferon, dan sitokin yang
semuanya memberikan kontribusi dalam sistem kekebalan non-spesifik dan spesifik (Tizard, 1988;
Stoskopf, 1993; Secombes, 1996; Baratawidjaja, 2002). Hasil nilai indeks fagositik (PI) dengan
penggunaan imunostimulan peptidoglikan pada benih ikan kerapu macan memberikan nilai sebesar
1,87 dan pada kontrol sebesar 1,47 dan secara statistik berbeda nyata (P<0,05).
Pada Tabel 2 disajikan nilai aktivitas lisosim (LA) benih ikan kerapu macan setelah 60 hari
pemeliharaan dengan penggunaan imunostimulan peptidoglikan memberikan nilai lebih tinggi (1,87
cm) dibandingkan kontrol (1,27 cm) dan secara statistik berbeda nyata (P<0,05). Penyuntikan
imunostimulan peptidoglikan dosis 100 mg/kg ikan pada benih ikan kerapu bebek, Cromileptes altivelis
memberikan nilai LA sebesar 1,64 cm (Roza et al., 2003). Dan penyuntikan imunostimulan bakterin
dengan kepadatan 107 cfu/mL dosis 0,1 mL/ekor pada benih ikan kerapu lumpur, Epinephelus coioides
memberikan nilai LA sebesar 1,97 cm (Johnny et al., 2003).
948
Prosiding Forum Inovasi Teknologi Akuakultur 2010
Tabel 2. Aktivitas fagositik (PA), indeks fagositik (PI), aktivitas lisosim (LA)
ikan kerapu macan, Epinephelus fuscoguttatus selama 60 hari
penelitian dengan menggunakan imunostimulan peptidoglikan
*
Aktivitas fagositik Indeks fagositik Aktivitas lisosim
(LA/cm)
(PA/%)
(PI)
Perlakuan
Ulangan
Imunostimulan
1
2
3
Rataan
18,5
20,0
20,0
19,50b
1,8
2,0
1,8
1,87b
1,8
1,8
2,0
1,87b
Kontrol
1
2
3
Rataan
10,0
9,0
10,0
9,67a
1,4
1,5
1,5
1,47a
1,3
1,3
1,2
1,27a
Angka-angka dalam kolom yang diikuti dengan huruf yang sama menunjukkan tidak beda
nyata (P>0,05)
Lisosim adalah enzim hidrolitik yang ada di dalam lendir, serum, dan sel-sel fagositik dari berbagai
spesies ikan. Kemungkinan zat ini memberikan daya kekebalan yang penting terhadap patogen
mikrobik. Neutrofil dan monosit dari ikan-ikan mengandung lisosim dalam sitoplasmanya dan lisosim
serum mungkin berasal dari leukosit-leukosit tersebut (Ellis, 1993). Upaya peningkatan kekebalan
pada ikan budidaya laut sudah banyak dilaporkan. Matsumaya et al . (1992) melaporkan bahwa
penyuntikan imunostimulan Schizophyllan derivat dari Schizophyllum commune dan β-glucan derivat
dari Sclerotium glucanicum secara intraperitoneal dengan dosis 2–10 mg/kg dapat meningkatkan daya
tahan ikan yellowtail, Seriola quinqueradiata terhadap infeksi bakteri Streptococcus sp.
Pada Tabel 3, sintasan setelah benih ikan kerapu macan diuji tantang dengan virus irido pada hari
ke-10 setelah pemeliharaan hasil tertinggi (72%) diperoleh pada penggunaan imunostimulan
peptidoglikan dan kontrol sebesar 18,67%. Nilai ini secara statistik berbeda nyata (P<0,05). Gejala
klinis yang diperlihatkan ikan kerapu macan pada hari ke-3 ikan sudah banyak terlihat lemah, pada
hari berikutnya mulai diam di dasar bak. Pada hari ke-4 ikan kerapu macan mulai mengalami kematian,
semakin hari semakin meningkat, terutama pada kontrol.
Tabel 3. Sintasan (%) ikan kerapu macan, Epinephelus fuscoguttatus selama
10 hari setelah diuji tantang dengan inokulum virus irido
*
Perlakuan
Ulangan
Sintasan (%)
Imunostimulan
1
2
3
Rataan
72
76
68
72,00b
Kontrol
1
2
3
Rataan
20
14
22
18,67a
Angka-angka dalam kolom yang diikuti dengan huruf
yang sama menunjukkan tidak beda nyata (P>0,05)
949
Aplikasi imunostimulan untuk meningkatkan imunitas ... (Fris Johnny)
KESIMPULAN
Imunostimulan peptidoglikan dengan dosis 200 mg/kg bobot badan efektif meningkatkan
kekebalan non-spesifik ikan kerapu macan. Nilai aktivitas fagositik (PA), indeks fagositik (PI) dan
aktivitas lisosim (LA) pada kelompok perlakuan masing-masing adalah 19,50%, 1,87 dan 1,87 cm,
sedangkan pada kelompok kontrol masing-masing adalah 9,67%, 1,47 dan 1,27 cm. Sintasan ikan
setelah uji tantang adalah 72,00% pada kelompok perlakuan imunostimulan dan 18,67% pada
kelompok kontrol.
UCAPAN TERIMA KASIH
Penelitian ini dibiayai dari Dana Hibah Penelitian bagi peneliti dan perekayasa kerja sama Depdiknas
dan DKP Tahun 2009. Penulis mengucapkan terima kasih kepada Slamet Haryanto dan Muhamad
Ansari sebagai teknisi Laboratorium Patologi atas bantuannya selama penelitian ini berlangsung.
DAFTAR ACUAN
Arimoto, M., Mori, K., Nakai, T., Muroga, K., & Furusawa, I. 1993. Pathogenicity of the causative agent
of viral nervous necrosis disease in striped jack, Pseudocaranx dentex (Bloch and Schneider). J. Fish
Diseases, 16: 461–469.
Baratawidjaja, K.G. 2002. Imunologi Dasar Edisi Kelima. Balai Penerbit FK-UI. Jakarta. 457 hal.
Ellis, A.E. 1993. Lysozyme Assays. In Stolen et al. (Eds.). Techniques in Fish Immunology-1. Sos Publications, Fair Haven, NJ 07704–3303. USA, p. 101–103.
Johnny, F., Koesharyani, I., Roza, D., Tridjoko, Giri, I N.A., & Suwirya, K. 2001. Respon ikan kerapu
bebek, Cromileptes altivelis terhadap imunostimulan peptidoglycan melalui pakan pelet. J. Pen.
Perik. Indonesia, VII(4) 52–56.
Klontz, G.W. 1994. Fish Hematology. In Stolen et al. (Eds.). Techniques in Fish Immunology-3. Sos
Publications, Fair Haven, NJ 07704-3303. USA, p. 121–131.
Koesharyani, I., Roza, D., Mahardika, K., Johnny, F., Zafran & Yuasa, K. 2001. Marine Fish and Crustaceans Diseases in Indonesia In Manual for Fish Diseases Diagnosis II (Eds.) Sugama, K., Hatai, K.,
& Nakai, T. Gondol Research Station for Coastal Fisheries, CRIFI and Japan International Cooperation Agency, 49 pp.
Kurita, J., Nakajima, K., Hirono, I., & Aoki, T. 1998. Plymerase chain reaction (PCR) amplification of
DNA of red sea bream iridovirus (RSIV). Fish Pathology, 33: 17–23.
Matsuyama, H., Mangindaan, R.E.P., & Yano, T. 1992. Protective effect of schzophyllan and scleroglucan
against Streptococcus sp. infection in yellowtail (Seriola quinqueradiata). Aquaculture, 101: 197–
203.
Roza, D., Johnny, F., & Mahardika, K. 2003. Viral diseases of grouper in Indonesia. Makalah pada
Training on Grouper Hatchery Seed Production. Balai Besar Riset Perikanan Budidaya Laut Gondol–
NACA Bangkok. Gondol 1–21 Mei 2003, 12 pp.
Secombes, C.J. 1996. The Nonspecific Immune System; Cellulae Defences. In The fish immune system:
organism, pathogen and environment. Iwama, G. & Nakanishi, T. (Eds.), Academic Press. USA, p.
63–95.
Siwicki, A.K. & Anderson, D.P. 1993. Immunostimulation in Fish; Measures the effects of stimulants
by serological and immunological methods, International Workshop and Training Course in Poland,
15 pp.
Stoskopf, M.K. 1993. Fish Medicine. W.B. Saunders Company. Philadelphia. Pensylvania, 664 pp.
Tizard, I. 1988. An introduction to veterinary immunology. Penterjemah P. Masduki dan S. Hardjosworo.
Pengantar imunologi veteriner. Universitas Airlangga. Surabaya, 497 hlm.